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标题: Car-T操作流程 [打印本页]

作者: lml0716    时间: 2016-2-2 16:41     标题: Car-T操作流程


- \% y" C, A  L新版        起草人:lml        编号: SOP-001
1 k# i2 L6 R; w5 a) \2016年        外周血Car-T细胞培养标准操作流程        页数:1/56 y+ H+ q& V8 V3 ~' ]3 q& Q
Car-T细胞培养标准操作流程
, f3 q( H8 Y9 S, T8 Z$ b* I1 目的:保证Car-T细胞制备和培养符合要求。
" Q* y4 G- a  }2 e. ]# T6 D1 n6 @2 范围:适用于符合实验的要求患者外周血制备和培养7 U8 N+ B. I7 J
3责任人:实验员人、临床相关人员% ~4 Z! X5 @: j& F+ w3 h6 p
4 内容! G. H. u! v' F/ `. g
4.1耗材:50ml离心管,10ml移液管,5ml移液管,75cm2培养瓶,150 cm2培养瓶,EP管,1.8ml冻存管' {7 g# g; I' ^5 i  y
4.2试剂:X-VIVO 15TM,PBS缓冲液,75%医用酒精,人淋巴细胞分离液,CD3/CD28免疫磁珠,IL-2,注射用人血白蛋白。1 k, ^% B& S! w% E) k) O& n5 l
4.3环境:* e% Z, c: R1 M# q/ C
4.3.1外周血分离,培养应在恒温恒湿的万级层流室内进行,开放操作必须在  r2 [+ }8 L' ?! r
百级生物安全柜内进行。" ~7 w4 z: X+ B/ O
4.3.2实验人员应提前对净化室和生物安全柜进行杀菌消毒,紫外线照射时间1 J& V# j$ z4 l' P8 \4 g6 Y
不少于30min,消毒消毒后,净化空调开启时间不少于30min,生物安全柜运行稳定后方可操作。
2 E4 `+ ~/ [- H( H& @4.4操作:7 F/ F$ o, O" U: I5 ~' t" \/ a4 p. m
4.4.1采集接收外周血; l' m3 X/ p$ H6 S
4.4.1.1患者符合治疗方案,各项检测符合要求,采集患者外周血60-80ml。9 M( _" G" I7 \/ t" E
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4.4.1.2接收外周血并填写《外周血采集交接记录》,核对外周血患者相关信" G' V3 M8 M+ U  f
息,及相应检测报告,报告由医院提供,至少包括:HBsAg,HCVAb,HIVAb,Anti-TP,ALT。" ]2 g9 h! ?- [7 Q# N
4.4.2操作前准备
2 o- V% h% \# k$ o4.4.2.1净化室,生物安全柜消毒完毕后,开启净化空调运行30min,生物安
; }# M; E; ^9 \* z; M全柜运行稳定。% m( \2 Z% Z. |  j
4.4.2.2从试剂间冰箱中取出细胞培养基,恢复室温。% f8 H( u# \; Z7 b9 D1 z' Q& s/ i$ E
4.4.2.3生物安全柜表面75%酒精消毒,外周血袋表面酒精消毒转入安全柜内。: A( }8 @  H# _& C' M0 r) U
4.4.3  分离单个核细胞(PBMC): 5 {" w/ O$ L; Z* F: h/ c/ }
4.4.3.1使用灭菌消毒的剪刀剪断血袋塑料管或者使用一次性注射器,把血袋" [4 T! c. @! w! _+ d- U
内外周血转入50ml离心管中。+ L/ P% d! D' z" V& o- @  T% w
4.4.3.2用PBS缓冲液按1:1稀释外周血,混匀。5 c/ ~; K0 i# Q! ?" m7 D
4.4.3.3将稀释好的血样缓慢加入室温的15ml人淋巴细胞分离液的离心管中。方法如下:用10ml移液管吸取血样,伸至分离液液面上方0.5cm处,血样自然滑落铺至分离液面上,然后轻轻加入血样,注意不要冲破液面。
5 ~6 J( {9 G7 a. ?6 t0 o4.4.3.4配平离心1200g(2100r/min)离心20min,慢升慢降。
' d' x; I) g4 T, u2 u- r7 R4.4.3.5离心完成后,离心管出现明显分层由下至上:红细胞层,粒细胞层,Ficoll层,单个核细胞层和血浆层。吸取血浆层至距白膜层5mm左右处; `' C0 b4 R% ~% s; e
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弃之。小心吸取红细胞层以上的所有液体至离心管中,PBS稀释,与细
# }4 D7 `$ T  `; L  W' u胞悬   液体积比应大于1:3,混匀。
1 }. S  i/ P+ y) R4.4.3.6离心600g(1600r/min)5min,PBS重悬细胞混匀,取少量细胞计数。
' d& m9 n+ w5 n( H% S& T+ H5 i4.4.3.7离心300g(1200r/min)5min,上清液送检无菌检测。
7 L* _" O& Y' n4.4.4细胞培养:+ x( w5 Z& W6 O  v; Y6 ~5 U9 V  Q
4.4.4.1细胞培养条件:恒温37℃,CO2浓度 5%,相对饱和湿度95%,细胞+ y: o* D8 ?2 {- C9 c: ?
培养基PH值7.2-7.4。
7 R% l0 Y  [4 L& f4.4.4.2根据细胞计数调密度2x106/ml加入培养瓶中(T150 200x106/100ml, T75 100x106/50ml ,T25 50x106/25ml)。混匀放入CO2培养箱培养2小时。
, [6 O5 a2 Z" A& W2 ~; Z% I( ~4.4.4.3取出培养瓶,轻摇,使沉降于底部的悬浮细胞浮起,培养瓶倾斜30度角,移液管吸取培养基转入离心管中,少些培养基洗培养瓶将悬浮细胞全部收集,混匀计数。
1 o1 g4 H  E  l# T) g6 g+ c4 c) q4.4.4.4根据细胞计数调整细胞浓度1.2x106/ml接种培养瓶中(100-120ml in a T150,50-60ml in a T75,15-29ml in a T25),加CD3/CD28磁珠,按细胞与磁珠比例为1:3(加之前磁珠用培养基洗涤3次,去除保存液),加入IL-2 100U/ml,混匀放入CO2培养箱培养。: b: l' Q6 p# A- |9 D1 i- b
4.4.4.5次日细胞培养1天,调整细胞密度至0.6x106/ml,加入病毒(MOI为1-5)混匀放入CO2培养箱培养。$ \1 g9 {( k0 @2 Y, `
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# Z8 i4 {$ P8 h# u4.4.4.6细胞培养3天,细胞计数补加培养基,IL-2  100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。3 k2 l1 N3 Z7 l2 p9 Q, v
4.4.4.7细胞培养5天去磁珠,细胞混匀转离心管中,在磁力架上去除磁珠,细胞计数补加培养基,IL-2  100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。7 J0 A' j0 D! M. Y3 k. U
4.4.4.8定期观察细胞生长情况,主要观察其形态的变化,数目及增值情况,细胞碎片及杂质情况,每2-3天加液培养。
/ A+ {/ Q$ X' E4 Y- _' I. E$ H* x4.4.4.9根据细胞状态和临床治疗需要,培养9天时细胞数量达到要求,各项检测合格。包括:无菌检测,内毒素检测,细胞活力,细胞表型等。1 R: X4 ^, g$ y- i1 `9 r
4.4.5 Car-T细胞收集:
: Q! d* `0 e+ t7 U1 G6 |4.4.5.1确认细胞各项检测己符合要求。1 U; _* C. R" v  ^: ~
4.4.5.2根据治疗方案(一般一个疗程分多次回输,间隔时间为1天),取出相应细胞悬液,剩余细胞补加培养基继续培养,供再次回输。+ }  _( v8 k5 R, Y& `
4.4.5.3细胞悬液转入离心管中,300g离心5min。
; m/ [* d6 ]! a& N. w% y* u4.4.5.4除去上清培养液,加PBS缓冲液稀释混匀,300g离心5min,弃上清,PBS缓冲液300g/min离心5min。
3 m; F/ ~9 h  M4 r4.4.5.5细胞装袋(一般静脉回输,采用100ml双阀盐水袋),离心完成后取上清,做无菌检测,20ml生理盐水重悬细胞,100μm细胞滤网过滤,取少量细胞悬液进行细胞数量,细胞活率,革兰氏检测,内毒素检测。
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细胞过滤完成,转入100ml盐水袋中,加5%注射用人血白蛋白,贴上标签,并填写相关记录。4.5细胞运输与保存:
- H1 A, v# |" t4 E/ U: v 4.5.1核对细胞标签内容,填写回输发放记录。
7 }  L3 Z4 V2 O; O) `: n7 | 4.5.2细胞盐水袋放置于运输容器内(一般为疫苗箱,4度),填写交接记录表。7 r! t" u5 D7 P# i- Z
4.5.3运输人员在运输过程中避免距离震荡,并在规定时间内送到。3 }- C6 }$ f% q# V
4.5.4细胞运输保存温度保持在4度左右,并在规定时间内回输,如果患者不能按时回输,请及时联系实验技术人员,返回实验室。8 c9 _4 @% k- @8 u" g
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作者: yooung    时间: 2016-2-2 16:45

谢谢分享!
作者: 我的小宝贝    时间: 2016-2-2 19:03

谢谢分享!
作者: 吕小松    时间: 2016-2-2 21:09

这是car-T么?转染在哪儿?
作者: biluolinyu    时间: 2016-2-3 13:28

回复 吕小松 的帖子
0 B* ~4 h2 y2 j$ g" R/ A( U' R9 _+ S  }: _3 {! h9 z: s! G0 m
在   4.4.4.5 里面写的
( X1 m' t- `8 Z5 ?次日细胞培养1天,调整细胞密度至0.6x106/ml,加入病毒(MOI为1-5)混匀放入CO2培养箱培养。
作者: a276038921    时间: 2016-2-3 15:51

感觉不像啊
作者: 苹果树    时间: 2016-2-3 21:34

为什么没有测转染率呢?怎么知道病毒就转进去了呢
作者: swtarron    时间: 2016-2-4 14:04

怎么感觉不像啊
作者: easyess89    时间: 2016-2-9 23:02

我们医院现在做的是DC-CIK,治疗效果个体差异比较大,CAR-T貌似更高级些,它的治疗效果如何?
作者: ET生物人    时间: 2016-2-16 14:59

不用筛选Tcell??病毒感染一次就可以?感染率是多少?
作者: kelinzjf    时间: 2016-2-19 22:51


作者: kelinzjf    时间: 2016-2-19 22:51


作者: 飞翔的烨    时间: 2016-2-20 08:33

回复 easyess89 的帖子
0 w$ }- [  L% {/ }. n! K
* `! r4 _& ]  e5 _, g4 }哪个单位?
作者: 包公    时间: 2016-2-22 13:41

谢谢,参考了
作者: 大林    时间: 2016-3-15 09:49

非常详细啊~ 这样帖子多点就好了~




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