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标题:
Car-T细胞培养标准操作流程
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作者:
lindsay251
时间:
2016-2-16 09:29
标题:
Car-T细胞培养标准操作流程
本帖最后由 细胞海洋 于 2016-2-16 09:55 编辑
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1 目的:保证Car-T细胞制备和培养符合要求。
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2 范围:适用于符合实验的要求患者外周血制备和培养
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3 责任人:实验员人、临床相关人员。
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4 内容
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4.1耗材:50ml离心管,10ml移液管,5ml移液管,75cm2培养瓶,150 cm2培养瓶,EP管,1.8ml冻存管
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4.2试剂:X-VIVO 15TM,PBS缓冲液,75%医用酒精,人淋巴细胞分离液,CD3/CD28免疫磁珠,IL-2,注射用人血白蛋白。
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4.3环境:
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4.3.1外周血分离,培养应在恒温恒湿的万级层流室内进行,开放操作必须在百级生物安全柜内进行。
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4.3.2实验人员应提前对净化室和生物安全柜进行杀菌消毒,紫外线照射时间不少于30min,消毒消毒后,净化空调开启时间不少于30min,生物安全柜运行稳定后方可操作。
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4.4操作:
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4.4.1采集接收外周血
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4.4.1.1患者符合治疗方案,各项检测符合要求,采集患者外周血60-80ml。
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4.4.1.2接收外周血并填写《外周血采集交接记录》,核对外周血患者相关信息,及相应检测报告,报告由医院提供,至少包括:HBsAg,HCVAb,HIVAb,Anti-TP,ALT。
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4.4.2操作前准备
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4.4.2.1净化室,生物安全柜消毒完毕后,开启净化空调运行30min,生物安全柜运行稳定。
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4.4.2.2从试剂间冰箱中取出细胞培养基,恢复室温。
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4.4.2.3生物安全柜表面75%酒精消毒,外周血袋表面酒精消毒转入安全柜内。
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4.4.3 分离单个核细胞(PBMC):
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4.4.3.1使用灭菌消毒的剪刀剪断血袋塑料管或者使用一次性注射器,把血袋内外周血转入50ml离心管中。
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4.4.3.2用PBS缓冲液按1:1稀释外周血,混匀。
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4.4.3.3将稀释好的血样缓慢加入室温的15ml人淋巴细胞分离液的离心管中。方法如下:用10ml移液管吸取血样,伸至分离液液面上方0.5cm处,血样自然滑落铺至分离液面上,然后轻轻加入血样,注意不要冲破液面。
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4.4.3.4配平离心1200g(2100r/min)离心20min,慢升慢降。
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4.4.3.5离心完成后,离心管出现明显分层由下至上:红细胞层,粒细胞层,Ficoll层,单个核细胞层和血浆层。吸取血浆层至距白膜层5mm左右处弃之。小心吸取红细胞层以上的所有液体至离心管中,PBS稀释,与细胞悬液体积比应大于1:3,混匀。
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4.4.3.6离心600g(1600r/min)5min,PBS重悬细胞混匀,取少量细胞计数。
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4.4.3.7离心300g(1200r/min)5min,上清液送检无菌检测。
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4.4.4细胞培养:
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4.4.4.1细胞培养条件:恒温37℃,CO2浓度 5%,相对饱和湿度95%,细胞培养基PH值7.2-7.4。
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4.4.4.2根据细胞计数调密度2x106/ml加入培养瓶中(T150 200x106/100ml, T75 100x106/50ml ,T25 50x106/25ml)。混匀放入CO2培养箱培养2小时。
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4.4.4.3取出培养瓶,轻摇,使沉降于底部的悬浮细胞浮起,培养瓶倾斜30度角,移液管吸取培养基转入离心管中,少些培养基洗培养瓶将悬浮细胞全部收集,混匀计数。
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4.4.4.4根据细胞计数调整细胞浓度1.2x106/ml接种培养瓶中(100-120ml in a T150,50-60ml in a T75,15-29ml in a T25),加CD3/CD28磁珠,按细胞与磁珠比例为1:3(加之前磁珠用培养基洗涤3次,去除保存液),加入IL-2 100U/ml,混匀放入CO2培养箱培养。
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4.4.4.5次日细胞培养1天,调整细胞密度至0.6x106/ml,加入病毒(MOI为1-5)混匀放入CO2培养箱培养。
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4.4.4.6细胞培养3天,细胞计数补加培养基,IL-2 100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。
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4.4.4.7细胞培养5天去磁珠,细胞混匀转离心管中,在磁力架上去除磁珠,细胞计数补加培养基,IL-2 100U/ml细胞密度调整至0.6x106/ml继续培养。
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4.4.4.8定期观察细胞生长情况,主要观察其形态的变化,数目及增值情况,细胞碎片及杂质情况,每2-3天加液培养。
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4.4.4.9根据细胞状态和临床治疗需要,培养9天时细胞数量达到要求,各项检测合格。包括:无菌检测,内毒素检测,细胞活力,细胞表型等。
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4.4.5 Car-T细胞收集:
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4.4.5.1确认细胞各项检测己符合要求。
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4.4.5.2根据治疗方案(一般一个疗程分多次回输,间隔时间为1天),取出相应细胞悬液,剩余细胞补加培养基继续培养,供再次回输。
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4.4.5.3细胞悬液转入离心管中,300g离心5min。
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4.4.5.4除去上清培养液,加PBS缓冲液稀释混匀,300g离心5min,弃上清,PBS缓冲液300g/min离心5min。
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4.4.5.5细胞装袋(一般静脉回输,采用100ml双阀盐水袋),离心完成后取上清,做无菌检测,20ml生理盐水重悬细胞,100μm细胞滤网过滤,取少量细胞悬液进行细胞数量,细胞活率,革兰氏检测,内毒素检测。细胞过滤完成,转入100ml盐水袋中,加5%注射用人血白蛋白,贴上标签,并填写相关记录。
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4.5细胞运输与保存:
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4.5.1核对细胞标签内容,填写回输发放记录。
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4.5.2细胞盐水袋放置于运输容器内(一般为疫苗箱,4度),填写交接记录表。
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4.5.3运输人员在运输过程中避免距离震荡,并在规定时间内送到。
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4.5.4细胞运输保存温度保持在4度左右,并在规定时间内回输,如果患者不能按时回输,请及时联系实验技术人员,返回实验室。
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作者:
murong
时间:
2016-2-16 13:37
感谢
作者:
shunho-cell
时间:
2016-2-17 08:49
请问您是哪个实验室的?
作者:
a276038921
时间:
2016-2-17 11:09
你这也没有转染啊
作者:
guzhouleng
时间:
2016-2-18 17:32
细胞回输之前不用分选么?
作者:
liyan
时间:
2016-2-19 09:21
谢谢
作者:
lindsay251
时间:
2016-2-19 15:35
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guzhouleng
的帖子
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4 b: [/ n/ s; n8 L- k/ J4 t; d
培养期间加CD3/CD28磁珠就是分选啊
作者:
lindsay251
时间:
2016-2-19 15:46
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a276038921
的帖子
1 e' v' p, c4 F( g
2 r! x' h1 z1 I& }$ c$ I
这个操作流程不是我们自己做的,但我想4.4.4.5 中“加入病毒(MOI为1-5)混匀放入CO2培养箱培养”这就是转染过程吧
作者:
guzhouleng
时间:
2016-2-23 10:23
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lindsay251
的帖子
6 U5 K! d/ Y" Y) Q: W* |( K
# b) [1 l3 }: l% O6 Q* A7 ?+ y
这个磁珠不是用来刺激T细胞的么?第4.4.4.7步磁力架上只是去除掉和细胞结合的磁珠,而并非用磁珠将某类细胞拉出来,我这么理解应该没错吧?
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不过分选的时候不是应该是将成功转染了CAR分子的细胞分选出来么?这一步貌似没有看到诶
作者:
a276038921
时间:
2016-2-23 15:30
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guzhouleng
的帖子
: ?$ e' Y/ R6 ^( T/ b0 X3 b! w
% Q! h ]5 Y% J. M4 p2 o) W
用磁珠去除的是CAR-T以外的细胞,留下的才是想要的细胞
作者:
lyj-0017
时间:
2016-7-4 13:30
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lindsay251
的帖子
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“4.4.4.4根据细胞计数调整细胞浓度1.2x106/ml接种培养瓶中(100-120ml in a T150,50-60ml in a T75,15-29ml in a T25),加CD3/CD28磁珠,按细胞与磁珠比例为1:3(加之前磁珠用培养基洗涤3次,去除保存液),加入IL-2 100U/ml,混匀放入CO2培养箱培养”
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这一步骤加入的抗CD3和抗CD28抗体偶联的磁珠,抗体的作用肯定是刺激活化T淋巴细胞。
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但在接下来的步骤4.4.4.7中又要去除磁珠,而磁珠是偶联抗CD3/CD28抗体,这样不就相当于将一部分CD3+的T淋巴细胞也同样去除掉了吗?相当于损失了一部分T细胞克隆的母细胞吧?
作者:
tyzbtx
时间:
2016-7-7 09:15
CAR-T怎么检测表达率呢?
作者:
细胞海洋
时间:
2016-7-8 17:16
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tyzbtx
的帖子
# @1 b9 b2 ~: ]" F
- u" {) C# G2 c0 j% C* w4 h" y
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作者:
win369lzww
时间:
2016-7-15 11:37
感谢分享,学习了
作者:
xcb726
时间:
2017-3-29 08:29
非常感谢,非常受用.....
作者:
ppzl
时间:
2017-3-31 11:33
不错 谢谢
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