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标题: 噬菌体 [打印本页]

作者: xieyun20052005 时间: 2016-9-21 09:14 标题: 噬菌体

天然噬菌体抗体库构建和筛选的实验方法` % [4 p$ G2 t  h' m5 b
6 H4 q  A3 N/ o% g
一原理 0 I  f6 @7 _8 ?
噬菌体展示技术是将外源DNA通过基因工程技术克隆到适当的噬菌体载体& j. o' f3 z# y& F( }" ~
上，使外源DNA片段对应的表达产物融合在噬菌体的衣壳蛋白上形成融合蛋白
呈现在噬菌体表面，被展示的多肽或蛋白可保持相对的空间结构和生物活性。然  K0 M; ]3 d: c5 X# K2 g
后利用靶分子，采用适当的淘洗方法洗去非特异结合的噬菌体，最终从噬菌体文
库中筛选出能结合靶分子的目的噬菌体；外源多肽或蛋白质表达在噬菌体的表面) c: B6 O) N( {+ v3 v
而其编码基因作为噬菌体基因组中的一部分可通过噬菌体DNA序列测序出来。该 2 I. [8 f0 N( T  m: l
技术的显著特点是建立了基因型和表现型之间的对应关系。; s/ s' ~& J; V) y! a0 f
( m; Z1 x+ \$ D% m
图不能复制
8 g. C; t1 d7 _/ c7 q4 W
! w8 g1 V$ F1 E& c
二简要操作流程 8 R% E6 `, v$ l+ r6 b8 W
1. 从标本中提取总RNA。 , n7 Z& p( z$ I  `" o" e. x
2. 合成cDNA。
3. 用PCR方法扩增轻重链可变区基因。 7 @  o' V) s" f& ^. d
4. 采用SOE-PCR(重叠延伸拼接法)将轻重链可变区基因装配为scFv。 " `- ]! F2 n2 i; x% _/ z- C
5. Sfi消化扩增的scFv片段。
6. Sfi消化质粒载体PAK100与scFv片段连接。 0 D6 B" M8 m1 T* _' _" x$ K# }
7. 电转化XL1-Blue大肠杆菌。 2 t7 K% V' l' O0 |
8. 扩增XL1-Blue大肠杆菌建立噬菌体库。
9. 筛选富集目的scFv。
10.做亲和力鉴定。0 V! Q' z/ P# I

二实验材料 7 \: Z4 m" T: C! p9 C: {
1. 材料
1.1 菌株、载体和细胞 : h. N9 T7 H5 H+ j) f
1) 质粒PAK100、 E. coli XL1-Blue、辅助噬菌体VSCM13为本实验室保存。$ N4 v/ T; }( E
1×106 -5×106对数生长期或冻存的杂交瘤细胞或脾细胞自行制备。
2) 设计与合成引物根据文献《重组抗体21-23设计和合成引物。 $ Z( r3 C+ @% J% E7 n1 H
1.2. 试剂与仪器
TRIZOL( Invitrogen 公司)，AMV-Reverse Transcriptase ( Promega 公司)，WizardPlus
SV Minipreps DNA Purification System ( Promega 公司)，限制性内切酶 Sfi I，T4 连  q$ N" o5 e; O. K. Z/ D
接酶( TaKaRa公司)，HRP标记抗M13抗体( Promega 公司)、电穿孔仪，Bio-Rad公
司，PCR仪（senscquest公司）。6 h+ l/ a  v( y3 m1 M" F7 A- c
1.3缓冲液和培养基的配置 ) X1 Q8 [6 }0 z' ]% p
1.3.1缓冲液
1) 10×PBS(0.1M)：称取80 g NaCI，2 g KCI，20.6 g Na2HP04 12H20，2.4 g KH2P04
加去离子水至900ml，调节pH值至7.4，定容至1 L，高压灭菌。
PBST：在1×PBS中加入终浓度为0.05%的Tween 20。
3%BSA/PBS：在PBS中加入终浓度为3%的BSA，调PH值7.4，过滤除菌（即4 `4 r( {! e. ]! \. x
用即配不能长期保存）。

2) 20xTBS溶液150ml：称取18.2g Tris-HCl、26.1g NaCl，溶于100ml去离子水，9 c! C6 M) G& A+ R" j7 B# b
定容至150ml。用时1:20稀释，加0.05%的Tween 20即为TBST，可用于
洗涤。
3) 5×PEG/NaCl(20%PEG，2.5 M NaCl)：称取200 g PEG 8000和150 g NaCI，用+ I( Z) m' d( j  z5 N( f) Z+ O
去离子水定容至1 L，加热溶解，高压灭菌。 & m1 ~6 G( P" V6 I. Q9 M
4) 0.2 M GIy/HCI洗脱缓冲液：加入1.5 g甘氨酸至90 ml去离子水中，用浓盐2 }! f6 ^! H3 a2 p
酸调节pH至2.2，再加入100mgBSA，用去离子水定容至100ml，过滤除菌
4℃保存。
5) 2MTris：242 g/LTris每次配20ml即可。
1.3.2培养基 ) q4 [* V2 }' k1 M+ B" l7 _
1) LB液体培养基：Tryptone 10g，Yeast extract 5g，NaCI 10g，用双蒸水定容至, ]- [8 u/ C4 W" i. C6 r1 N
1000ml，高压灭菌后，4℃保存, " T' Z- }: y. m4 d# t
LB固体培养基：在LB液体培养基中加入琼脂粉至终浓度为1.5%高压灭( }5 D, X, }9 f$ Q  T6 d
菌后4℃保存。
2) 顶层琼脂：每升含：10g Tryptone，5g yeast extract，5 g NaCI，1g MgCl2·6H20，
7 g琼脂粉。高7g琼脂粉。高压灭菌，4℃保存，用时微波炉融化。 $ g% t, a2 S0 M
3) SOB培养基：20 g/L胰蛋白胨，5 g/L酵母提取物，0.5 g/L NaCI，10ml的 250mmol/L的KCl或（186mg的KCl），用去离子水定容至1 L，高压灭菌，冷却后加入10ml 的1mol/L 的 MgCl2 于室温下存放。 " u% w( v/ ^8 ?: e7 q
SOC培养基：每100ml SOB培养基加入2ml 1mol/L的葡萄糖（过滤除菌）。 ' c- y& G; p, `1 o- B7 [- _, ?
20%葡萄糖：称取20g无水葡萄糖，用双蒸水溶解后定容至100ml，用0.22 u m ,滤膜过滤除菌，-20℃保存。 , R  [0 M/ T4 O6 l; L
1mol/l MgCl2：称取203g MgCl2.6H2O溶于1 L去离子水，高压灭菌（一般配100ml
即可）。 . n2 v5 q0 U$ A3 w
4) 2×YT培养基：16 g/L胰蛋白胨，10g/L酵母提取物，5 g/L NaCI，用去离子水定容至1 L，高压灭菌。
2×YT培养扳：含15%/L琼脂粉的2xYT。
2×YT-氯霉素葡萄糖培养基板：含30微克/ml氯霉素（1ml培养基加入1.2微升25mg/ml的氯霉素溶液）及2%的葡萄糖2xYT培养板，待冷却至低于50℃时，加入氯霉素贮液，混匀倒平板，平板4℃避光贮存。9 q" P0 x# T6 r; T9 r
5 e9 V- y( f; M; Q4 h; e' A
三、方法
Notes：接触了噬菌体的器材要160℃消毒3到4小时，噬菌体液体不能污染，否则实验就不能进行下去！ , H' h5 T9 r7 p
1. 噬菌体及宿主菌的制备 8 t& ]; Q5 A2 x% s' r% l
1.1辅助噬菌体敏感宿主菌的制备
1) 方法
从-70℃保存的大肠杆菌XL1-blue储存管挑取细菌分区划线接种于含四环素的LB平板，37℃培养过夜。分别挑取单个菌落接种多管2ml SB(含四环素10μg/ml-1)，37℃ 250 r/min，振荡培养至对数生长期(OD600=1，通常5h)。取VCSM13保存液稀释至10-8加分别加2μl到上述大肠杆菌XL1-blue菌液100μl，37℃缓慢震荡20min（80 r/min），加入高层琼脂浇板37℃孵育12~16 h，观察噬菌斑鉴定该菌对VCSM13的敏感性。
2) 实验准备
i. 准备和菌落数相同的LB板，放到37℃预热
ii. 准备0.7%的高层琼脂预先微波炉加热熔化后放入45℃水浴锅中 , V) I+ O* G/ t: L
iii. 2ml消毒好的SOB培养管数个 0 j) l5 C5 u) g( [; ~
iv. 装45℃水的大烧杯一个，倒上层琼脂时将装0.7%高层琼脂的烧瓶放入
1.2 辅助噬菌体的扩增 5 N* I( B% Y5 V) s5 _9 Y( S. P
1) 方法 , `5 T7 p0 |# H/ a3 b! Q# b4 P
辅助噬菌体通常保存于4℃，大量制备时应挑取遗传背景相同的单个空斑扩增，以减少变异株。将1012PFU/ml的VCSM13系列稀释至10-8。取经鉴定对VCSM13敏感的新鲜大肠杆菌XL1-blue（OD600=1）分装成每支100μl，加入稀释的VCSM13 2μl，37℃缓慢震荡20min（80 r/min），分别加入3ml 45℃高层琼脂混匀，立即倒入预热无抗生素LB琼脂板，37℃培养过夜。
吸取经鉴定对VCSM13敏感的XL1-blue 菌，按1:500接种于5mlSOB培养基中，(含四环素10μg·ml-1)，37℃ 220r·min-1振荡培养1 h，挑取辅助噬菌体单个空斑接种入该培养物，继续37℃振荡培养2 h，转入100 ml SB(含四环素10μg·ml-1，卡那霉素70μg·ml
-1，加20%葡萄糖2ml，1mol/l MgCl2，1ml) 37℃220 r·min-1振荡培养过夜。 8 b  A1 K; w3 l9 g, z$ K' K, C) n+ ]5 j
2) 实验准备：同上 8 o5 H7 N: @, A) u
1.3 辅助噬菌体滴度的测定
将上述扩增辅助噬菌体无菌分装50 ml离心管，室温4 000 r· min-1离心15 min，收集上清液，再分装50ml离心管， 4℃保存。用LB稀释VCSM13至10-8，分装OD600为1的大肠杆菌XL1-blue每支100μl，加入稀释的VCSM13, 2μl，37℃缓慢震荡20min（80 r/min），加入3ml 45℃高层琼脂混匀，立即倒入预热无抗生素，LB琼脂板37℃培养过夜计数空斑。
噬菌体通过噬斑形成单位(plague forming units,pfu)确定滴度。计数方法:

经扩增的VCSM13滴度为1×1011~2×1011PFU/ml。 8 F% |  X" K# r' m" U4 l
2. 大肠杆菌电转化感受态细胞制备
2.1第一天：
1) 将适合菌株（如XL1-Blue, DH5α）划板，在37°C下过夜培养  1 t/ }5 |5 k, Q; X. f, m
2)  高温灭菌大的离心瓶（1000ml）两个，每瓶装200ml的2×YT培养基以备
第二天摇瓶用
3) 1L 10%灭菌甘油或蒸馏水保存于冷冻室中以备第二天重悬浮细胞用。
2.2第二天  2 O' L4 \, T; h- W4 N3 [; U
1) 挑单克隆于5ml的2×YT培养基中在37°C下过夜培养 4 t- ^+ v; Q, P. ^& E* l! ^
2.3第三天：# _% q& A3 V0 s' Y
1) 取上述过夜培养物按1:100至装有200ml 2×YT的1升三角瓶中，接种两瓶。
2) 37°C下剧烈振荡（220转）培养2-3小时  4 B5 r( I. ]& S7 ^! q
3) 定时监控OD600值（培养1小时后每半小时测定一次）
4)  当OD600值达到0.5左右时，从摇床中取出摇瓶，置于冰上冷却至少15分
钟（需要的话这种方式可以存放培养液数小时）  ) P7 U4 x! i. V/ H1 U; }" ]
5) 细胞在4°C 2500g（4000转）下离心5分钟，弃上清液（如需要，沉淀可在6 n: m6 z! ?& P" S* M8 J$ o& Y1 B
4°C的10%甘油中保存一两天）
6) 用少量的（约3-5ml）灭菌的冰冷10%甘油重悬浮细胞。然后冰冷10%甘油% f  R" \0 u  o, I' w- Y
稀释至离心管的2/3体积。  6 N- p; D) @$ m, v0 r- }
7)  照上面步骤重复离心，小心弃去上清液  - ?3 b3 r8 F# @) Q/ r
8) 照上面步骤用灭菌的冰冷10%甘油重悬浮细胞  % v3 |( F" C  |, I: L
9) 离心，弃上清液（可以再洗一遍）
10) 用20ml灭菌的、冰冷后的10%甘油重悬浮细胞  3 V8 t9 X0 d& {" x' I
11) 照上面步骤离心，小心弃去上清液（沉淀可能会很松散）    J2 N. z8 T* U% v. _; O. h
12) 用10%甘油重悬浮细胞至最终体积为2-3ml，保证细胞的最终浓度为:稀释100倍后OD600=1 8 z# I8 J: J4 L; l9 f
13) 将细胞按50μl-200μl等份装入微量离心管，于-80°C保存 9 V( E9 P; X3 ~0 ~
Note：甘油会降低转化效率，如果不冻存，可以用蒸馏水洗，做的过程中要注意低温。
3. 转化方法: ! S# N6 X! I/ Q
3.1. 在冰上解冻电感受态细胞添加1-3μl DNA，质粒1ul，连接产物2-3ul，冰上培育约5分钟。  % P6 m2 [1 ^8 s, o! I
3.2 转移DNA/细胞混合物至冷却后的1mm电穿孔容器（无泡）中
3.3设置电穿条件，准备好300μl LB 或 2xYT
3.4 对电穿孔容器进行脉冲 1 P3 ?$ \+ K: m. ^  V$ Q  h
3.5 立即添加300μl 的LB或2xYT至电穿孔容器中  * I6 @( z4 i0 i& n& P
3.6  37°C下培养细胞30分钟至45min以复原（如果做质粒转化此步骤可以省略）
3.7转移细胞至适当的固体选择培养基上培养  ) z) }, ?/ q. X
4 . PCR扩增抗体V区基因
4.1 混合引物的配制
引物按说明书稀释，稀释引物之前先最大速离心5min，轻轻打开管盖，每% P4 o0 N& |$ K  _
管引物加入超纯水的量是OD×10，配成100μmol/ml，充分震荡5min，用时按下
表加入各种引物，混合在一起，根据实验需要进一步稀释。 ( j, m  ?: @* k. J( f
LB1 LB2 LB3 LB4 LB5 LB6 LB7 LB8 LB9 LB10
2    2    3    3    3    4    4    2    2    39 G( j- O! ]* w9 k. P7 B4 C  }1 c- h
+ B: {  I3 z1 @; k
LB11 LB12 LB13 LB14    LB15    LB16    LB17 LBλ0 f, I. e3 _1 K5 F. b
4    4    4    2       2       2    2    2
4 r- y3 ]* K* `
LF1    LF4    LF5    LFλ
19    9.5    9.5    21 ~; \; l1 Q" y, V9 y/ H

HB1 HB2 HB3 HB4 HB5 HB6 LB7 LB8 LB9 LB10
3    3    2    2    4    3    2    3    4    2) s& e3 H- G/ g: H+ z# @2 _

HB11 HB12 HB13 HB14 HB15 HB16 HB17 HB18 HB19
3    2    2    3    3    3       3    2       2
  {3 ~' _+ Z4 w: g) m: q- f  E7 k
HF1    HF2    HF3    HF4
10       10    10    10% `8 J! W# M. \: v/ G- E. c: d
Scfor和scback先配成100μmol/ml根据实验需要进一步稀释。( v0 _% `& [1 h9 s
" r" D; p5 `6 ~$ A+ x
4.1  VH基因扩增
1) 25µl反应体系
1µl cDNA、2.5µl的10x缓冲液、2.5µl的MgCl2(25mM)、2.5µl的dNTP混合物、1µl 的HB 和1µl的HF，TaqDNA聚合酶0.25µl，补水至25µl。混匀，短暂离心。
2) PCR反应条件为
94℃、3min，（ 94℃、30s， 54℃， 57.2℃，60.9℃ 40s， 72℃  40s），30个循环，72℃ 10min。 , V: U# {+ [# L+ P
4.2  VL基因扩增 3 ^0 a5 ^6 p  _" \0 T6 h
1) 25µl反应体系  ( X: B* I9 W$ V1 w" f
1µl cDNA、2.5µl的10x缓冲液、2.5µl的MgCl2(25mM)、2.5µl的dNTP混合物、1µl 的LB 和1µl的LF，TaqDNA聚合酶0.25µl补水至25µl。混匀，短暂离心。
2) PCR反应条件为：同重链 / k8 {) r- m1 y3 v
4.3  VH和VL PCR产物纯化及浓度测定
用胶回收试剂盒回收VH和VL PCR产物，通过电泳确定回收量。
4.4  scFv的扩增
1) 25µl反应体系： & s7 {* `0 z0 f) M
VH和VL PCR产物 (60ng)、2.5µl的10x缓冲液、2.5µl的MgCl2(25mM)、2.5µl的dNTP混合物、1µl 的scFOR和1µl的scBACK，TaqDNA聚合酶0.25µl，补水至25µl。混匀短暂离心。

2) 反应条件
92℃  3min，（ 92℃  1min，63℃  30s，58℃  1min，72℃  1min7个循环）（92℃  1min，63℃  30s，58℃  1min72℃  1min），25个循环。
4.5． scFv的酶切消化 8 u7 J3 P* f6 `! `9 E
1)加入下列试剂于无菌微量离心管中：50µl scFv纯化DNA片段、10µl的10xM缓冲液、2µl TaqDNA聚合酶(20Uper reaction)、35µl灭菌双蒸水，总体积100 ul。
2)混匀，50℃、2h。加入40µl无水乙醇， 4℃ 1 h。12 000 r/min，10 min，室温挥发乙醇。
经质量测定可用于与相应载体相连接。
5  噬菌体抗体库的构建  3 s( P  e' P8 \& ^% M6 x! P
5.1 转化
ScFv片段和载体PAK100经sfiⅠ酶切后，用T4连接酶连接，电转化入X-Blue感受态菌，加培养基（2×YT+2%G）1ml，37℃培养1h后，取实验组转化菌1µl平铺2×YT-氯霉素葡萄糖培养基板，30℃过夜。第二天对稀释菌涂布扳上长出的菌落进行计数，计数实验组转化菌形成的菌落，估算库容，库容量(cfu)=菌落数×稀释倍数，4℃保存平板。
5.2辅助噬菌体挽救文库
1) 取实验组转化菌1ml，加入20ml 2xYT氯霉素葡萄糖培养基中，30℃、200 r/min培养2h或更长时间,至OD600=0.5左右,使细胞处于对数生长期,得以表达F性鞭毛。
2) 加入4×1010pfu的M13K07辅助噬菌体(噬菌体：细菌=20:1)，37℃，静置10 min，250 r/min培养1 h。
3) 4 000 r/min离心10min,重悬沉淀于200 ml 2xYT氯霉素葡萄糖培养基中,30℃过夜振荡培养。
4) 4 000 r/min离心5 min，收集上清，加入1/5体积量PEG/NaCI,混匀，4℃静置45min。 : u/ K3 H8 W( v6 g) W! Z  t
5) 4℃、10000 r/min离心20min，弃上清，用2m1或4ml PBS重悬沉淀，建立初级scFv噬菌体抗体库。
6 噬菌体抗体库滴度的测定  ) W4 ~' Z7 k' \5 P+ o! e
取不同稀释度的体抗体库溶液2µg加到 100µg XL1-Blue（OD600=1）菌液中，菌液37℃放置20min，铺板，过夜培养，计算集落形成单位（cfu）。
7  目的噬菌体抗体库的筛选
7.1富集淘选
1) 用筛选抗原包被酶联板（第一轮100µg/ml第二轮10µg/ml第三轮1µg/ml），在96孔培养板中加入100µl溶于包被缓冲液的筛选抗原，一般20个孔，4℃过夜。弃去包被液，PBS洗涤三次，每次洗涤后将孔内液体弃净。 * E4 Q2 U/ I: C( b
加100µl含1%BSA 的PBS，室温封闭2 h，弃去液体，PBS洗三次。
2)封闭后每孔加50µl噬菌体库，37℃温浴2h，吸去未结合的噬菌体库，用TBST洗5遍（第二轮10遍，第三轮20遍）每孔加入50µl甘氨酸-盐酸（PH2.2）室温孵育10min，吸出后加72µl Tris（2 mol/L）中和。中和后加入2ml新鲜制备的XL1-Blue，37℃震荡培养20-30min，取10µL铺板测定库容。余转入200ml 2×YT培养基中，进行第二轮筛选，如此“吸附-洗脱-感染扩增”共筛选3轮。得到富含对筛选抗原有亲和力的重组噬菌体抗体三级库，并对每一轮筛选均测定滴度并计算，作为特异性噬菌体抗体富集的指标。   @1 D7 a, I) F0 H( S
8  ELISA测定亲和力 7 a" d3 \2 M: [+ L
将第三轮富集的重组噬菌体感染新鲜的XL1-Blue菌，37℃培养1h后涂板过夜，随机挑选10个单菌落，分别接种于1ml  2×YT培养基中，37℃振荡培养至A600=1.0时加入20倍细菌的辅助噬菌体，37℃振荡培养1h，4000r/min，10min，弃上清，重悬于200ml 2×YT（氯霉素+卡那霉素）37℃培养过夜。离心取上清做免疫学鉴定：各取上清抗体库100µL加入到筛选抗原（1µg/ml）包被的ELISA板中反应1h，同时用PAK100做阴性对照。用TBST洗5遍，加入HRP-M13抗体(抗体做1:5000稀释，用含1%BSA 的PBS稀释)，37℃孵育1hTBST洗5遍后，加显色剂37℃孵育10-15min，加终止液（2mol/L H2SO4），终止反应，测定OD450nm值，高于阴性对照2.1倍以上视为阳性。

                  1 E* [$ Z" }: u

作者: yangjin209 时间: 2016-9-21 10:17

本帖最后由 yangjin209 于 2016-9-21 10:22 编辑 3 _. K& L& n( u! k+ |: x
6 C7 z( r8 v4 K( k. p, m
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