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标题: 询问一个关于基质胶的问题! [打印本页]

作者: ahfjwangrui    时间: 2010-8-11 10:46     标题: 询问一个关于基质胶的问题!

各位专家们,大家好,做肿瘤干细胞,我看到文献上说可以用ECM gel 铺板培养,我今天询问了这个胶,但不知道具体用法和使用范围及意义,请有用过这玩意的专家给个答案,多谢!
作者: 胡问成    时间: 2010-8-11 12:26

回复 1# ahfjwangrui 1 L& s* ~% z0 C
' j, ?  d1 [- U  H! y1 X
, @: [* S  Q+ v1 C6 b+ n) m
    看你要用肿瘤干细胞做什么,基质胶一般用来检测细胞的侵袭、生长能力,如果你要做肿瘤干细胞的克隆、生长能力可以用软琼脂糖克隆实验,不过比较麻烦些
作者: ahfjwangrui    时间: 2010-8-13 09:11

回复 2# 胡问成 4 C: b+ A0 ^+ M6 Z$ z* o
4 I2 u* D; ?; |( P/ A# x( O
2 ?* @; f# m! U. ^
    我是看很多文献说是在培养干细胞时铺板用
作者: shihuijunm    时间: 2010-8-20 12:07

Application:Recommended for use as a cell culture substratum. For a 24-well plate, use 230-250 μl/well. For a 96-well plate, use 50-100 μl/well. Thaw gel overnight at 2-8 °C before use. The thawed gel may be diluted up to two-fold with cold (2-8 °C) Dulbecco′s Modified Eagle′s Medium. Gel dilutions should be made before it is added to the plate. ECM will gel within 5 minutes at 20 °C. For prolonged manipulations, work should be conducted below 10 °C. Dispense gel to wells of a multiwell plate using pipettes pre-cooled to 2-8 °C. A gel forms at 37 °C and maintains this form with culture medium for at least 14 days. Cells may be plated on top of a thin gel layer (0.5 mm) or cultured inside a 1 mm layer. When cultured inside, cells should be added to the gel prior to plating at a recommended density of 3-4 × 104 cells per mL. To dissociate cells from the gel, use protease (dispase) dissolved in PBS without calcium, magnesium, and EDTA at a working concentration of 0.6-2.4 units/ml. + o" A( E7 h2 q  u# ^2 u. Y4 b. b
  Epithelial cells, endothelial cells, muscle cells, nerve cells, tumor cells / H; M1 t* a  f; V7 r: J8 o
0 B5 V1 F/ f/ c9 f7 _$ i+ E* R
Caution:ECM gel may be stored up to 72 hours at 2-8 °C.
, Z$ }* u" f) U7 f5 A' W, Z$ F# d8 U" s! u% B) i0 u! i1 O
Other Notes:ECM gel is composed primarily of laminin, collagen type IV, heparan sulfate proteoglycan and entactin. Approximately 8-12 mg/ml basement membrane matrix protein in Dulbecco′s modified Eagle′s medium with 50 μg/ml gentamicin.& V; Z+ E& w/ F( I% i3 n( x. x
! }* C, h! m$ }1 |. t* v3 ]6 G
Properties5 k- n1 F8 V5 O0 R/ q2 ~) Z
sterility dialyzed against chloroform 4 f  K& `/ e7 a
form liquid 0 k% }& L; W) j5 T! m
concentration 8 - 12 mg/mL
/ v. D0 R5 q+ `7 W$ |surface coverage 6‑10 μg/cm2 ! q. u5 y* ?4 u; W( Y% n; g
total impurities endotoxin, tested
( [# y1 j' u; J7 H' N, ~# Osuitability cell culture tested
' B' w( j. @! [# xshipped in dry ice # V1 e# K8 `2 E  E2 Z
storage temp. −20°C
作者: hyx5415    时间: 2013-12-5 21:57

楼主用基质胶养肿瘤干细胞结果怎么样?CSC能长起来么,会不会分化?
作者: leiwang    时间: 2013-12-5 23:57

我用含生长因子的ECM培养CSCs,in matrigel 会分化,on matrilgel 会出现类似于tubeformation的结果,应该也是一种分化现象。
作者: hyx5415    时间: 2013-12-6 22:37

回复 leiwang 的帖子" Q! _; E! T7 Z3 x6 E4 D& q

# A' y) o; l4 d/ O这个分化和生长因子不知道关系大不大,还是matrigel本身基本成分促进了分化?
作者: hyx5415    时间: 2013-12-6 22:44

回复 leiwang 的帖子$ b8 n5 t5 U" C  _, x

+ e# @# U1 {) {8 D3 ?& o# X. |+ z还有请问你培养的时候是无血清培养还是含血清培养?谢谢!
作者: leiwang    时间: 2013-12-6 22:57

生长因子应该很重要,我培养的时候是完全培养基含血清的,就是为了做分化的。
作者: leiwang    时间: 2013-12-6 22:59

忘记说了,有一次我用BD不含生长因子的ECM做分化,效果差很多。生长因子在这里的作用应该是比较重要的。
作者: hyx5415    时间: 2013-12-6 23:10

回复 leiwang 的帖子/ I+ c/ b1 D" m$ ^* L9 X
: @  _* Y2 R( g% L; q. a
谢谢,我就是不希望它分化,希望能像悬浮培养那样长起来,BD matrigel好像只有生长因子减少型,你确定是不含生长因子的ECM?
作者: hyx5415    时间: 2013-12-6 23:12

还有你除了观察tubeformation,是通过什么方法检测细胞是否分化?比如我用ALDH1分选细胞在ECM里用无血清培养基养,是不是观察ALDH1表达变化可以确定细胞分化程度?
作者: leiwang    时间: 2013-12-7 00:40

是的, 我用的就是Growth Factor Reduced Basement Membrane Matrix。不可能完全不含生长因子的,含量少而已。我是用Sphere formation的sphere培养观察morphology。因为我们有非恶性转化的细胞,这些“正常”细胞的sphere作为对照,来观察形态学变化。




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