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标题: 核型分析G显带技术(附图) [打印本页]

作者: liulilin    时间: 2010-9-1 16:55     标题: 核型分析G显带技术(附图)

本帖最后由 细胞海洋 于 2010-9-1 18:26 编辑
( t1 P  I4 W6 c  v7 l; V$ E; ?
% i; h, J: \" c" L; Q; a+ {本人最近作染色体核型分析G显带,在G显带这一个总是得不到理想的G显带图片。我所用的方法是,(1)滴完片子之后75°烘烤3-4小时,室温放置过夜老化。(2)在消化前放在37°烘箱烘烤30分钟,(3)采用PBS配制胰酶 配成浓度为0.025%,(4)将配制好的胰酶放在37°水浴锅里保持恒温,(5)消化2分钟左右。(6)立即取出在蒸馏水中涮洗两次。(7)染色 ,(8)显微镜下观察结果。
2 `5 ^' q" ^; a     如下是我制作的结果图。     请各路高手指点指点 多多指点! 1.jpg    11.jpg

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作者: zpzp0312    时间: 2010-9-1 20:08

这是什么细胞的染色体啊?
2 ?* x$ y# i, u0 g另外,是什么动物的?+ m+ T$ j$ E' _- y  m' R
有多少条?2 I/ V. |( l5 V- C# I& ?
怎么感觉数不清楚?
作者: liulilin    时间: 2010-9-2 08:34

回复 2# zpzp0312
' T$ F) H/ V; b# B7 X) ?+ g9 _' h  [

# T8 O. v! K* ?) X& S0 a4 P    您好 这是人淋巴细胞的的,是的 条数是不够,但是我想探讨的是如何得到清晰的“深浅”显带效果图,请指教!
作者: zoutaoyuan    时间: 2010-9-2 10:52

胰酶的消化时间要根据环境温湿度和玻片上的细胞密度决定
! T3 q& r) o! u/ J2 I第二张图2点钟方向那条稍长的建议在镜下多看一下
作者: hawkyiger    时间: 2010-9-2 13:19

最近也在做间充质干细胞的G带显色,结果总是很不好,你能把详细点的步骤给我看看么,借鉴一下
作者: panyanfei    时间: 2010-9-2 14:22

这跟胰酶的浓度也有关吧
作者: lifescience1    时间: 2010-9-2 15:07

本帖最后由 lifescience1 于 2010-9-2 15:08 编辑
! ?) b" c+ R5 b: w' k% p1 ~1 C- V; K2 L# c! z" [" n
应该是用吉姆萨液染色液染色的吧  有可能是苏木精染液染色的哈 他们的染色有点相似
作者: liulilin    时间: 2010-9-2 19:52

回复 5# hawkyiger
) m3 @1 k  Q, V2 y
) x0 \* ^4 n3 \% G
( T% @) a$ z2 |  _1 ?    滴完片子之后75°烘烤4小时,室温放置过夜(因为烘烤完一般都是晚上了),第二天做前37°烘烤30分钟,  然后就是用PBS将胰酶配成百分之0.025的浓度, 并且将消化缸放置于30°水浴中 保持胰酶消化液的温度恒定,然后就是消化2分钟左右(具体时间具体定),快速在蒸馏水中涮洗两次。百分之十吉姆萨染色3分钟。
作者: zpzp0312    时间: 2010-9-2 20:52

我怎么记得胰酶浓度是0.25%
, D$ C7 O9 p7 Q! T  N5 H% r是不是楼主消化程度有些低啊?
作者: hawkyiger    时间: 2010-9-3 16:29

回复 8# liulilin $ g# \% q0 n  A! |; I
胰酶看到一般介绍是0.25%,0.025%会不会太低
作者: liulilin    时间: 2010-9-3 18:15

回复 10# hawkyiger 3 k$ g5 j( b$ n1 v

/ @4 H7 A, B3 |$ c+ U5 ~) |
, b6 V" f9 K) S  m    没有的,在做G显带消化的胰酶浓度一般都要配置在为0.025%-0.005%之间,但是一般惯用0.025%。
作者: dxb1985    时间: 2010-9-3 18:45

很多方法是0.025%,消化时间有点长,感觉染色体两臂被消化掉了。
作者: liulilin    时间: 2010-9-3 19:04

给大家看看标准图 和我最近做的图 标准图 我自己做的图   我做的与医院的还有较大差距。

图片附件: [标准图] G显带标准图.jpg (2010-9-3 18:16, 22.89 KB) / 下载次数 182
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图片附件: [我自己做的图] 我.jpg (2010-9-3 19:03, 11.05 KB) / 下载次数 192
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作者: 天鹅骨    时间: 2010-9-4 18:48

差别大吗?感觉挺好的啊
作者: liulilin    时间: 2010-9-5 08:19

回复 14# 天鹅骨
" B. W: s7 X9 T0 P4 s
- q' T6 \4 e2 _: W' |0 k  X: t9 a$ c3 p4 x( }
    是啊 我现在看看也还可以  可惜就是不稳定啊,  8 U* h5 v  X+ n* ~- `* R" S
昨晚忽然想到可能是片子老化不均匀,即染色体上的固定液挥发不彻底,所有导致同一个片子上有的消化过了,有的没有消化动。   等我改进再做了看看效果再与大家交流得失。
作者: illidancui    时间: 2010-9-7 19:28

本科在遗传实验室做过一段时间淋巴细胞g带染色,好像跟低渗时间和滴片高度湿度什么都有关系。看楼主第二个片子感觉挺好的,低渗时间长点,高度高点可能就会散的更开一点吧。带的数量应该够了。
作者: liulilin    时间: 2010-9-8 16:35

几乎所有资料显示:75°烘烤3小时, 我以前就是按照资料做的。
. }, ?9 T8 D) a1 l" B 在几经推测之下,在加长烘烤时间的情况下,75°烘烤16小时,(0.025%消化90秒)。终于做出了很不错的结果。$ u/ i2 M/ B( |' E1 U7 l
此贴算是可以圆满的结束了。
- r  f+ ]# g9 E3 Q* o: j感谢大家对贴的关注,
作者: koilai    时间: 2010-10-25 13:23

拍的图片还可以,至于你得不到好的结果,是因为你的得到的分裂相数量过少,你通过调整秋水仙素的浓度和处理时间,得到较多分裂相后,一定能找到合适的图,一片玻片至少可以找到十个以上分裂相才比较有统计学上的意义
作者: kokocream    时间: 2011-1-19 15:32

请问,你上面照的片子是多少倍,什么镜子能看清楚?
作者: farmer    时间: 2011-6-14 09:30

学习了
作者: he_liang    时间: 2011-7-1 15:21

楼主做得真好!可以跟医院有的拼了!想问一下,要是老化后的片子没有及时消化,如何保存片子呢?
作者: narajie    时间: 2011-10-17 16:07

你好,我现在做的显带也像你刚刚开始那样,后来你怎么做出后面那两张图那么好的?能告知下怎么做的么?
作者: open1230    时间: 2011-10-27 17:08

回复 liulilin 的帖子
; H' O6 L' A$ ^$ ?. F4 D( U
2 f. }* @: I% b请问G带染色是在多大倍数显微镜下观察的?
作者: liulilin    时间: 2011-10-28 11:58

回复 open1230 的帖子
7 |: e* u* ^; E/ ^- `' Y& u0 |7 @* x$ O, n' n; ?% @
1000倍  也就是 100倍物镜 + 10被目镜
作者: liulilin    时间: 2011-10-28 12:00

回复 he_liang 的帖子) r- z; y- i$ T. N1 L) u0 N

1 J4 Y; w3 ^: O8 C, ^37度保存
作者: liulilin    时间: 2011-10-28 12:01

回复 narajie 的帖子
2 [& J2 Q# {# ?5 x7 H6 x9 U$ }2 m, T
1 V' s. R3 R5 U# C! p7 t后来的是 75°烘烤16小时 做的。
作者: narajie    时间: 2011-10-28 15:26

回复 liulilin 的帖子
7 q+ v( h6 `1 u6 U9 j- w, Z5 ]  n; @- {7 q- ]
就只是这样就稳定么?因为我现在也是像你刚发帖那时候那样..后来逐渐有一点,但是一般显得好的10几张片就1个视野不错...能不能分享下你的整个实验步骤?我烤过夜之后消化染色体会出现空泡状那样?
作者: liulilin    时间: 2011-12-4 10:21

回复 narajie 的帖子  i5 X' K  W7 I6 _% I# s
3 g, P6 j$ i6 w5 e8 e' ~
这还有一个最最关键的就是摸索胰酶消化的浓度和消化时间,你说的出现空泡状是因为消化过渡。
作者: narajie    时间: 2011-12-16 10:46

回复 liulilin 的帖子
: h$ m( G+ ], ~( T, }- t" I& T0 a  _* k' R
恩恩,的确这个不好把握,唉..-0-




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