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标题:
关于MEF制备的小疑问
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作者:
your1024
时间:
2012-5-13 18:21
标题:
关于MEF制备的小疑问
请问一下,养的MEF里面混有杂细胞,比如上皮样的细胞,还可以用来做饲养层么?如何避免取到杂细胞呢?取胎鼠的时候一只一只的取,总感觉后面的胎鼠在PBS里泡的时间长了,内脏什么的都不好分离了。请教!
作者:
cochongg
时间:
2012-5-13 20:47
:L只要没有污染,混有一点杂细胞没问题,应该传下代,或者冻存复苏就不见了杂细胞了。置于你怎样会混进杂细胞,我也不确定,要看你操作过程。
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但是有种可能是,你取得胚胎太成熟了。细胞分化较为全
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再说内脏不好分离应该和泡PBS太久没有太大关系,
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或者这样说吧,泡太久确实不利于实验,一般30分钟分离玩15个胚胎速度就算ok。
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弯头镊子一夹住就去掉了,宁可牺牲一点,也不要残留内脏。
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这个还是:熟能生巧。
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作者:
cochongg
时间:
2012-5-13 20:48
给你发个步骤参考一下:)
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1.MEF的获取:(步骤4-12已经进行实践)
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(1)激素处理小鼠,同期发情和超数排卵
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(2)2:1合笼过夜(雌:雄)*
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(3)取出有阴道栓(即乳白色或淡黄色冻胶状物,确定其已经怀孕)的开始记时间为0.5天
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(4)取出妊娠12.5-14.5天的小鼠为实验材料( Y, @( F/ U+ B9 ?) t- L
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(5)颈椎脱臼法处死孕小鼠,放于盛有75%酒精的烧杯中消毒,拿到超净工作台上解剖,先剖开腹部皮肤,暴露子宫,然后换另外一套手术器械,用眼科镊提起近子宫颈端,分离子宫系膜,剪断子宫角,取出子宫,置于装有PBS的培养皿中。
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(6)取出胎鼠,在PBS中洗涤数次。去除头、尾、内脏和四肢,仅留躯干部。在PBS中充分漂洗,弃除红细胞。(用两个镊子配合即可除去羊水膜、胎盘、头尾、内脏、四肢)(若是想培养神经干细胞,则用剪刀剪取前脑进行培养即可)(可以一起处理多个胚胎)
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(7)在新的培养皿中加入少量PBS,放入躯干部分,用眼科剪刀剪成1mm3以下的组织块碎片(可以剪的更碎一点,下步的消化时间就可以缩短)。. T. P& e, s5 o% `0 b3 L# b z
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(8)加入2~4ml 0.25%胰蛋白酶,培养箱中消化10—15min,消化结束后加入等体积(多加点也行,只要不是少加,保证彻底的终止消化反应)的MEF Medium终止消化反应,轻轻吹打,使细胞分散。(做原代消化的时间稍长,胰酶用量也大,若是做传代,则只需加入500微升,最多1ml的胰酶,消化1~3min。)(躯干组织不易消化,做原代和传代时,故都用0.25%胰蛋白酶;而脑组织较易消化(脑肿瘤组织),原代和传代都用0.05%胰蛋白酶。)(消化可能不完全,也可室温静置5-10min,弃组织块,这样下面过滤就相对容易。)(如果消化得到的细胞太少,可以离心弃上清,PBS洗涤,重新加胰酶消化)(胰蛋白酶,Trypsin ,最适条件pH8.0,37度,溶液中钙镁离子和血清会降低其活力,故消化用的胰蛋白酶中加入了EDTA。消化结束时加入含血清的培养基即可终止反应)
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( 9)将收集的细胞悬液离心,1500rpm, 4min,弃上清,加入红细胞裂解液(3~5倍体积的细胞体积),轻轻吹打1min,离心除上清,若仍有红细胞残留,则须继续进行红细胞裂解步骤。 i6 F- J, J3 b, y. [+ E- k7 `
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(10)离心,弃上清,重悬细胞,过滤(200目筛网)并收集滤液,离心除去上清。$ x. J' Z5 v s
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(11)用MEF Medium洗涤沉淀,离心除上清,重悬细胞,铺板即可。置于37度5%CO2饱和湿度培养箱中培养。(一只老鼠会有多个胚胎,得到的单细胞,可铺到三个培养皿中或者更多的培养皿中进行培养)9 P. ^* m; x, K) m" B
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(12)第二天换液,随后每2天换液一次。培养2~4d后,MEF接近汇合,即可按1:3比例传代培养。6 s5 ~* C' H/ n" r) v/ F
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要点: 无菌是操作关键, 动物皮毛不能直接或间接接触到子宫, 分离子宫时必须换用另一套无菌的眼科剪和眼科镊。培养同一株胚胎干细胞最好延用相同品系小鼠来源的成纤维细胞。9 l( a. }; _! p
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要点: 仔细观察原代细胞有无被杂菌污染的迹象, 并且检测支原体, 确定无污染后传代扩增。
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作者:
huangcong1988
时间:
2012-5-13 21:45
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cochongg
的帖子
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想问一下,就是一般一只孕鼠一般就是十几个胚胎吧(比如说有12个胚胎),那么去掉四肢,内脏,头以后,一个胚胎里面加多少胰酶(0.25%)呢,是2~3ml吗?如果说12个胚胎的话,是不是要加24~36ml胰酶?可以把所有胚胎都置于一个50ml离心管中,然后一起加胰酶么?还有就是最后终止消化是加多少MEF 培养基呢?最后是用多大的瓶子分装得到的细胞悬液呢?T25还是T75呢?大概能得到多少瓶细胞呢?比如T25瓶
作者:
ligangtiancai
时间:
2012-5-13 21:54
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huangcong1988
的帖子
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我的经验是:
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去掉四肢、头、内脏和尾巴,将躯干转移至新的培养皿中,加入几滴胰酶,剪切20~30下,然后转入T75 Flask中,按照每个胚胎1ml的量加入胰酶,适度吹打后直立放入37度孵箱消化5分钟,取出后充分吹打后加入MEF培养基终止,按照每个T75瓶2-3个胚胎分装。3~4天后按照1:3传代
作者:
cochongg
时间:
2012-5-13 22:52
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huangcong1988
的帖子
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:)每个胚胎800-1200mL,终止时用MEF培养基是两倍胰酶体积,50ml的离心管一个就可以容纳。
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2个胚胎接一个T75,建议不要用T25接
作者:
your1024
时间:
2012-5-13 23:04
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cochongg
的帖子
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我就是感觉拿镊子夹的时候内脏不是那么容易破出来,所以才怀疑是不是泡久了不好处理了,刚开始的时候是很容易的,时间越长越不好处理。看来还是要多做,多练。
作者:
cochongg
时间:
2012-5-13 23:20
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your1024
的帖子
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:):loveliness::)
作者:
your1024
时间:
2012-5-13 23:21
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cochongg
的帖子
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1、激素处理是必须的么?主要是用什么激素处理?PMSG和HCG?
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2、消化时间要这么长么?这么长时间会不会对细胞有影响?
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3、红细胞裂解也是必须的么?用什么裂解液呢?自己配还是成品?有什么成品推荐呢?
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每个胚胎800-1200ml??可以所有胚胎放在一起进行处理么?一起消化,然后按比例分配?用一个胚胎一个10cm的皿可以么?
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问题有点多哈!谢谢指教!
作者:
your1024
时间:
2012-5-13 23:28
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ligangtiancai
的帖子
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请问一下,“然后转入T75瓶”是怎么回事呢?消化后吸到T75瓶里,然后再终止?T75瓶一般要加多少ml的培养液呢?那到P3、P4的时候做成feeder的时候从T75的瓶里转到10cm皿的时候要按什么比例呢?谢谢指教!
作者:
ligangtiancai
时间:
2012-5-13 23:38
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your1024
的帖子
z# ~# k m) h
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1.剪碎后一点点的用滴管转移到T75中,然后按照每个胚胎1ml去补加胰酶(前面剪切的时候只加1~2滴的胰酶)
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2.放入37度孵箱5min消化,注意T75瓶子要直立。
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3. 5min后取出,吹打20~30下
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4. 加MEF培养基终止,适度吹打,分装。
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每个T75加13~15ml培养基
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铺feeder前需要计数,按照3万/cm2(CF-1)或6万/cm2(C57)去铺
作者:
cochongg
时间:
2012-5-13 23:39
首先激素处理目的是为了促排卵,能够得到更多胚胎,得到更多同一批次的MEF,确保实验用MEF无差异,以避免MEF批次间差异影响ES生长等等,,,强调一点:胚胎数量不足时,不要将不同来源的胚胎混合。
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那个同一胎的可以一起消化,因为是原代组织消化,时间略长,其实也要把握好,
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置于用培养瓶还是培养皿嘛,主要是控制好细胞密度,都可以
作者:
huangcong1988
时间:
2012-5-14 09:57
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cochongg
的帖子
. p9 E2 U2 k, s
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哦,也就是说一个胚胎大概1ml左右的胰酶?然后终止消化就用2ml左右培养基,那么50ml的离心管还是够的,接到T75瓶里面的话,一个T75瓶里面接多少体积呢?还有消化,冻存的时候需要多少胰酶呢?我们一般用T25,t75比较大,用得少
作者:
huangcong1988
时间:
2012-5-14 09:59
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ligangtiancai
的帖子
+ i! S% D5 ` ^ C8 s
+ G% S4 T/ w) J# C, ]% L8 m
您是直接将组织在T75瓶里消化吗?这样的话,胰酶跟组织的接触面积大,但是,最后组织块怎么去除呢?
作者:
huangcong1988
时间:
2012-5-14 10:02
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ligangtiancai
的帖子
& }7 W+ @+ B+ p1 M
- }: [# t- f0 K; v4 W
您看可以这样不,就是组织剪碎以后,直接加入胰酶(一个胚胎1ml),然后再吸,这样是不是好吸一点?
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