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楼主
发表于 2011-1-15 13:12 |显示全部帖子
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本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-15 13:13 编辑 8 H  k4 w' z7 X6 Y5 \
% R3 G: f2 y) y$ N% p$ b0 G
我被你的问题弄糊涂了,你说你连接体系10ul,其中目的片段8ul,载体1ul。余下的1ul是连接酶么?不用加Buffer的么??你用的是哪一种ligation kit啊?
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沙发
发表于 2011-1-15 15:51 |显示全部帖子
回复 mckf111 的帖子
$ k5 V! a. S: f3 X. r, i* V) p. G2 G) G. \5 a' K* i/ P
你的目的片段用什么溶解的?如果是TE的话,换成MQ。DNA浓度不够的情况下,可以先做乙醇沉淀再连接,不要用大体积的DNA溶解液做链接体系,离子杂质很多,影响连接效果。frementas没用过。我通常取1ul(50-100ng)电泳,一般不会只有一条带,还会有一些小size的杂带,但目的片段与载体连接后的产物带最亮。想不通啊,你的DNA都哪儿去了呢?
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藤椅
发表于 2011-1-15 16:22 |显示全部帖子
本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-15 16:23 编辑
1 t% b2 v9 \) W6 x; R. E& d0 v  t; _  p6 y
Milli-Q water就是蒸馏水再0.22um过滤的那种,我不知道是叫灭菌水?还是去离子水?还是什么的。离子Buffer不适合大体积用来做连接体系的,达到总体积1/3就最大限度了。哦,你胶回收之后做了电泳检测了么?估计大概浓度多少?7.8ul是多少ng?
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板凳
发表于 2011-1-15 17:24 |显示全部帖子
哦,超纯水啊。如果你用离子溶液溶解的DNA,在做连接的时候你所加的DNA溶液要小于连接体系的1/3。
  v' L9 q, b7 M+ L  \* C比如:连接体系9ul,那么DNA<3ul; 要是用超纯水溶解的,就没关系了,但是由于缺乏离子环境不能长时间保存DNA。
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报纸
发表于 2011-1-15 19:09 |显示全部帖子
你们都是猛人结果可以么?不会变少的,你没明白我的意思,DNA量没有变,是被浓缩了。比如:500ng质量不变,体积从7.8ul到2ul。我从没用过ddH2O做过分子实验,都是用的MQ,不过我想都一样吧。
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地板
发表于 2011-1-16 11:35 |显示全部帖子
本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-16 11:59 编辑 - i, k" c/ O; c- m3 H
& O% `0 F7 o( f0 O. {6 I
回复 mckf111 的帖子" I: ?9 d5 X+ N% k1 |) E3 _. p
0 \. k' J  x, L9 X' N
1,乙醇沉淀步骤:我刚发了新鞋,你看看吧,希望对你有帮助。
% g: Q9 o5 j! c  Phttp://www.stemcell8.cn/forum.ph ... mp;extra=#pid269345/ M; s+ o# \% O  R  Z" g0 l
2,MQ和dDW不是问题,不用在意。
' C. e- c! N) g3 w4 U$ s$ h3,连接后由于杂带多,亮度确实会弱很多,看你的电泳结果还好啊,说明连接没问题。最上边由于没有marker,估计不出大小,但3,4泳道大小有差别,貌似连接了。建议转化,扩增,检测。杂片段在转化后自有抗性筛选* t4 x. r2 G( ~# ?% |
4,你个人认为这和你之前电泳结果相似么?想看看你发帖子那次电泳图。
6 i4 r6 C! T& D; R  F; D
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7楼
发表于 2011-1-16 11:56 |显示全部帖子
本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-16 12:10 编辑 . _( @! p# ]; N; \8 G/ f) W8 G
; B5 R  x5 i- I( ?
回复 scl6682005 的帖子& G  x1 b7 m: ?5 j6 T) _- [0 `7 ]

; V5 j9 v6 v1 l. P个人认为跑胶查看是很有效的方法,可省时省力省money,值得尝试,目前111所要积累的就是经验,如何判断连接结果。我想你没有检测过,其实结果并不只有3种片段。虽然1ul上样,可能是100ng,500ng,1ug 做实验‘老老实实’,那是technician;做科研,不能太‘老实’,有想法就可以尝试啊。
- w/ r; P2 M1 r$ o& g9 v0 G
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