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楼主
发表于 2011-1-15 13:12 |显示全部帖子
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本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-15 13:13 编辑 ) |4 H7 R( t7 a3 u3 J' y! T2 P6 j9 {* V

2 p1 P3 I; @/ c+ d& [' |( Y我被你的问题弄糊涂了,你说你连接体系10ul,其中目的片段8ul,载体1ul。余下的1ul是连接酶么?不用加Buffer的么??你用的是哪一种ligation kit啊?
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沙发
发表于 2011-1-15 15:51 |显示全部帖子
回复 mckf111 的帖子% M4 |! _' D7 W+ T. H9 d

9 ?3 t. z! r2 }你的目的片段用什么溶解的?如果是TE的话,换成MQ。DNA浓度不够的情况下,可以先做乙醇沉淀再连接,不要用大体积的DNA溶解液做链接体系,离子杂质很多,影响连接效果。frementas没用过。我通常取1ul(50-100ng)电泳,一般不会只有一条带,还会有一些小size的杂带,但目的片段与载体连接后的产物带最亮。想不通啊,你的DNA都哪儿去了呢?
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藤椅
发表于 2011-1-15 16:22 |显示全部帖子
本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-15 16:23 编辑 6 l; E5 `$ F' A7 Z: o7 B, N$ y  D

* v" X3 ^" r# m. Z& tMilli-Q water就是蒸馏水再0.22um过滤的那种,我不知道是叫灭菌水?还是去离子水?还是什么的。离子Buffer不适合大体积用来做连接体系的,达到总体积1/3就最大限度了。哦,你胶回收之后做了电泳检测了么?估计大概浓度多少?7.8ul是多少ng?
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板凳
发表于 2011-1-15 17:24 |显示全部帖子
哦,超纯水啊。如果你用离子溶液溶解的DNA,在做连接的时候你所加的DNA溶液要小于连接体系的1/3。
3 G* C2 C* |( c9 O( h比如:连接体系9ul,那么DNA<3ul; 要是用超纯水溶解的,就没关系了,但是由于缺乏离子环境不能长时间保存DNA。
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报纸
发表于 2011-1-15 19:09 |显示全部帖子
你们都是猛人结果可以么?不会变少的,你没明白我的意思,DNA量没有变,是被浓缩了。比如:500ng质量不变,体积从7.8ul到2ul。我从没用过ddH2O做过分子实验,都是用的MQ,不过我想都一样吧。
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地板
发表于 2011-1-16 11:35 |显示全部帖子
本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-16 11:59 编辑
4 j, Y; k: N0 w$ q# R
% |  Z: F+ L" |9 I* S4 ?回复 mckf111 的帖子5 i& {. V8 v5 y
9 m4 ?( Q* W& u$ G8 Q  x
1,乙醇沉淀步骤:我刚发了新鞋,你看看吧,希望对你有帮助。/ M. n- K3 u/ K
http://www.stemcell8.cn/forum.ph ... mp;extra=#pid269345
$ J% c2 D) b+ \2,MQ和dDW不是问题,不用在意。
- J, _2 c  P2 w& V: ~$ P; ^3,连接后由于杂带多,亮度确实会弱很多,看你的电泳结果还好啊,说明连接没问题。最上边由于没有marker,估计不出大小,但3,4泳道大小有差别,貌似连接了。建议转化,扩增,检测。杂片段在转化后自有抗性筛选
/ ]# G$ l1 e  i9 ~7 Z) j' A4,你个人认为这和你之前电泳结果相似么?想看看你发帖子那次电泳图。
1 K* U9 C3 b8 _9 ]8 ^
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发表于 2011-1-16 11:56 |显示全部帖子
本帖最后由 chochochocho 于 2011-1-16 12:10 编辑 ! X" n9 w/ v6 |' C- F

8 r& w5 z0 I6 H0 l回复 scl6682005 的帖子5 z) q. E1 i& X- ]7 d1 N% g0 K
9 }' |% b: ^7 P0 _% R3 X
个人认为跑胶查看是很有效的方法,可省时省力省money,值得尝试,目前111所要积累的就是经验,如何判断连接结果。我想你没有检测过,其实结果并不只有3种片段。虽然1ul上样,可能是100ng,500ng,1ug 做实验‘老老实实’,那是technician;做科研,不能太‘老实’,有想法就可以尝试啊。, h3 b' W+ v/ w, C) A9 N' Z
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