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ada800515 发表于 2011-3-11 11:00 
' H3 v) D5 `% \/ z1 Y; V: b3 E$ w共转染pMX-IRES-GFP-hNANOG,PCL-ECO,还有VSVG到293T细胞,及单独转染pMX-IRES-GFP-hNANOG到293T细胞,分别用 ...
: D& L; v$ ~( ~6 m2 F1. 转293T细胞, 用Lipo2000要比Fugene6效率高3 z# ]0 H6 u( {' H: K
2. 单转一个质粒肯定要比共转几个质粒产生的荧光多. 所以你单转pMX-IRES-GFP-hNANOG时荧光相对多些.+ v. c8 l" t$ N
3. 你转pmaxGFP的对照效率很高,说明你的转染操作没问题. 另外这两个质粒的大小上,pMX-IRES-GFP-hNANOG基本大于对照的 pmaxGFP 1.5Kb左右,相对来说转染效率会低些,但不会差的太大.. u, O0 y7 h( ?' L! x
4. 一个很可能问题就出在质粒结构上. 不知道你用的质粒骨架是什么样的, 按照查到的一个结构图看, 你用作重组的pMX-IRES-GFP质粒和作为阳性对照的pmaxGFP质粒, 唯一的不同就在于重组的载体GFP前加了IRES序列. 那么也就是说, 转染细胞后, 两个质粒的翻译机制是不同的. pmaxGFP依赖5'帽结构和核糖体结合进而翻译GFP, 而pMX-IRES-GFP依赖IRES序列和核糖体结合翻译GFP, 一般来说, IRES的效率是相对低的,所以肯定pMX-IRES-GFP产生的GFP要弱于pmaxGFP. 但是这两个质粒在转录水平上应该是相同的.
3 k2 n" j; m1 R" E4 y4. 以上是分析pMX-IRES-GFP和pmaxGFP的区别, 而对于你的pMX-IRES-GFP-hNANOG, 同样其转录水平应该是不受影响的, 而在翻译水平, GFR依赖IRES序列翻译, 而hNANOG依赖和pmaxGFP相同的5'帽结构翻译,所以理论上说, hNANOG的翻译表达水平应该和阳性对照的基本相同, 只是你的实验无法观测到., g; O6 }8 {, B- |2 t# c* o, ~
5. 如果要检验是否真的是这个原因, 可以将pMX-IRES-GFP-hNANOG和对照的pmaxGFP转一个普通细胞系, 然后做Real-Time PCR检测转录水平是否无差异. 如果转录水平确实无差异,而GFP的荧光又弱,那基本就能确定是结构问题了. % G' p' k; S( y. \
6. 另外一个小的可能原因是, 你的两种质粒在抽提纯化时是否是同时操作的.因为我们之前发现, 质粒的抽提纯化方法, 包括有时同样的Kit用不同的批次, 抽出来的质粒其转染效率都是有差异的. 所以如果你作为对照, 最好保证质粒是同时纯化的. |
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