关于ＭＥＦ的生长状态

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今天刚复苏的ＭＥＦ，１０００万复苏到了３个Ｔ７５瓶中，每个瓶１７毫升完全培养基，，拍照如图。发现细胞的状态不是很均匀，有大有小，请大侠分析一下细胞的状态怎么样？

zsycgz

支原体全世界60%以上的实验室都有污染的。如果是用干粉配的培养基，常见的滤膜一般是0.2um，是不能够滤掉0.1-0.3um的支原体的。所以如果有很高的清洁要求的话，最好还是买液体成品培养基。但是，钱啊。。。。

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也就是说上图中的虫子 不能确定是啥？ 怎么能确定吗？ 还是说这种情况 的虫子有很多种，并且一旦感染，没有确定是哪种的必要直接扔掉 呢？

cortex

肉眼能够看见的小虫子，应该不是支原体，你最好看看这个，先了解一下http://baike.baidu.com/view/16209.htm#sub16209
/ l6 e3 A9 Z% A$ J1 Q3 p至于具体是什么，黑胶虫？传说中的黑胶虫，不好说？
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% E% P1 F' d9 ^. d& r8 t! Z$ \补充内容 (2011-4-25 10:30):
+ f: r2 w9 V- L8 S, r: N6 i2 g% T支原体的大小为0.2～0.3um; I3 c& r/ h# T) T2 ?2 W! c

1 G3 \2 I4 Q* ~# {5 k5 |& d补充内容 (2011-4-25 10:34):& [! h* l2 Q% U& C
支原体是一种大小介于细菌和病毒之间(最小直径0．2um)并独立生活的微生物。约有1%可通过滤菌器。支原体无细胞壁形态呈高度多形性。可为圆形、丝状或梨形。
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支原体形态多变，在光境下不易看清内部结构。电镜下观察支原体膜为三层结构。其中央有电干密度大的密集颗粒群或丝状的中心束。支原体多吸附或散在于细胞表面和细胞之间。横断面与细胞微绒毛相似，但微绒毛电子密度比支原体小，且中央无颗粒群
: l7 J6 H1 D) X3 ]或中央束。+ V+ E/ J6 s) z( v" g! i

5 {' J: j5 _8 ]4 s! U支原体代谢需固醇类物质、部分种类需要精氨酸、O2或葡萄糖，每一种支原体都有自身持点。多数支原体适合于偏碱条件下生存(PH7．6-8．0)，对酸耐受性差。对热比较敏感，对一般抗生素不敏感。
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& X% N9 U7 D/ N支原体污染细胞后，培养液可不发生混浊。多数情况下细胞病理变化轻微或不显著，细微变化也可由于传代、换液而缓解，因此易被忽视。但个别严重者，可致细胞增殖缓慢，甚至从培养器皿脱落。
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; C2 Z* ?' P* ]2 c- }& j  E为确定有无支原体污染可做如下检测：8 n* j+ l  H  u8 Q# M6 L- ]' K
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①相差显微境检测：将细胞按种于事先放置于培养瓶内的盖玻片上，24h后取出，用相差油镜观察，支原体呈暗色微小颗粒位于细胞表面和细胞之间。
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②荧光染色法：荧光染色用能与DNA特异性结合的荧光染料Hoechst 33258，可使支原体内含有的DNA着色，染色后用荧光显微镜观察。具体方法如下：首先将细胞接种盖玻片上，在细胞未长满前取出玻片，用不合酚红的 Hanks液漂洗一下，用l： 3醋酸甲酵固定10Min，然后用生理盐水漂洗，置于用生理盐水配浓度为50pg／ml的Hoechst 33258中染色10min。染色后用蒸溜水洗1-2min，向细胞面滴加pH5．5磷酸缓冲液数滴，然后置荧光显微镜下观察。镜下支原体为散在于细胞同围或附于细胞膜表面的亮绿色小点。
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③电镜检查；用扫描电镜方法简便快速，也可以利用透射电镜。9 n  D- Q! e( Y# C$ w6 Z

/ Q: z4 P) J1 E/ L! ]④DNA分子条文检查或支原体培养等方法：检出率高，但方法较为复杂。/ `& k) V+ l! y6 d0 F# M/ \

2 w% T* U$ E$ g  F0 @0 p支原体是一类缺乏细胞壁的原核细胞型微生物，大小一般在0.3-0.5μm之间，呈高度多形性，有球形、杆形、丝状、分枝状等多种形态。它不同于细胞，也不同于病毒。支原体用普通染色法不易着色，用姬姆萨染色很浅，革兰染色为阴性。支原体可在鸡胚绒毛尿囊膜上或细胞培养中生长，营养要求比细菌高。& h# D: I% P0 N* c+ L# z* c

! q+ a$ ?9 {6 Z2 R7 R细胞培养（特别是传代细胞）被支原体污染是个世界性问题。在细胞培养中支原体感染发生率达到63%，支原体感染发生后能改变细胞的DNA,RNA及蛋白表达，又不能通过可视法对其进行检测，而且它对细胞的生长率影响较小，不易引起注意。国内外研究表明，95％以上是以下四种支原体：口腔支原体（M.orale）、精氨酸支原体（M.arginini）、猪鼻支原体（M.hyorhinis）和莱氏无胆甾原体（A.laidlawii），为牛源性。以上是最常见的污染细胞培养的支原体菌群，但能够污染细胞的支原体种类是很多的，国外调查证明，大约有二十多种支原体能污染细胞，有的细胞株可以同时污染两种以上的支原体。; P' b9 i! w+ z5 i

% `/ M* k$ [" p" I$ B支原体污染的来源包括工作环境的污染、操作者本身的污染（一些支原体在人体是正常菌群）、培养基的污染、污染支原体的细胞造成的交叉污染、实验器材带来的污染和用来制备细胞的原始组织或器官的污染。; D$ Z; Q: |/ O3 i+ J# u% D
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组织细胞培养工作中，主要从以下几个方面来预防支原体的污染：控制环境污染；严格实验操作；细胞培养基和器材要保证无菌；在细胞培养基中加入适量的抗生素。支原体污染细胞后，特别是重要的细胞株，有必要清除支原体，常用方法有抗生素处理、抗血清处理、抗生素加抗血清和补体联合处理。支原体最突出的结构特征是没有细胞壁，一般来讲，对作用于细胞壁生物合成的抗生素，如 β-内酰胺类、万古霉素等完全不敏感；对多粘菌素（polymycin）、利福平、磺胺药物普遍耐药。对支原体最有抑制活性及常用于支原体感染治疗的抗生素是四环素类、大环内酯类及一些氟喹诺酮；其他类抗生素如氨基糖苷类、氯霉素对支原体有较小抑制作用，所以常不用来作为支原体感染的化学治疗剂。1 g+ r$ ~: l0 `4 J2 Z1 C" n
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InvivoGen公司研究开发的新一代支原体抗生素M-Plasmocin能有效地杀灭支原体，不影响细胞本身的代谢，并且用M-Plasmocin处理过的培养细胞，不会重新感染支原体。% ~/ R; {2 B% K4 G0 v$ L  K2 H

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2 {5 E) O" c4 i3 k) D& d# [' ?0 A[media=x,500,375][/media]还没有经过MMC处理，可能都不能用了。所说的支原体就是照片上所示的好多小虫子，黑的，可以看到游动，据说也叫黑焦虫 对吧，没有确定的名字，不知道你们叫什么

cortex

不知道你的细胞是否经过丝裂霉素处理？如果是用来养干细胞，那就要根据你的干细胞来确定饲养层的密度了，如果是扩增传代，问题不是很大。
% Y( P* @( b6 S1 C, z; c9 ]: ]& R  p此外，你说你的前辈说支原体长疯了，是什么意思？这个好像不能只通过肉眼观察吧，肉眼观察细胞状态只能做完判断依据，最好做支原体检测，染色或者PCR基本上都可以。$ ?! N5 m4 x& J( M3 i0 s

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+ E1 a) G5 D. U( C8 o9 j6 `谢谢 下次注意点

张也行

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细胞太稀长满的速度会很慢，细胞会慢慢拉长，这样的细胞做饲养层不好啊

573639471

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) T6 k5 r/ d/ a/ ?3 ~- y" Z稀了会怎样？

张也行

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3 ~2 F8 H  K% Q# Y6 s
: S& ?+ P5 Q+ H' c) b+ ^支原体怎么会看的出来呢，买试剂盒检测下吧。1 \  u! R$ Q3 X, j5 e* G/ b" r& q
你复苏的密度是不是有点小啊？毕竟复苏的时候会有很多死细胞啊。
+ X! x0 j! D4 ^, l6 T1 w* S细胞有大有小应该跟细胞的状态有关吧。你的悬浮的细胞看着还可以，只是感觉有点稀哦。