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标题: 如何将细胞单克隆挑下来 [打印本页]

作者: zoe    时间: 2010-12-16 10:00     标题: 如何将细胞单克隆挑下来

在培养皿中的贴壁细胞,如何将细胞单克隆挑下来?
作者: starlancer    时间: 2010-12-16 11:00

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$ w4 L" {: w% V. y) h, \& b8 }! [0 k稀释法或者显微操作,虽然后者有点杀鸡焉用牛刀的感觉。我能想到的是这两个,不知道还有啥别的方法
作者: kostarcell    时间: 2010-12-16 11:19

高压过的棉签蘸下来,把棉签放在50ml离心管,离心管放饭盒里去高压。我忘记棉签是不是蘸一点稀释的胰酶了…… 你自己试试吧
作者: zoe    时间: 2010-12-16 14:57

如果用克隆环呢,好操作吗?
作者: yezi_830823    时间: 2010-12-16 15:57

我觉的用克隆环不是很好操作,它总是漂起来,还不如用显微操作呢
作者: zoe    时间: 2010-12-16 18:26

显微镜下用枪头吸出来后直接吹散接种,还是要用胰酶吹散?
作者: wxyWXY    时间: 2010-12-16 18:43

用胰酶吹
作者: 大刀无敌    时间: 2010-12-18 00:43

挑单克隆就是用白枪头挑的,然后胰酶消化。
作者: qingbao    时间: 2010-12-18 02:08

如果是带荧光标记的就很好挑(没有标记的就稍难一些),在显微镜下找到,在培养皿底部相应位置做上标记。至于用不用胰酶需要看具体细胞株而定,比如像293这样的细胞就不需要胰酶,其他贴壁牢的细胞则选用胰酶。
作者: Temin    时间: 2010-12-18 10:47

我们是这样做的,我觉得比较简单,但是较为考验操作技术,不过多挑几个培养皿,熟悉一下就能挑到很多的克隆。简单的来说,是这样的:首先转染后的细胞(或者其他细胞系)按照一定的比例稀释到100mm培养皿(比如1:50,1:100,具体根据那种细胞生长速度的快慢而定,保证之后长出的单克隆与单克隆之间有足够的间隙空间,方便挑克隆),加抗生素选择性培养,大概一周到两周(视细胞系而异)后能长出肉眼可见的细胞单克隆,不是很清晰,但在超净台中对着日光灯能看清楚的;这时准备挑克隆了,准备一块96孔板,加上100ul/well培养基;准备一盒灭菌后的200ul普通黄枪头(20ul的白枪头我试过不好用);先吸掉培养皿里的培养基,用PBS润洗一遍细胞(要是熟练了挑克隆的速度比较快,我们也直接用胰酶润洗,另外对一些难消化的细胞,用胰酶润洗的效果比PBS好),再用100ul移液枪调到20-30ul量程,吸取大约10ul左右胰酶,在日光灯下对着细胞克隆吹打并吸取,加到96孔板中即可。
6 Y4 p% Y5 N2 _: X; x刚开始用这种方法,可能吸不上细胞,导致整个96-孔板可能基本上白板,没几个克隆被挑出,但多练习几次就可以了,基本上一吸一个准;不过,这种方法容易导致克隆不纯,这也是为什么之前克隆稀释的时候要按照一定的比例,保证克隆与克隆之间有足够的间隙;但是,还是不能保证克隆很纯,在鉴定出阳性克隆之后,如果觉得有必要,克隆到时候再做一个单克隆稀释。( X  a6 {% b% N
我们用这种方法很久了,觉得比较有效,已经成功构建了很多的细胞系。
作者: zoe    时间: 2010-12-19 00:21

能否在显微镜下直接用枪头把贴壁细胞吸出来或刮下来,然后再用胰酶吹散?
作者: cicadacjk    时间: 2010-12-19 10:39

用玻璃巴氏管拉成细针,稍微融下头部,可以很好地在显微镜下分离克隆
) l2 H6 T" u; z  j7 \  T4 u* M7 E' Q, D然后用口吸管吸就可以了(胚胎操作的都会)( @( s& v$ w: ]: _, {, V1 {2 y
见到的其他方法都没这个精确
作者: st_oliver    时间: 2010-12-19 11:05

回复 zoe 的帖子- j/ }- h1 l) ~5 o2 C+ G

4 G% ~7 h/ a+ n' q+ t0 h本人最近一直在挑克隆,挑的眼睛都花了,荧光的和没有荧光的都挑过。
4 b. v, K, s4 R/ o2 o有多种方法7 V$ n8 |2 D! k2 }6 o& m. [+ F4 ~1 |
如果你的克隆比较大,且比较稀疏,皿又比较大,想批量操作的话,可以用小的滤纸片原片,泡过胰酶的,消化,然后一个滤纸片放在一个96孔板进行扩培!
2 n. \  R# m5 C5 n$ H* h如果你的克隆比较小,又密的话,上面的方法就不行了,我主要用吸胚管拉细了用,根据你的克隆大小拉成合适的孔径,可以先用胶原酶消化下来,取少量稀释到合适的密度,吸胚管吸出你要的克隆,可以胰酶消化,也可以暂时不消化,时间操作要快。也可以不用胶原酶消化,直接刮下克隆,吸出你的克隆,进行下一步处理。
7 Q; z' z6 U5 T  g: y  B: J" N) Y要挑比较纯的克隆,就看你的稀释程度和你的操作技巧了,多多练习就好了。) d" B+ F2 F! f3 Z
最好祝你实验顺利噢!
作者: zoe    时间: 2010-12-21 08:57

非常感谢各位前辈,我会尝试下,有结果了上来回报,祝各位前辈实验顺利
作者: trl137    时间: 2010-12-24 00:11

我们经常用的是显微操作法和稀释法。具体这样做的:" H! W! `$ u& Y$ n( t. C
稀释法:等细胞生长到一定密度时,传代稀释,在一个10cm培养皿中,细胞数保持在20个左右,这样等到细胞长起来后,彼此间有一定的距离,再用克隆环就可以得到了。1 _5 S1 `( d6 l) R0 M
显微操作法:只需要把显微操作注射针的直径控制约为体细胞的大小即可,消化细胞后进行显微操作。
作者: janeyu    时间: 2011-1-11 16:22

如果克隆不是很密集的话,可以用在显微镜下观察,用记号笔在培养皿下点一下做个标记,然后拿到操作台里挑取,办法很土,却是可行的,我们实验室的单克隆就这么挑取的。
5 w5 p% B  |8 _! W如果克隆长的比较密的话,建议用有限稀释法稀释到单细胞再培养克隆。
作者: siyue13    时间: 2011-1-11 20:18

用克隆环
作者: BIOLOGY    时间: 2011-1-11 20:40

体视镜下,把克隆用玻璃针管连着一段橡胶管做的口吸管吸出,胰酶消化,血清终止,种入新的皿中即可
作者: future007    时间: 2011-1-14 11:03

我见过两种,都是需要先在显微镜下用笔将克隆圈住。一种是用克隆杯,底部抹上凡士扣在画好的克隆处,用胰蛋白酶加到克隆杯里消化,在终止消化,最后吸出液体传代。另外一种就是直接用枪头反复划圈住的克隆的区域,用PBS轻轻地从皿的一侧冲洗。最后收集PBS液,直接传代到新的皿里,不要忘了补加细胞培养液。
作者: jhu132llh    时间: 2011-1-14 11:58

这个在我们大实验室其他组倒是很容易
: v* D0 X2 i( T- B6 Q9 x5 I- B因为我们大实验室有做克隆的8 o' ?- f. L6 P: W  _) \# O$ t
所以6 Q* [# U0 V& Z# N, ?
用遗传操作系统很容易就可以将细胞克隆吸出来,极度精确
作者: bin    时间: 2011-5-23 10:49

即将要用到的技术,还不会,谢谢各位了。
作者: bin    时间: 2011-5-23 11:08

,看来这似乎是个难关耶。
作者: BIOLOGY    时间: 2011-5-23 13:16

用玻璃针挑比较好,而且能吹的很散
作者: 宗介    时间: 2011-5-25 01:08

加胰酶用枪头吹
作者: chliu    时间: 2011-5-26 09:00

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  y6 g' A; G! x: P2 _, T% R我们是先用PBS洗两次,加入PBS,在解剖镜下用20ul的枪头将单克隆整个挑起来,吸至枪头中,加入已经加好胰酶的96孔板中,用胰酶消化。




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