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楼主: 309208770
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MSC消化不下来,怎么回事?   [复制链接]

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11楼
发表于 2016-5-4 10:41 |只看该作者
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回复 月_幻影 的帖子
0 O& s/ d; |' |& x
$ N/ U/ r, @% r; ~用PBS洗两次,应该没有残余的培养液了,胰酶只是放在室温就用了,加上胰酶后放回培养箱里,过几分钟拿出来,也消化的效果不理想,而且还是成片的脱落
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12楼
发表于 2016-5-4 10:42 |只看该作者
回复 草胞 的帖子2 J0 K; Q: J1 w; s1 }! z! P
% ~* O! d+ k# t/ c9 F0 b3 O; O
无血清培养

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13楼
发表于 2016-5-5 09:37 |只看该作者
回复 309208770 的帖子2 }, ~- S) q4 p8 v6 L

0 X4 T) W5 L! F; U细胞密度过大、消化时间过长也会发生这种情况,一般细胞传代最好控制在80%~90%左右即可,LZ也说了前面消化传代都很正常,但这一代的生长密度≥100%,所以不排除是密度过高,且胰酶消化过度会导致细胞粘连成片脱落……
; _. e4 r$ L8 o0 I3 }8 dPS.我们平时做MSC传代都是培养箱内消化一分钟,消化效果很好,且每一代都会注意其生长密度。
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14楼
发表于 2016-5-5 15:24 |只看该作者
可能是胰酶没有预先拿出来,使其的温度达到室温
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15楼
发表于 2016-5-6 10:39 |只看该作者
可能是胰酶的浓度比较低吧,应该在37℃里消化,这样应该会好一点
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16楼
发表于 2016-5-6 23:01 |只看该作者
PBS洗涤一次,少量胰酶浸润一次,把握时间浸润消化一会儿弃胰酶,放37度消化直至大部分细胞开始脱落即可加培养基终止消化,这种方法最好用无EDTA的胰酶,对绝大多数贴壁细胞适用,且对细胞伤害小!
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17楼
发表于 2016-5-9 10:07 |只看该作者
胰酶最好提前从冰箱中取出来至室温。消化的时候可以放回二氧化碳培养箱,37℃的情况下消化,2-3分钟,在显微镜下观察大部分消化下来了之后再加终止液
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18楼
发表于 2016-5-9 10:09 |只看该作者
胰蛋白酶/EDTA(0.04%/0.03%),胰蛋白酶/EDTA 2(0.025%/0.01%)这两种浓度你可以都尝试一下
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19楼
发表于 2016-5-11 16:50 |只看该作者
亲,看了你的帖子,我还纳闷呢:“lonza培养,汇合度100%,居然消化不下来“,在我的经验中,应该是不用消化,细胞都会成片脱落的。这个好像是这款培养基的特性。其实你应该在汇合度是80%就传代,再放一天,细胞特定长过,成片脱落或是成团聚集,然后脱落。我到现在都没有解决办法,只能将就这款培养基,毕竟养好了,细胞收获量和细胞状态都还是有保障的。建议你摸一下细胞传代密度,保证3天汇合度90%,以后你传代就按这个密度来,基本上问题就不大了。
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20楼
发表于 2016-5-13 18:17 |只看该作者
我觉得是不是你的胰酶出了问题:
# e8 z; O3 W+ ]& j( d. V$ |7 D第一、胰酶时间长了,活性达不到!: w, u5 T1 g: y
第二就是胰酶保存温度不合适!
' w$ c+ Y( S* r4 W! |+ O/ |6 b第三就是没有把胰酶预温,大部分酶的最适温度是37℃。/ I8 U1 P( H! `9 U5 ~* ~
我原来用国产的胰酶,消化细胞大概要10几分钟,而且对细胞有损害,后来用GIBCO的温和消化液,就很好消化,4、5分钟就可以了
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