配维生素C

bio-bin

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; Y4 M& h1 k! b- p+ S6 N我们一般不会全配了的。一般是称量500mg后，加10ml无菌水，0.22um过滤后分装。& Z# ~4 O# i6 y8 s

白巧克力

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您的意思是，直接在25g的棕色瓶子里加水？不可能的，那能加多少水呢？关键是，Vc很容易氧化的，1g都会用好久，那都配成水溶液不都被氧化了。; `' J4 q4 j+ b$ z0 G) Y/ R
本来这就不是个无菌试剂，更不会检测是否含有支原体。做ips最怕的就是支原体了。- {; t2 v; @5 H6 \
我不知道大家在外面称量后配制再过滤后给细胞有什么后果，我想着是不敢给ips的。
/ s1 U% |: ?7 V# m. l! Q. F本来我也是想配成母液的，用的时候稀释。也可能您的意思我没看懂吧，谢谢。

zerollx

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6 [4 n; B' z7 x) S) F3 C3 {5 B/ _3 [
我也曾经担心你所考虑的问题，我们一般是在细胞间称量，支原体污染的概率很小，实践证明是没有问题的，当然，你可以选择0.1um的滤器过滤，可以除去支原体的，不过那种滤器挺贵的。

huangcong1988

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3 L  i; ^7 y9 J
+ w3 b  J! \* N! h) N您那个25g的棕色瓶不是很大，是吧？可能我考虑得不是很周全，我的意思是：如果瓶子不大的话，您可以先少加点水，然后再吸出部分稀释。我看论坛里面说Vc形式对了的话，保存还是比较容易的，不知道是不是您Vc形式对了吗

song58

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1 m* R8 I- ~* ]7 R3 {) W6 [1 S离心

song58

回复 huangcong1988 的帖子7 Z3 D+ q9 ]2 G" |5 t8 S: X

/ R# P! N  ?$ R4 b, R恩，我也是先在原瓶里稀释，然后再稀释...

huangcong1988

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怎么离心呢？10g装的瓶子比较大，没法离啊，还有原瓶稀释加多少水呢？配成浓度多少的母液？

linzi214

易氧化的试剂建议最好不要全配了，取1g配成母液，分装后取一部分配成应用液。或者1g全配成应用液，分装后冻存。在台面上轻轻敲几次，把瓶盖的粉末可以敲下来，如果不是完全配掉的话，也可以不用太管盖子上的粉末。不知道瓶子有多大，不行的话可以放在15ml或50ml离心管里，进行离心。

song58

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1 E" Y  Q' z9 l2 E8 d. Q/ \0 l" E不知道瓶子多大，也不知道你们那离心机多大，这个建议不好说: P% n/ L4 |% z! o
以前我们实验室人多，Vc用量也大，所以一次会配很多，然后同学们领着用，不知道你们实验室什么情况，不过总能有合适的办法解决问题嘿嘿