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《cell》文献翻译:内源小RNA — miRNA, siRNA和piRNA [复制链接]

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发表于 2009-4-28 21:09 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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内源小RNA — miRNA, siRNA和piRNA
7 w! m$ _8 p0 [( S1 q; A& n, r0 f/ i2 v$ Q* f9 c0 k2 n9 K

+ `+ G, [. i% H5 A; f2 R! o5 S% C0 q; u/ P9 u  t: ^
     miRNA (微RNA)和siRNA(小分子干扰RNA)是长度为21-25核苷酸的RNA分子,而piRNA是长度为25-31核苷酸的RNA(主要长度为29-30核苷酸)。miRNA是内源小RNA,siRNA一般认为是外源性的,但细胞也会产生自身的siRNA。miRNA和siRNA都可作用于mRNA,使基因沉默。piRNA是动物睾丸专一性RNA,它也在基因沉默中起作用。这三类小RNA的前体不完全相同。miRNA前体是能折叠成发夹结构的单链转录产物,siRNA由完全配对的双链RNA前体产生,piRNA的前体是单链RNA,但不含有能折叠成发夹结构的部分。下面分别就这三类RNA的特点作进一步分析。
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miRNA
1 X# e% y3 ]0 q  C) n: g) Q0 O( \; W7 z% R& x5 {
    已在植物和动物中发现了几百种miRNA。Xie等用mRNA的3’ UTR(3’非翻译区)8核苷酸检索有miRNA基因特征的基因组序列,结果不但发现了许多已知miRNA基因,还发现了129个新的miRNA基因[1],[2]。 Bereziko等通过对灵长目动物miRNA前体两侧区域进行序列分析,鉴定miRNA基因的保守特征[3]。这种分析不但找到了>20%的已知哺乳动物miRNA基因,而且找到了几百个侯选基因。根据Xie和Bereziko等人的研究结果,可以认为人基因组中至少有500个miRNA基因,约占基因总数的2% - 3%。
! I+ R4 t( q2 T2 F& U0 ]
/ S4 Y* z& R/ y) S    miRNA可从一些较大的转录产物产生。这些转录产物可被加工成发夹状前体,成为外切酶Dicer和Drosha(这两种酶是RNaseIII家族成员)的底物。Drosha和Dicer外切酶作用发夹状前体,产生长度为20 - 22核苷酸的成熟miRNA。Drosha存在于细胞核中,Dicer存在于细胞质中。缺少Dicer的动物不能合成miRNA。0 k  ~% Q9 x) F$ f4 h3 o

4 O& U9 i$ D' `; n5 p4 X& B    根据Xie等人发现的与miRNA有互补序列的mRNA 3’ UTR的数目,估计约有5000个人类基因(基因总数的20%)可能受某种形式的miRNA的调节。John和Lewis等人最近提出在其他脊椎动物中miRNA的靶基因数目也很惊人[4],[5]。生物信息学和各种实验方法的研究结果表明,我们对人和其他脊椎动物miRNA的了解还刚刚开始。  a' v+ }; b% U+ U* T/ w
! W' f3 O7 H  i, u0 z
    miRNA通过位于mRNA 3’ UTR的部分互补序列,与特定靶mRNA结合。结合了miRNA的mRNA或者不翻译(这导致蛋白产物减少),或者被RNA干扰复合物(RISC)降解(这导致转录产物减少)。miRNA参与许多生命过程,可调控与发育、增殖、分化、凋亡和应激有关的许多基因的表达。3 z9 G, K6 R% j  d% N

' e& \+ A/ G- L, }    10多年前在线虫幼虫中发现miRNA可调节线虫发育[6]。对斑马鱼的研究发现,miRNA在斑马鱼的完全发育中起重要作用[7]。miRNA有组织专一性,可作为发育的开关。有人认为miRNA靶序列的获得和丧失是基因表达的精细调节方式,与进化有关,在鱼和人之间同源器官发育的不同可用主要发育基因的3’ UTR中miRNA靶序列的不同来解释[8]。
( X1 P2 |1 g" T% j$ F; {( L  Z' ?
    miRNA与mRNA相互作用的突变可引起疾病。这些突变方式可以是:(1)miRNA功能丧失的突变;(2)miRNA功能获得突变;(3)miRNA靶位点突变,由此导致靶序列不能与miRNA结合,造成被miRNA调节的基因得以表达;(4)某些基因得到不需要的miRNA靶序列,导致基因非正常沉默。- q7 I  e2 l6 _) J3 S% Q: h
2 G: h: i4 b! s, c2 _
    He[9]和O’Donnell[10]等人的研究揭示了miRNA基因表达的改变与癌症的产生有关。已知miRNA的一个基因簇,即miR-17-92多顺反子,位于染色体13q32-33的囊状淋巴瘤(一种B细胞恶性肿瘤)扩增区域。He等人使用微阵列分析B细胞淋巴瘤,并使用了因Myc原癌基因活化而产生B细胞淋巴瘤的小鼠模型。他们的实验表明,与正常组织样品相比,miR-17-92基因簇在B细胞淋巴瘤中的表达有所增加。进一步的研究表明,miR-17-92的表达和Myc的表达共同促进小鼠B细胞淋巴瘤的形成。在肿瘤中某些miRNA基因簇和Myc受到正调节时,肿瘤细胞不发生凋亡。+ u/ k5 F) R$ U- n( [
1 z5 h7 M* {8 W2 G+ H+ c
    O’Donnell等人的相关研究证实,Myc直接与染色体13上的miR-17-92基因座结合,活化miRNA簇的表达。他们还揭示了miR-17-92簇中的两个miRNA,即miR-17-5p和miR-20a,可对E2F1转录因子的表达进行负调节。E2F1是Myc的另一个靶分子,它可帮助细胞周期正常进行。O’Donnell揭示的机制表明,在Myc活化与E2F1有关的转录的过程中,有miRNA的参与。miRNA也可以减少E2F1的翻译,从而可对Myc增殖信号进行精细控制。因为Myc活化染色体13q32-33的miRNA簇的表达,所以这个miRNA簇究竟怎样帮助Myc诱导淋巴瘤很令人感兴趣。
. R4 _5 i, k, ~7 @0 t6 q& n! c% ~/ `' F* P
    miRNA在干细胞分裂中起重要作用。Hatfield等人[11]用带有dicer-1(dicer-1是miRNA生物合成的必需基因)突变的果蝇生殖细胞证实,在干细胞通过G1/S关卡的过程中需要miRNA。某些环境刺激可以使大多数细胞停留在G1/S关卡,而干细胞对这些环境刺激不敏感,因而能长期分裂。miRNA与干细胞越过G1/S关卡的机制密切相关。
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内源siRNA8 \* l  s7 L( J2 ~! z5 c
, O& D  G" T9 V. ?
    虽然一般认为siRNA是由科学家在实验室制造的或来自病毒感染,但事实上细胞也会因自身需要而主动制造siRNA。在植物、动物和真菌中有一些与miRNA不同的小RNA,它们主要由基因组中的重复序列编码。这些小RNA称为有重复序列的siRNA,为它们编码的基因中的重复序列许多是转座子或逆转录因子,这与RNAi在转座子表达和增殖的沉默中起作用的观点相吻合。已知许多miRNA的长度为20 ~ 23核苷酸,而这些siRNA的长度为23 - 27核苷酸。siRNA没有发夹—环前体,它们的前体是有两条不同互补链的dsRNA[12]。siRNA可以调节合成RNA的基因座的染色质组分,具有指导染色质效应子对DNA反式作用的潜在能力。
  }' {8 W2 [0 B9 F
+ G; h: q1 W- O  S' n    另外,通过克隆研究鉴定了一些与无蛋白编码基因的染色体区域互补的小RNA,这些小RNA(siRNA)有时与较长的特殊非编码RNA重叠。相对于这些非编码RNA,siRNA以“反义”方向存在。对拟南芥At2g27400 RNA来说,相关的siRNA是位于其中的21核苷酸[13]。这些观察表明这些siRNA是从较长的RNA产生的。这类siRNA的长度与miRNA的长度类似,它们的基因中无重复序列。这类非重复siRNA有什么生物功能?
4 N& R8 F: J1 O# T9 `4 H/ A, z# l
: y" o% ?- [- B$ N    在线虫中鉴定了13个siRNA基因,它们对发育的不同阶段起作用。在拟南芥中鉴定了三种与At2g27400 RNA序列互补的mRNA。非重复siRNA与外源siRNA的RNAi作用方式类似。目前尚不清楚这种非重复siRNA在拟南芥发育中有什么功能,可能对茎和叶的发育有一定作用。
0 V9 _9 o5 x* E5 d3 @/ ?
4 v7 M1 [5 Y; {    在原生动物四膜虫中内源siRNA有特殊功能。有几项实验证据表明,这些siRNA可与微细胞核基因组的DNA杂交,但不与巨细胞核基因组DNA杂交,显然它们与被消除的序列有关[14]。这些siRNA的作用可能是使DNA消除机制作用于IES序列(内部消除序列)。DNA消除机制包括染色质重建因子,这与siRNA在染色质调节中起作用的观点一致。
$ o. t% C: l# N/ d' q0 B$ N6 S& H$ c& ~1 i) I
piRNA3 V  r) l, |/ ]8 M2 E3 @
  `& l. @" Z9 j9 K2 H8 ^
    piRNA的发现与Argonaute蛋白家族有关。某些Argonaute蛋白,如Ago1和Ago2,与miRNA和siRNA结合,形成核糖核蛋白体复合物,并进一步与mRNA结合,抑制靶mRNA表达。而有另一类不同于Ago1/Ago2的Argonaute蛋白,它们不与siRNA或miRNA结合。这类蛋白的代表是果蝇Piwi蛋白,它在种系发育中起重要作用。Piwi及其小鼠同源物(Miwi, MIli, Miwi2)的遗传学分析表明,它们是精子产生所必需的[15]。Lau等人[16]部分纯化了大鼠睾丸抽提物中的核糖核蛋白体复合物,发现了长度主要为29 - 30核苷酸的睾丸专一性RNA。这些RNA的大小不同于miRNA,与不同的蛋白质结合。这些复合物的蛋白质亚基主要是Riwi (Piwi的大鼠同源物)和RecQ1。这种核糖核蛋白体复合物中的RNA被命名为piRNA,复合物则被称为Piwi相互作用RNA复合物(piRC)。
. Q. ?* E; W  ]) W: `* g& c4 i$ a- y3 D  R
    piRNA可与小鼠睾丸抽提物中分离的多聚核糖体结合。然而,遗传学研究表明,Piwi蛋白通过改变染色质结构参与基因转录沉默。piRC在这种类型的基因沉默中起作用。
' X, S( I# p' v" p. ^* G6 f6 @; K7 i) B& d" h& f$ y) }0 L
    piRNA基因位于基因组中以前认为不会被转录的区域。这些区域分布在大小为1 - 100 kb的100个piRNA基因簇中。只有很少几个piRNA基因有重复DNA。在典型的piRNA基因簇中的piRNA基因只位于基因组DNA的一条链中,只有很少的piRNA由两条DNA链产生。与负链piRNA分离的正链piRNA位于DNA中不同区域,这些区域往往相隔几百个碱基对。piRNA没有重叠的互补RNA或可回复折叠的RNA前体,这表明piRNA不是从双链RNA前体产生的,它与miRNA和siRNA的生物合成机制不同。7 C, f8 [4 o' [1 k
6 L3 ^9 E  o" E
    piRNA和piRC复合物不仅在大鼠中存在,在其他动物(包括小鼠和人)的睾丸中也存在。在大鼠、小鼠和人中,大多数piRNA簇是同源的,甚至有DNA链专一性,但piRNA序列在种属中并不是保守的。
" q0 c$ L8 P! n4 k( T% V6 I- I3 G6 `3 K: @
    piRNA在雄性精子细胞的发育过程中产生。在没有已分化的生殖细胞的WV小鼠中不存在piRNA。在整个精子发育过程中都可以检测到piRNA,其丰度的峰值在完整精细胞阶段,每个完整精细胞有一百万个piRNA分子。
2 C4 a; L. q! v  A* h) J) e  q2 k9 ]% q% W+ X
2 j" P* e8 L9 `  l8 R3 E0 Z

( i+ i* y3 I! _. o$ \4 O参考文献
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! U( n% }2 R0 |; P5 Y( D
14     Mochizuki, K. et al., Genes Dev. 18 (2004), 2068—2073
! @( Y  I; A) J
( O3 U, i& G) J) }15     Carmell, M.A. et al., Genes Dev. 16 (2002), 27332 [9 A2 T2 K: u5 z) L& v
" h( |8 a. @3 _# X. K' ^4 j
16     Lau, N.C. et al., Science 313 (2006), 363
9 v# j# j3 ]+ R  b
: `, n6 @+ L& s- W5 U本文转自建人先生原创,感谢

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沙发
发表于 2010-2-8 22:01 |只看该作者
我想看看原文呀

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精华勋章 金话筒 帅哥研究员 优秀会员

藤椅
发表于 2010-2-11 08:45 |只看该作者
回复 1# bobo
3 p$ p0 k, K7 ?谢谢你!请问这篇文章的原文是什么啊?我想查一下原文。谢谢了

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板凳
发表于 2012-10-2 18:48 |只看该作者
求原文

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小小研究员

报纸
发表于 2013-7-5 21:08 |只看该作者
学习了,有原文更好呀
/ G# S0 T4 M1 F; z) d: n8 W顺便英语也学习了

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地板
发表于 2015-5-31 22:33 |只看该作者
哈哈,顶你了哦.  

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发表于 2015-6-28 10:53 |只看该作者
干细胞治疗糖尿病  

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发表于 2015-7-12 19:48 |只看该作者
慢慢来,呵呵  

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发表于 2015-7-25 22:19 |只看该作者
呵呵,支持一下哈  

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发表于 2015-8-2 17:27 |只看该作者
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