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MEF及饲养层的制备(实验记录)   [复制链接]

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发表于 2010-11-25 13:46 |显示全部帖子 |倒序浏览 |打印
1.MEF的获取:(步骤4-12已经进行实践)2 _0 y3 z( K& t: q
   (1)激素处理小鼠,同期发情和超数排卵5 g! e" M! ]* T! G: f* t
   (2)2:1合笼过夜(雌:雄)
9 B, ^5 }+ C) Q: G2 {% M8 M4 o. s   (3)取出有阴道栓(即乳白色或淡黄色冻胶状物,确定其已经怀孕)的开始记时间为0.5天  5 B1 X' r8 b8 Q
   (4)取出妊娠12.5-14.5天的小鼠为实验材料
. |; M1 A7 U: v8 @3 {   (5)颈椎脱臼法处死孕小鼠,放于盛有75%酒精的烧杯中消毒,拿到超净工作台上解剖,先剖开腹部皮肤,暴露子宫,然后换另外一套手术器械,用眼科镊提起近子宫颈端,分离子宫系膜,剪断子宫角,取出子宫,置于装有PBS的培养皿中。* u5 ~0 V' s* F: u5 r
   (6)取出胎鼠,在PBS中洗涤数次。去除头、尾、内脏和四肢,仅留躯干部。在PBS中充分漂洗,弃除红细胞。(用两个镊子配合即可除去羊水膜、胎盘、头尾、内脏、四肢)(若是想培养神经干细胞,则用剪刀剪取前脑进行培养即可)(可以一起处理多个胚胎), X0 c9 U% I4 O
   (7)在新的培养皿中加入少量PBS,放入躯干部分,用眼科剪刀剪成1mm3以下的组织块碎片(可以剪的更碎一点,下步的消化时间就可以缩短)。
6 L7 u, o1 h3 G! T) p   (8)加入2~4ml 0.25%胰蛋白酶,培养箱中消化10—15min,消化结束后加入等体积(多加点也行,只要不是少加,保证彻底的终止消化反应)的MEF Medium终止消化反应,轻轻吹打,使细胞分散。(做原代消化的时间稍长,胰酶用量也大,若是做传代,则只需加入500微升,最多1ml的胰酶,消化1~3min。)(躯干组织不易消化,做原代和传代时,故都用0.25%胰蛋白酶;而脑组织较易消化(脑肿瘤组织),原代和传代都用0.05%胰蛋白酶。)(消化可能不完全,也可室温静置5-10min,弃组织块,这样下面过滤就相对容易。)(如果消化得到的细胞太少,可以离心弃上清,PBS洗涤,重新加胰酶消化)(胰蛋白酶,Trypsin ,最适条件pH8.0,37度,溶液中钙镁离子和血清会降低其活力,故消化用的胰蛋白酶中加入了EDTA。消化结束时加入含血清的培养基即可终止反应)
- v' M" t. Z# O! S  ( 9)将收集的细胞悬液离心,1500rpm, 4min,弃上清,加入红细胞裂解液(3~5倍体积的细胞体积),轻轻吹打1min,离心除上清,若仍有红细胞残留,则须继续进行红细胞裂解步骤。
- n+ I/ e5 A% X, n/ q  (10)离心,弃上清,重悬细胞,过滤(200目筛网)并收集滤液,离心除去上清。
6 i; @1 I9 i( }- ^3 H* F  h# Z9 [  (11)用MEF Medium洗涤沉淀,离心除上清,重悬细胞,铺板即可。置于37度5%CO2饱和湿度培养箱中培养。(一只老鼠会有多个胚胎,得到的单细胞,可铺到三个培养皿中或者更多的培养皿中进行培养)! J+ o+ ^7 ?6 V' X+ b# ~
(12)第二天换液,随后每2天换液一次。培养2~4d后,MEF接近汇合,即可按1:3比例传代培养。
) |$ y  P7 g7 X, e' m3 H* W* Z$ ~+ u
6 x1 N/ V7 W0 k要点: 无菌是操作关键, 动物皮毛不能直接或间接接触到子宫, 分离子宫时必须换用另一套无菌的眼科剪和眼科镊。培养同一株胚胎干细胞最好延用相同品系小鼠来源的成纤维细胞。" T. k) t. q6 f8 U+ b& z9 ?5 _
要点: 仔细观察原代细胞有无被杂菌污染的迹象, 并且检测支原体, 确定无污染后传代扩增。
2 |' J! y- B) e& i' X( X2.MEF传代(本步骤已经进行实践)
, u* L2 l& c( Y) G$ h5 Z(1)消化:吸去培养皿中的MEF Medium,用PBS洗涤1次(加5ml)后,加入1ml 0.25%Trypsin/EDTA 37度消化1min(时间可以浮动,视消化效果定,在显微镜下观察, 当少量细胞漂浮, 贴壁的细胞层出现裂隙时,即可终止反应)。0 l7 h9 s- h4 u
(注:加PBS洗涤,是为了除去血清,否则胰酶发挥不了作用)
8 L, \  _7 @1 `# |% j. Q(2)终止消化:加入5ml MEF Media终止消化(此时总体积为6ml),用吸管冲洗培养面并反复吹吸,使细胞离散成为单细胞悬液。(离心步骤省略:将细胞悬液移入离心管,1500rpm×4min。弃去上清液,用MEF Media重悬MEF成单细胞悬液。)
# h: m$ L" O( W( I  p  o( T(3)分装接种:吸取2ml细胞悬液到新的培养皿中(其中已经加了8ml培养基),再取2ml单细胞悬液加到另外一个新的培养皿中(其中已经加了8ml培养基),此时原来的培养皿中还剩余2ml,吸取8ml培养基加入其中,轻摇,37度5%CO2饱和湿度的培养箱中培养。(1传3,其中2个是新的培养皿,1个是旧的(原先的),多省啊! 100mm的培养皿,通常加10ml培养基)) @1 _$ C, j; j( t
(4)隔一天,视生长状况传代。0 Z; B% @! C, w9 M9 w
, e5 v* h$ S' q
注意: 每次传代尽量把成纤维细胞消化、吹打成单细胞悬液.
" b2 V1 p) Z; y1 A3 q# M) R
) F& X% n' [: y3 S8 F, G* F2 _- ]6 ?& U# G( @7 E2 d$ f6 o+ Y) V
3.冻存MEF(本步骤已经进行实践)+ r3 i( {4 L. X- W) b5 G: ^  P6 U
% p5 @& r2 I& A  I5 d9 Q: ^2 g( e! M
在P2传P3代时,取三分之一的dishes继续进行MEF传代操作,另外三分之二进行冻存处理(本实验中P2有27个dishes,其中8个继续做传代,成24个dishes;另外19个做冻存处理,每个dish冻存一管)。
6 W9 [9 b; q8 @(1)取出19 dishes,吸弃media,加PBS洗一次(5ml)。
' {' H; Z) s) N! P6 d$ U: @(2)加1ml trypsin下消化1分钟,加2ml media 终止消化,轻轻吹打下细胞并分散均匀,收集细胞悬液到15ml离心管中(本次三个dishes收集到一个15ml离心管中),再加1mlPBS冲洗dish,并转移到离心管中。, c9 |9 M% n% _6 u" m2 ^
(3)封口膜封口,放在离心机里,1500rpm,4度,4min,离心。与此同时,配制冻存液。取出DMSO(二甲基亚砜,作冻存剂。本实验室的DMSO是常温下保存在抽屉里的。瓶子是深色的。),喷撒酒精消毒,放在实验台上。取两支15ml的离心管,每管加9mlmedia,然后每管再加1ml DMSO,混匀。9 d2 Z* r- j! J/ E. O: `4 m3 Z; u' D: |
(4)取出离心机里的离心管,喷撒酒精消毒,放在实验台上。取一管,倾倒去上清,加入3ml冻存液(因为要分装到3个冻存管中。冻存管总容量是2ml,最大刻度是1.8,本实验室通常加1ml冻存液进行保存),轻轻吹打几下,混匀细胞。取1ml,加入到冻存管中,放入冻存盒里(使用的是异丙醇冻存盒。异丙醇在冷冻细胞的过程中可以辅助实现缓慢降温,直接从室温放进-80可以达到近似于1度/分钟。异丙醇冻存盒在用之前要室温放置一段时间,让其达到室温后再用)。然后再对下一管进行操作。(应尽量避免细胞在常温下与DMSO的接触时间). C4 v, X' h: F, ?
(5)把冻存盒放在-80度冰箱里过夜,第二天拿到液氮中冻存。(由于液氮罐已满,所以保存暂时保存在-80度冰箱里)6 d8 |2 u- y- g; s6 b! `$ w0 `
        0 k2 B2 a$ |6 V$ E5 ?# a5 y
      问题:一dishes太多,在消化操作时一定要快,否则第一个dish可能消化时间较长,影响细胞状态。
9 k' U, m' w( O; o9 E6 Q2 \/ }) w7 P            二加1ml PBS收取余下细胞时会,由于量太少易产生很多气泡,下次要增加量到2ml 。8 j0 W& i* x- K# E; W% D/ Y4 r/ n8 g
            三冻存液使用的是MEF media + 10%DMSO,这样FBS含量少,对细胞状态产生影响,下次要增加FBS的含量(适当增加FBS的量有利于提高复苏时细胞的成活率)。(MEF media由DMEM 11965 +10%FBS+1%P/S)
# T! [7 [. q8 e; `2 Z/ @3 t
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6 _5 l1 m+ V) i0 M5 m% b4. mitomycin C处理MEF,并冻存(本步骤已经通过实践)- G+ O& b7 F0 k$ H; [  b
(1)当P3代MEF生长接近汇合时,吸去原培养基,用PBS洗2次(每次5ml),然后加入4ml 10μg/ml的mitomycin C处理MEF细胞,置于培养箱内2h。
4 i! L+ o" B& T; }(2)弃去mitomycin C,用PBS洗涤2次(每次5ml)。& V5 D! X* `8 g5 c
(3)加0.25%Trypsin  1ml消化1-3分钟,用2 ml MEF Media终止反应。轻轻吹打下细胞,并把悬液转移到15ml离心管中,用2ml PBS 洗涤,收集余下的细胞。(两个dishes的细胞转移至一个离心管中,总体积为5ml*2)
( h  x/ `( I" U* E(4)1500rpm, 4度,4min,离心。与此同时配制冻存液(20ml MEF media + 2.5ml FBS + 2.5ml DMSO)。(此处相对3中冻存液,提高了FBS的含量,以期维持更好的细胞状态)3 `) v9 P* g! A3 c/ Z
(5)倾倒去上清,加2ml 冻存液重悬,分装到2个冻存管中,每管1 ml。标注信息。置于异丙醇冷冻盒中,放入-80度冰箱中过夜,第二天转移到液氮罐中保存。
+ r7 |9 s# _' G" P4 ^! S3 ~+ ]7 ]$ w8 N/ X$ y3 ?
注:上面用的mytomicin C 可以用MEF media (DMEM应该以可以吧)配制,也可以用无菌的PBS配制。(Mytomicin C是针剂瓶装的,10mg/支,可以采用无菌PBS溶解,配制成1mg/ml,装在15ml离心管中,锡纸包裹(需要避光),4度保存即可。用时再配制成工作浓度;若是用MEF media配制,可以直接配制成工作浓度,用时直接取用。最好买sigma的。)注意丝裂霉素C 的有效期和使用方法。若发现分装的丝裂霉素C 溶液析出结晶或溶液由浅蓝色转变成紫红色时, 说明丝裂霉素C已经失效, 不能再使用。5 t1 ]0 \& Q8 V0 x/ d2 v

. ?& o4 Z5 t% b0 f9 ^  a! H5.复苏(本步骤已经通过实践)+ F8 k. z- I- x5 ~; _
(1)取出冻存管,在37度水浴中迅速融化(1-2min),当有少量冰块剩余时取出,用吸水纸拭干水,用75%酒精喷一下。(剩少量冰块与完全融化,效果差别不大。也可完全融化)  D. K0 m6 f1 \  g/ @$ b
(2)用移液枪把冻存液转移至已加有5mlMEF Media的15ml离心管中1000转,4度,4min,离心。' ^7 V1 B9 ?0 p' D
(3)2ml MEF Media 重悬,转移至加有8ml MEF Media的100mm培养皿中,于37度5%CO2饱和湿度培养箱中培养。
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沙发
发表于 2010-11-25 13:46 |显示全部帖子
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藤椅
发表于 2010-11-25 21:49 |显示全部帖子
回复 5# CQ熊猫猫 3 l2 L- ^7 j+ ^, h! @
+ r: F9 i7 \' K
首先,你要搞清楚一个问题,iPS和ES是要在Feeder上才能很好的生长的(悬浮培养暂且不说)。为什么用Feeder呢,因为它不能够分裂,但可以分泌一些生长因子之类的东西供iPS\ES生长。你没有用MMC处理MEF,就用其培养iPS,你的iPS如果能长起来就怪了!$ `1 L2 G3 k& v4 f9 F- Y) ?
可以在复苏后用MMC处理MEF,冻存前处理MEF,复苏时会有一部分死亡,可以适当增加铺板密度。我们通常一次处理很多MEF成Feeder,然后计数,冻存,用时复苏即可。如果你想复苏后再处理,当然也是可以的。
  \" h& ]4 g! x你经费有限,还用六孔板养MEF,看来你们还是有钱。一般养在100mm 培养皿中就行了(corning的就很好)。100mm dish加3-4mlMMC即可。六孔板,每孔加500微升到1毫升应该是够了。6 q8 h9 F) j9 i) g
祝你好运!
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板凳
发表于 2010-11-25 21:54 |显示全部帖子
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回复 4# treestem 8 V  B" ~3 `! V" Q; h+ n) g& Z

7 O3 d2 o9 T0 N/ y我们通常前一天复苏feeder,第二天用它来接种ESC。标准是:密度要适中,过密细胞不易贴壁,过疏细胞易分化。feeder的状态好坏,讲不太清楚,凭个人经验。mef 与feeder形态应该没有多大差别,只是后者不能够分裂而矣。
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报纸
发表于 2010-11-26 13:36 |显示全部帖子
回复 8# CQ熊猫猫
4 G) i& v. ]$ E' y- {$ g$ |' Y. w% p+ k) T% G$ V1 m4 q0 E$ N7 Q

+ h! t8 P+ [) [- C+ q9 ~抱歉哈,我没有养过iPS,只是猜测既然它有干性,应该和干细胞有类似的特性。我不清楚国产的哪个公司的更好,还请其它战友帮忙回答一下。

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地板
发表于 2010-11-26 20:51 |显示全部帖子
回复 11# wuxiao101325 [/b我]
- s: L, ?7 V" s. t4 F4 t  k) a- ~( Q
3 q, q. c7 i1 n5 `. g我们没有做过预实验。你的想法不错,可以试一下。不过你的方案还有待优化,因为预期结果可能并不见得如此明确。2.5小时的处理时间细胞应该不会死亡,因为我看到有人处理3小时。你的时间隔还应拉大0.5,1,2,3,5,8先进行粗筛,这样或许会更好些。结果有可能是这样的:在1-5之间,细胞不能够分裂,细胞状态良好;0-0.5细胞可以增殖;8-~细胞死亡,或是状态很差。另外,MMC一般都用10微克/毫升的浓度,你是不是也做一下其它浓度?呵呵,祝你成功!记得及时告诉大家结果。呵,我的MSN:zhugemengde@163.com
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7
发表于 2010-11-26 22:23 |显示全部帖子
回复 12# manybit 3 Y9 q  a  g" e$ T7 J- {
6 R1 a* p% B8 n2 q7 q/ [1 y2 b
5 y7 {, k4 k9 n2 T5 w" b# I
ICR

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发表于 2010-11-26 22:26 |显示全部帖子
回复 11# wuxiao101325 : H" w' _2 K' B3 ]7 t  c5 X% f: D
$ Z7 K8 D# Y' j7 h5 X

9 X; f% O- x% _    我刚才问了一下实验室的其它人,他们说两个小时可能是经过摸索过的。具体过程不太清楚。呵呵
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