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[请教] 求教:如何提高脂质体lipofectamine TM 2000的转染效率   [复制链接]

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楼主
发表于 2011-3-8 13:45 |显示全部帖子
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本帖最后由 qingbao 于 2011-3-8 13:49 编辑 ; W+ R% n* H* V; u6 f
6 D7 O/ m' O+ b6 j# d! `
我看转染效率的问题大家已经在这个帖子里讨论了很多:http://www.stemcell8.cn/thread-35512-1-1.html5 R# G& w+ P. u: l, z2 J
用阳性表达5-10%的细胞来作稳定压力筛选还是有些挑战的。建议还是要把转染的阳性表达率提高上去再做后续筛选比较合适。另外做稳定筛选的G418给药压力是要事先做梯度的。给你一个我自己总结的protocol,看是否对你有帮助。: L" _; U/ S3 ]) g9 @0 M
文档 2.pdf (27.45 KB)
' q$ V. _  d9 ~9 c6 m$ x( @, U' d本来想粘贴word的,但是表格会乱套。所以只能用附件,没有设下载包包的,不知最后是否需要你的包包。
8 _/ u6 m1 f" V6 j又试了一下,给你贴图了,这样可以不需要下载就能看。
% c7 a; \  H- X! \0 `# ` protocol.JPG
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沙发
发表于 2011-3-8 16:31 |显示全部帖子
回复 mckf111 的帖子8 @3 F, V4 r9 K" d' R/ W4 ~

# u; D0 ^) Z- W' ^1)在根据转染试剂说明书要求的融合度时转染,一般70%左右即可。)但是因为细胞生长速度不同,所以还要确定细胞转染48小时后或是新霉素筛选前才长满。因为生长接触抑制会降低目的基因的表达。3)确定细胞在转染后48小时以及药物筛选过程中生长状态良好。如果在瞬时表达阶段细胞不健康,可能是提示有潜在的毒性。0 m( I, ~. q; l* j2 L
顺便再说几点要注意的:
% i- R/ L5 W$ y, n1) 得到的稳定转染细胞的荧光表达量会低于瞬时转染的细胞。因为瞬时转染时,质粒进入细胞后以游离的形式存在。目的基因的表达是通过细胞的转录与翻译机制进行的。一个细胞可能‘吞入’数个质粒,因此细胞间会存在差异。总的来说,稳定转染的细胞只含有1-2个被整合的质粒。+ D- O" Z8 \5 P1 @6 h
2)做G418杀伤曲线。如果筛选用的药物太浓(不同批号间的药物浓度可能不同),选择压力过强。报告基因的表达水平与筛选抗性基因的不完全正相关,细胞在过高浓度的药物中生长,报告基因的表达反而降低。过高的药物浓度也可能影响了细胞的生长状态,进而影响报告基因的表达。这些副作用在长时间的筛选过程中尤其明显。筛选后的细胞培养,建议药物浓度降低为筛选时的1/2到1/5。
! x9 g2 Y. T4 x+ a  ~0 M, F3)总的来说,细胞培养时间在1-2个月内表达比较稳定,因此,建议分装冻存筛选过后的细胞,然后复苏原管,以确保细胞的统一性。
3 {: {+ s/ c; i
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藤椅
发表于 2011-3-8 16:37 |显示全部帖子
稳定筛选的原理:5 y+ i3 D  [$ T/ o+ E$ u( d6 D
被转染的质粒DNA带有可供筛选的标记基因,如胸苷激酶基因、二氢叶酸还原酶基因或者新霉素磷酸转移酶基因等。当携带相应抗性基因的质粒在被转染的细胞内表达后,用相应的抗性药物即可将转染细胞筛选出来。在真核细胞中以新霉素抗性基因比较常见。
5 ^9 H  V8 M( u0 o+ H! O新霉素抗性基因来源于转座子Tn5,其编码的细菌磷酸转移酶可使筛选药物G418失活。G418属氨基甙类抗生素,作用于80S核糖体可抑制蛋白质的合成。因此,未转染的细胞可被G418杀死,转染细胞却能够存活。真核细胞对G418的敏感性存在广泛差异。G418的使用浓度从100~1000μg/ml不等。所以,在使用G418筛选细胞之前,应将待试细胞置于含不同浓度G418的培养液中,以在3~6d杀死细胞的G418浓度为最佳。一般来说,细胞分裂越快,越容易被G418杀死。
9 i) L; ]! q. M1 U8 M- Y! P8 z
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