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楼主: bianhuimou
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小鼠骨髓间充质干细胞   [复制链接]

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发表于 2011-11-15 20:30 |只看该作者
liuxiao2006 发表于 2011-6-24 11:05
0 W( C8 j  c! Z; `- ^2 s' C我用的是DMEM/F12的培养基加上进口胎牛血清(10%),细胞长势很好啊。可能与细胞株有关吧,我用的是纯化过的 ...

' U) y! N/ u, n" w5 ]是小鼠的吗? 如何纯化的呢?  ~" g+ _8 x9 v( S  b- t
请指点

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发表于 2011-9-24 20:38 |只看该作者
回复 xiaoyurly 的帖子
- a0 W7 j0 D* _2 K& ^  H5 l
6 U7 S7 `: F& [2 ^我用买的stem cell  的培养基都没有养成功,感觉细胞很容易分化,不知您是否能提供你的培养基和血清的货号?我想试着再养养
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发表于 2011-9-24 20:36 |只看该作者
回复 xiaoyurly 的帖子
% x# i6 U! u% Y5 J7 m8 [1 s
# P) l9 Q5 `8 M4 O8 u1 R您好,请问您用的培养基和血清的货号能提供吗?

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金话筒 优秀会员

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发表于 2011-9-22 16:42 |只看该作者
干细胞之家微信公众号
如大家所言,小鼠MSC确实很难养出来,对血清要求高、纯化难且容易老化。( i% P8 `5 [' ], K( \
我用4-5周龄的C57小鼠培养,2只小鼠的全骨髓放1个10cm盘,用20%FBS+αMEM培养基。3天时换全液,此后每2天换液,5天时即可看到有克隆长出,一般7天时可传代。传代时胰酶消化时间要严格把握,随着传代杂细胞(主要是CD45+ HSC)会逐渐去除。到5代时MSC比较纯可用于后续实验(如分化、移植等)。
  w5 @4 E2 A: ~
: y5 T1 L0 Z2 u分离骨髓时用无菌纱布剥离肌肉,放在研钵里轻轻用力将骨头研碎,这样比较省时省力。
: F, U4 c# V1 g% Q7 |) aps. 曾经养过balb/c小鼠的MSC,私以为比C57的难培养一些。
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小小研究员

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发表于 2011-8-16 21:43 |只看该作者
回复 bianhuimou 的帖子* a( C( y8 h$ _; W5 n0 m9 K7 |) E
3 |0 f  v* z4 V5 c2 F
建议你详细说明你的问题 发新帖提问

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发表于 2011-8-16 11:39 |只看该作者
回复 sping 的帖子! }) a: H& v. j  q0 x  m* i, Y
/ J; s$ H0 p) J2 C1 B
您养过小鼠MSC?我用stem  cell 的培养基都养不出来,请您指点一下!

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发表于 2011-7-2 15:40 |只看该作者
请问骨片法培养的是间充质干细胞吗?
$ y1 u6 j: w1 M* |# j' F7 H, O

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金话筒 优秀会员

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发表于 2011-6-29 08:02 |只看该作者
我做rat的,小鼠的没做过,不知道我的protocol有参考价值没,感觉MSC是最好培养的了,比什么osteoblast和osteoclast好养多了% [. m8 i9 b( h& M
8 R  z! Z5 I- f! x' q  y7 o
MSC  Isolation from Rat Femur and Tibia
) z" F5 q! p8 S! F% x1.        Euthanize the rats with CO2 for 5 mins.+ A& M8 o9 D5 }
2.        Isolate femur and tibia by disconnecting them at the joints.0 u" R6 [6 x6 a9 Q& {5 }% m( R& ^
3.        Clean the bones of soft tissues.9 ]9 K! d9 S6 @2 a2 ^% w. p
4.        Wash both femur and tibia in PBS containing 1% penicillin/streptomycin twice.
: F# L4 Y, U) ]5.        Under the cell culture hood, clip-off the epiphyseal plates to expose the bone marrow.0 F! E# Y  L# Q# u! `7 e, ^
6.        Using a syringe, flush the bone marrow with 10 ml of media into a dish.
1 r. g0 ]9 U) d" Y/ }6 V9 N6 b7.        Break up the clumps by aspirating the cell solution multiple times.
' l! W# y3 W: \1 s4 c8.        Using a 70μm cell strainer, filter the cell solution into 15ml tube. This will remove any unwanted debris and bone fragments.; @; h3 g9 {2 y. C
9.        Centrifuge the filtered cell solution at 1000rpm for 10 min.8 E% h0 b6 q2 D9 L7 a8 L
10.        Resuspend the pellet and pipet this solution into a 100mm dish.
3 |; ]) Z  Z2 v" M% n11.        Incubate for the next 48h.& V$ n1 _  ^8 Z* F3 l: P' d7 D  b
12.        Change media to remove non-adhering cells.
, `  l" Q7 L/ t. }; Z13.        Change media every 2-3 days, even the media doesn’t change the color./ L: E, E3 A3 B% J) R, O( z3 g9 T
14.        Usually the cell will be confluence at 7-10 days, and then are ready for passaging.
& N# E* ]' X% @( R" X2 h
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发表于 2011-6-28 17:47 |只看该作者
回复 bianhuimou 的帖子, `8 e: Z# E2 {( A5 b  z

/ b1 V) k, E  e- h我现在都是做人的脂肪来源的MSC,没有做鼠的呢。我是做成脂成骨诱导。

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发表于 2011-6-28 10:29 |只看该作者
回复 clairezy1983 的帖子
3 e- g. y' `* Z% {% C! r8 _" |! Q
3 x# h0 k+ M7 S1 ?9 ]5 M4 [我最近进行诱导分化可是总是不成功,您有经验传授一下吗?
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