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小鼠骨髓间充质干细胞   [复制链接]

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包包
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楼主
发表于 2011-4-8 21:03 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
我养小鼠间充质干细胞已经大半年了,可是养的还是不好。细胞传代后容易老化,形态变化较大,请高人指点下。而且我应用普通培养基根本养不出小鼠BMMSC,大家帮帮忙吧
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帅哥研究员 优秀会员

沙发
发表于 2011-4-8 21:34 |只看该作者
小鼠BMSC的确很难养,使用特殊的培养液另外在低氧培养的条件下可能会有不错的效果。
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藤椅
发表于 2011-4-8 22:51 |只看该作者
用低糖DMEM就可以养得很好了
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板凳
发表于 2011-4-8 23:20 |只看该作者
干细胞之家微信公众号
我养小鼠骨髓干细胞有一段时间了,建议用骨片法,建议用STEMCELL公司专门的培养基,小鼠的MSC形态就是不像人的那么好,我把我自己整理的实验方法发给你,希望能给你参考。5 O$ D# L. R0 {
原代MSC培养& R6 a* [; ]  _2 k; Y7 |
1.        断髓法安乐死处死老鼠(4-5周龄,雄性BALB/c鼠),在酒精中消毒5分钟,无菌取出后腿,去除韧带和多余的组织,从踝关节和髋关节处分离出股骨和胫骨,置于加双抗的D-hanks液中。+ v' Y- N  s+ z  X7 w* f8 }
2.        用剪刀和镊子彻底地去除肌肉,切除骺端。确保骨头上无附着肌肉。. L$ g0 h( K3 }. L& s
3.        将骨头放置在10ml缓冲液中,Buffer: PBS+2%FBS+1mM EDTA。5 G$ ^( ~% v* ]# P! A" _
4.        用注射器尾部圆饼摁压骨头,力度要轻,使骨头裂开即可,轻微搅拌使骨髓从骨片中释出,用移液管吸出缓冲液。
6 e8 Q5 P0 b  t% \! a5.        加10ml新鲜缓冲液重新搅拌洗涤,去除骨髓,重复5次,直至骨头洗白,大部分骨髓被除去。8 T* u4 U  |7 X# g& c
6.        去除缓冲液,加入2ml 胶原酶I溶液(0.25% 胶原酶I + 20% FBS + PBS),预消化3-5分钟,使骨髓软化,容易切碎。
! N3 n# |8 r3 \! a$ S" y: u5 F( |7.        用剪刀剪碎至1-2mm,以保证释放足够细胞量。" e4 `) q, n; O6 I1 x& Y
8.        将碎屑放入50ml离心管中,加入胶原酶I溶液至总体积10ml, 或者2ml/鼠,加封口膜,将离心管放置在37℃摇床恒温槽中最大速度消化45分钟。摇床的速度设置为200rpm。" w3 _9 r7 O. e. w9 @, J
9.        加入缓冲液到总体积30ml,1200rpm,室温离心10分钟,制动打开。用MSC培养基将细胞重悬浮,接种于T75,骨片也一同接种于培养瓶中,让其均匀铺开。置于孵箱孵育。6 R, c- R5 W2 t7 H  t% O7 ]
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报纸
发表于 2011-4-8 23:48 |只看该作者
10%FBS in DMEM/F12也可以养得很好。低糖培养基也可以养得很好。MSC培养条件不成熟,传代不宜超过10代
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地板
发表于 2011-4-8 23:52 |只看该作者
谢谢LZ

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发表于 2011-4-10 14:58 |只看该作者
我也用的是STEM CELL的培养基,骨片法也试过,也很注意细节,可是细胞还是养不好
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发表于 2011-4-10 14:59 |只看该作者
低糖DMEM+10%FBS也试过,也养不出来,细胞很杂,不易纯化,而且细胞很易分化

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发表于 2011-4-10 15:00 |只看该作者
有养出小鼠MSC的朋友把细节说说吧,实验进行不下去了,感谢大家帮忙

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发表于 2011-4-11 16:49 |只看该作者
回复 sping 的帖子
; x5 `3 x* A) A4 p0 [# o9 o5 D; ?2 _: r, {2 L5 [
你好SPING,我也用的F12,全骨髓贴壁法,但是36小时首次换液后细胞还是圆的,怀疑是没贴壁,不知道怎么回事,你遇到过这种情况吗?
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