大鼠骨髓源性EPCs分离和培养-有关分离的单个核细胞接种问题

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2只150g左右的SD大鼠，取股骨和胫骨，PBS冲洗骨髓腔，得到细胞悬液后先1000rpm,5min 离心取沉淀细胞，然后PBS重悬,用Sigma的大鼠Ficoll分离液（密度：1.083）进一步分离细胞,骨髓细胞悬液与Ficoll比例1:1，再设定20°C，2000rpm,30分钟离心，离心后白膜层不是很满意，仍混有少量红细胞（可能离心机启动时温度没达到室温，就离心了）于是吸取细胞层时多吸了一点，然后PBS洗涤两次，1000rpm,10min，再用30mlEGM2-Mv培养基重悬（新买的EGM-2培养基混匀细胞因子和血清、双抗后分装，冻存于-20°C后），细胞计数为5.6*10^6/ml,分别接种到一个六孔板和10cm培养皿（一个培养皿预铺了sigma, FN)。! l. s* b0 C5 s% F% I' g
     本来是准备4天后首次换液，可在2天之后发现很多圆形细胞贴壁良好，已经长满，但是在200倍下看，体积很小，似乎必接种的时候还要小（估计是细胞长满后接触抑制），同时还有不少米粒样一头大一头小的细胞两两连在一起（问过师兄说可能细胞的不对称分裂，还有说可能是某种细菌），400倍下才看到细胞核。另外，还出现大量漂浮的细胞团，淡黄的颜色，于是吸掉上悬液，换新鲜培养基。观察一天后，发现贴壁的细胞又长满了，但是没有形态和体积上的变化，漂浮细胞团再次出现，再次吸掉上悬液，然后用0.1%胰酶部分消化2-min，消化下来的细胞重新接种（1:4），未消化下来细胞换新培养基继续培养，后面上述情况再次出现，再消化，前后三次，到最后细胞可能由于频繁操作，污染，然后全凋亡了视野下都是碎片。整个过程中从发现细胞长满和大量细胞团飘起，一直到到第三次消化后，细胞仍然是开始的状态仍然是开始的那种形态和大小，原代细胞养不了几天。# H7 p2 |1 v; `
兄弟，有两点你不需要做-------PBS冲洗骨髓腔后，没有必要离心，直接加在大鼠淋巴细胞分离液上；另外EPC没有你说的那样长得如此快，即使骨髓培养，也至少一个礼拜长出来，第一二天看到集落是正常的。你这怎么没有看到细胞集落啊？

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总感觉你的细胞污染了，还有为什么你拍出来的照片这么怪，怎么不清楚啊？看看我拍的照片

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MOUSE BM EPC

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兄弟，拍照拍的清楚一点，怎么黑黑的？另外我之前在另外一个帖子里说过这个问题白膜层不明显的原因，你只注意了一点：离心时的温度，还有两点非常关键，一是淋巴细胞分离液的温度也要到常温才可以，在你准备分原代前你就要把他从4°冰箱拿出来恢复至室温，另一点则是离心时参数的设置，25°C，2000rpm,25min，注意是SLOW-OFF，慢加速，离心机自然停转。实际上25min就会到35min才结束。尽量缩短操作时间，还有可以在pbs中加点FBS。上面你附的图片八九不离十是污染的图片。