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回复 湖南干细胞 的帖子
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* r& z4 X9 Z$ T5 [* F2 x9 \前辈,您好,我分离培养间充质干细胞时每次都只获得较少细胞,主要是用培养瓶培养时,组织块漂浮过多,一般仅剩3~4块;用培养皿培养时组织块漂浮较少,但是有细胞爬出的组织块极少。多次都是这样,一直未找到原因,请前辈帮忙分析一下原因,不胜感激。以下是我的操作方法。3 H" s' t) X0 N
1. 取新鲜脐带,放入生理盐水中尽快带回实验室。6 G' B/ A4 {# _1 M
2. 使用医用镊子将脐带从脐带采集瓶中轻轻取出,用PBS冲洗掉脐带表面的血液,然后置于盛有75%酒精的烧杯中浸泡5min,再用PBS冲去脐带外周血块,将其清理干净。 4 \) G( E' S/ f. }! o# m; x
3. 用双抗生理盐水(双抗PBS)对剩余组织在余下的两个烧杯中进行充分清洗,一般冲洗两遍,去除血污。
: c8 U+ Z! p; K4 ?* L) v4. 将洗净的脐带置于另一大号的培养皿中,均分为4~5部分,平均每部分约长2~3cm。; Z( K G, e- X) R/ E
5. 纵向稍剪开外表皮,再用带齿镊子沿着剪的方向把外表皮撕开,在进行两动脉和一静脉的剥离,该过程基本全用镊子操作。' A+ e4 H% M& x0 W; `
6. 整个过程可在含0.1%双抗的PBS中进行,以确保无菌操作。
- y1 h$ w, o7 a( p( S# }7. 去除脐动脉与脐静脉后,用生理盐水进行多次冲洗,确定洗去残留的血块。
1 e9 x7 G) f% l8. 将获得的华通氏胶剪成1~3mm3的小块(将华通氏胶转移入青霉素瓶中,使用弯剪将其剪碎,大约剪10min左右)# l) t4 [, P8 r/ }2 E2 x
9. 使用吸管将组织块逐一种植入包被好的T75培养瓶中,密度20~25块/瓶为宜,间距0.5cm)。向培养瓶中加入少量培养液,以保持组织块湿润为好,然后正向置于37℃体积分数为5%CO2饱和温度湿度温箱中约4~24h,使组织块紧贴于培养瓶底壁。
4 K5 E5 H! _, E10. 待组织块贴壁后向培养瓶中沿瓶壁缓慢注入含15%胎牛血清(FBS)的DMEM/F12培养液,刚刚浸入组织块(T25培养瓶加5ml 液体,T75培养瓶加9ml培养基)。 |
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