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求教 酶消法做脐带间充质干细胞 [复制链接]

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楼主
发表于 2013-12-18 09:20 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
我之前一直都用组织块法,现在想换种方法,改酶消法。我用一倍浓度的胶原酶,体积一比一酶消剪碎的脐带组织块,离心得细胞接种,要换四次液,大概十二天,才能看到细胞增殖,接种第一天就有细胞贴壁,但会逐渐皱缩死亡,剩下一点点才能分裂,求高人指导下有没有什么更好的方法,或者我这个实验过程中有什么需要注意和改进的地方,在此谢过!!
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沙发
发表于 2013-12-18 12:18 |只看该作者
如果单纯用胶原酶消化后,过滤后上清由于太多透明质酸,呈果冻状,难以离心,我们加点儿透明质酸酶消化1~2分钟,让后离心洗涤。
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金话筒 优秀会员

藤椅
发表于 2013-12-18 12:53 |只看该作者
我们使用的是胶原酶+胰酶消化,重点是胰酶消化要加血清终止,不然细胞不仅不贴壁而且还是死亡,培养细胞时要加生长因子!
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板凳
发表于 2013-12-18 15:28 |只看该作者
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我们是用透明质酸酶和胰酶一起消化剪碎后的脐带组织块,大概消化半个钟,然后用400目筛网过滤,一边过滤一边在筛网上用玻璃棒研磨组织块,这样获取的细胞量多一些,然后加入血清终止消化,离心两次,尽量去除消化酶。
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报纸
发表于 2013-12-18 16:20 |只看该作者
我们采用二型胶原酶消化4个小时,消化后用100倍体积的PBS稀释,然后再用200目的筛网过滤,能消化下大量的间充质干细胞。
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地板
发表于 2013-12-18 19:11 |只看该作者
回复 sewing 的帖子; [& b) V0 B- R* E% W
( x  B- f7 ~; r0 M! o2 g- d5 {
能告诉我下透明质酸酶,胰酶,和脐带组织的比例吗,就是两个酶的浓度,然后三者的体积比,谢谢啦,做了四批了,效果不怎么理想
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发表于 2013-12-18 19:13 |只看该作者
回复 xuyang0317 的帖子
: M- w! ]$ B0 s3 X; v
; o+ _, v6 p% M0 x- N. C& D能告诉我下胶原酶,胰酶的浓度和比例吗,以及和组织块的体积比,生长因子我加了的,我现在差不多十厘米做下来就只能接一个t25瓶子,选择性培养基培养十天左右才开始分裂增殖,而且有不少还会凋亡。谢谢啦
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发表于 2013-12-18 20:20 |只看该作者
回复 zhangshich 的帖子
: l, B( Z+ z- E5 D1 e9 A3 a$ ^7 E: r- e2 q5 B3 ?+ G0 E/ n
对的,我现在就是这样,弄盐水稀释,再过滤的,2000转离心,但细胞还是很少,我想问下我大概十毫升碎组织,消化结束后的透明质酸需要多少透明质酸酶,浓度和体积,谢谢

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发表于 2013-12-20 09:32 |只看该作者
回复 pcljsw2008 的帖子
$ m4 e7 j; E* J" t5 w3 v9 |  I  H. n7 @+ l( A
透明质酸酶和胰酶1:1的比例,消化酶能够覆盖脐带组织块就行了,如果稍微再加多一点也没关系。认识一个人,他是透明质酸酶,胰酶和胶原酶一起用,都是1:1:1的比例,效果也不错,各种酶浓度都是常规用的浓度,你可以根据消化的情况调整一下消化酶的比例和消化的时间,我个人认为酶的浓度高低影响不大。
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发表于 2013-12-20 09:37 |只看该作者
回复 luoermei11 的帖子
' s6 m/ b8 g  ~) x
- ]5 k$ S" o. e/ u消化酶的浓度大了,对细胞的损伤也大。我觉得采用常规浓度,延长消化时间,对细胞损伤比较小,这是我养了几年细胞的体会,大家怎么看待这个问题呢?
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