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脐带间充质干细胞分离培养   [复制链接]

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楼主
发表于 2015-9-29 13:18 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
做了两次脐带间充质干细胞的分离,用的是组织块贴壁的方法,步骤都是按照文献一步步来的,但是20多天,都没有细胞从组织块爬出,请各位大侠指点!拜托了
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沙发
发表于 2015-9-29 13:27 |只看该作者
不知道您具体的实验方法,也不好分析呀。
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藤椅
发表于 2015-9-29 13:31 |只看该作者
细胞未爬出原因很多,如脐带尽量是新鲜的;华通胶剪碎,约3mm3;剪碎后,最好洗2-3次,减少粘度;最初要绝对静置7-8天;血清尽量用好点的,有利于爬出细胞;培养基要适量等等吧
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板凳
发表于 2015-9-29 13:38 |只看该作者
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回复 tingting2113 的帖子
5 Q- I' d* o# f! |/ @+ _* N- w/ x- S+ D% o( c0 y6 \
组织贴壁方法,脐带去除血管,华通胶剪碎,DMEM/F12,10%FBS培养,现在组织块都是飘着的 ,根本不贴壁,13天了,完全没有细胞爬出啊
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报纸
发表于 2015-9-29 13:40 |只看该作者
回复 wuhuaguo88l 的帖子* Y1 E' s9 f# V2 s
; j: I4 t' t1 C; M/ @- B$ y
组织很新鲜啊 ,4h内的,血清是GIBCO的,没问题,10cm培养皿加10ml培养基,多吗,组织块都在漂啊,十来天都没细胞,看的我好着急啊,需要加些因子吗
% K/ n- K1 \1 P  W0 i6 e
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地板
发表于 2015-9-29 13:48 |只看该作者
组织块都是悬浮的,细胞如何从组织中爬出来啊,我们是T175瓶才加25ml完全培养基,加EGF
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金话筒 优秀会员

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发表于 2015-9-29 14:00 |只看该作者
回复 babyrose66 的帖子, N. ^; n4 e/ I9 W/ E
2 Z/ m& y) ]4 b( m9 i
组织块贴壁法,顾名思义就是要让组织块贴于培养瓶细胞面上,如果都是漂着的,细胞根本不会生长。你可以将组织块剪碎后均匀铺壁,待贴壁几个小时候后再缓慢加入少量的培养液。这样细胞就容易从组织块中爬出细胞。
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金话筒 优秀会员

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发表于 2015-9-29 14:07 |只看该作者
组织要剪得小,1个立方毫米左右。
7 l& h; @% {- @* `组织块要一个一个的点在培养皿上,每一个组织都要放实,就是组织充分和平皿接触,但是过程要快一点,不要让胶质干了。
& A+ l. r8 u! B2 A1 ^把放好组织块的培养皿放置在培养箱里静置,大概2小时左右,看组织块大小情况,目的是让组织块粘附在平皿上。! M' L, J9 C; D7 D, @
组织块粘好后,加入含血清的培养基,血清一定要好,进口的胎牛血清,一般10厘米的平皿,加8-10毫升培养基。
) |# ^( N/ E! U  m加培养基的时候,慢慢的加,不要把组织块冲起来,轻轻晃动,让培养基分布均匀。
0 Y7 C; D* u! s1 S加完培养基之后,把平皿放到培养箱里,大概7天以后再拿出来看,这期间,只开培养箱看看液体有没有变浑浊,是否污染,不要挪动平皿,更不要频繁拿出来观察。5 d. p. i" u$ n( h$ J
如果都做到了,期待是新鲜的,基本不会有什么问题,我这么教师妹做,个个都做的出来。" ~( D  }. n+ Q
需要注意的是,组织块不要用PBS什么的洗来洗去,会降低胶质的粘附能力。
% D9 x  s* Q* x3 ^1 W$ F脐带在解剖前做好灭菌,我们用的是75%乙醇,之后大量PBS清洗。3 L! r5 n  R' x1 Z9 z5 J
从开始解剖分离胶质,组织就不能再和液体接触了,不然组织都贴不上。
* W0 n7 ?+ p7 U  `9 K" h+ r9 E8 d  L除了分离血管,羊膜也一定要去除,那个东西很致密,细胞不容易出来的,而且也不怎么贴壁,除非你能保证你用组织块贴壁的时候,接触平皿那一面肯定是胶质。3 {( {: @1 B, K, g) l
最后再说,血清很关键,普通的GIBCO根本不行,我试过,很难长出来的,对于新手来说,一定要用高品质的进口胎牛血清才能保证细胞爬出来的多。
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发表于 2015-9-29 14:47 |只看该作者
回复 edwardellen 的帖子' H/ G2 O3 Q: }7 e7 W
+ u& R9 C% L4 h
谢谢大侠,我再去做做看

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发表于 2015-9-29 14:49 |只看该作者
铺瓶后不要直接加培养液啊,不然肯定会直接飘起来的,铺瓶后应该倒置培养4~6h(或过夜)后在加入培养基正置培养,一般7~14d即可会看到细胞爬出。
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