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楼主: 皮搋子
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绵羊脐带间充质干细胞,无文献摸索-Ⅱ 细胞诱导分化鉴定 [复制链接]

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发表于 2011-2-20 11:07 |只看该作者
本帖最后由 皮搋子 于 2011-2-20 11:13 编辑 2 }+ `7 U7 p  g/ R
7 C9 F8 O. y9 U" ?  x$ o4 V7 Q! N/ O
转载一下noodleaf在一个帖子中的建议,供大家参考: 另外也问一下noodleaf,你那个配液方法貌似很难理解。。。请问配液是多少D/F12加上1nM 地塞米松. B以及其他的?看的人相当无解啊,本来非常详细的一个技术贴,因为这个原因,根本没法用。
! D! O' i% `  t# `0 f
7 I$ g5 U% j' ^向成骨细胞诱导分化
( m( O& F) A( d) W) K( G7 x; L成骨细胞诱导液: % z1 q: ~& v' m4 m! d* V( E( O
D/F12( 10%FBS)8 T# n; J( [+ V/ h; k
1nM 地塞米松. B
0 c' p8 N3 P1 {' o' H1 U50 mM 维生素C* X$ B- P7 m6 c- c
10mM 甘油磷酸钠
- h' ]6 P2 |8 @$ d1 S' X# _; V* U% A每3-4d换液1次,诱导至21d检测。) s) y$ H+ L3 u" I, i( B
2.        检测方法; ^" o2 V5 v8 h* i5 b) F5 w! ?
1)        光镜下观察:可见黑色不透明区域,肉眼可见白色结节时,进行染色检查;
7 F- y- R  B  Q2 t! G2)        茜素红染色检测:染色2-3min。- {9 I0 g' d9 U8 `( q
3)        成骨细胞碱性磷酸酶(ALP)钙钴法染色:
( _5 N2 ^6 A0 c& i3.        配液:9 J3 H; ]9 n6 {* ?% y1 y" ^
1)        1uM 地塞米松
5 @/ a# e1 g+ F6 S2)        50 mM 维生素C9 P) ^+ P) ?% e# }
3)        10mM 甘油磷酸钠- ]6 `+ Y' x/ P) E) ]( H
4)        2%茜素红:取2g茜素红,溶于100ml95%乙醇溶液中,搅拌,与900ml 1% 氢氧化钾溶液相混。
$ }! i3 R- W" @! _4 y( X8 g! \( b
$ k' h% J6 \. a/ U7 b) D9 T向脂肪细胞诱导分化
  O0 r0 b: y. O" N* u7 o* b脂肪细胞诱导液:   9 \% b% f- J2 M
D/F12( 10%FBS)
$ |) }+ E1 ]2 l1uM 地塞米松6 e' v0 h" ]( V6 @
0.5mM  IBMX(3-异丁基-1-甲基黄嘌呤)7 Q3 L7 t8 y) g7 l
100ug/ml 消炎痛
$ {1 E/ H" [6 C10ug/ml 胰岛素
8 R7 N, u! c7 |. o4 p8 o每3-4d换液1次,诱导至14d检测。
& x, @, F9 ~0 K) e: y2.        检测方法:
" e2 \. a& }5 t/ H  t7 L8 B1)        光镜下观察:有成串的脂滴形成后(约10d),进行染色检查;
' [9 c! @+ S  {2)        油红O染色检测:染色30min。
2 C" x( I* A2 N- R% h# U  V3.        配液:
  z; ^& [+ F: f3 A) G/ Y0 P6 |' Z& {" L1)        0.5uM  IBMX:
: B8 V1 W- g- g: O! T' I% U) D' F2)        100ug/ml 消炎痛:
9 p( ?# n3 o" H. }4 O3)        10ug/ml 胰岛素:) X7 K( o  Q( h4 o
4)        油红O:油红干粉0.5g,溶于100ml异丙醇中,使用前以油红贮存液:去离子水=3:2的比例稀释成工作液使用。' c9 E1 H+ J# H

3 [1 T4 ~, |! q$ w9 I向软骨细胞诱导分化
/ Y9 @8 ?8 X- [软骨细胞诱导液:
; v8 p! Y( {$ |) BD/F12( 5%FBS)
" T* f2 D8 M5 o. i" Q* W2 `5 E- j10 ng/ml TGF-β1
' w! r: T/ I4 A& D) T, m) i2 F0.1uM 地塞米松
' ]4 B2 \& @: N# j7 q50 mg 维生素C7 \7 a% S2 ^3 Z, `0 v/ {) [
同时以未诱导MSCs作为对照。培养箱内进行培养,每3-4d 换液一次。诱导至21d后,进行相应检测。, P7 ~( i8 G; `* `& J6 o# V0 y
2.        组织化学和免疫组织化学分析)
( }( Y( c/ K0 x& w( P1)        显微镜观察:在倒置显微镜下,MSCs成软骨诱导分化后,细胞胞体变圆,胞质减少。
. G8 |5 c  V4 l5 E0 w4 N2)        番红O染色:诱导分化14d后,移出培养基,生理盐水/PBS洗12孔板一次,4%多聚甲醛固定30min,PBS洗2次,1%番红O染色约3min,蒸馏水洗3次,95%乙醇洗3遍,光学显微镜下观察并采集图像。; \# u6 i" Z5 N/ ~5 j4 D! ~$ H# K( Y
3)        甲苯胺兰染色:染色2-4h。
4 k6 C/ M0 [. |7 k4)        阿利辛兰染色:染色
3 m( V0 E: u( c, _' k5)        Ⅱ型胶原免疫组织化学染色:) h/ {) O0 X( ?; G6 H" A! P9 G
3.  配液(1L)+ X) K( D  Q& n5 z: ?
1)  0.1uM 地塞米松:3.9*10-5g
/ a+ g  C' F) x' x- X& A# ^2)  50 uM 维生素C:8.8*10-3g6 t) S5 r) t; Z7 |5 k$ d# z7 @
3)  10 ng/ml TGF-β1:10ug/L
( Y# T, y2 ^" D0 ?) D. e4)  番红O配方:番红O  0.5g  95%酒精  50ml。0 A/ r% v% Z7 L, r$ g  J! c! V
5)  甲苯胺兰配方:甲苯胺兰   0.5g   0.1M PBS  50ml,调节pH7.2-7.4。
3 W5 J8 m$ @8 }) V. S+ G- }6)  阿新蓝染液(PH2.5):阿新蓝(8G×)1.0g、3%醋酸100ml。调整ph为2.5。
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发表于 2011-2-20 22:02 |只看该作者
金戈 发表于 2011-2-19 15:31
- k6 U+ x9 G/ T2 L1 y' ~回复 皮搋子 的帖子9 k' p: b- j* n7 o/ d

# @4 m7 l) g8 _' M. nTO 1: 染液不需要无菌。

% D& M) b6 M: m) L" F  d都帮我说了,谢谢,:)

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发表于 2011-2-22 13:18 |只看该作者
回复 皮搋子 的帖子
3 N1 w% e, A/ f" W6 [2 c% q
- B* e8 `5 {7 M: {* d这两天忙着没上网,配方在办公室。晚上给你。(但愿下午没忘记:))

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发表于 2011-2-22 20:27 |只看该作者
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/ U# m6 o5 U) a; O" V& |/ J# ?  B, g8 X
下午一上班就先看了自己的手册。呵呵  f. X! B* z  B. y
配方是:0.01g茜素红+1ml 95%乙醇+9ml 1% NaOH
$ b4 D; w' Q; x" ]( I3 o3 I
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