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[原创] 我们实验室细胞传代的一般方法 [复制链接]

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包包
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楼主
发表于 2009-6-6 12:30 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
这一方法较简单,不需要离心,而且消化后细胞很少聚集成团,具体步骤如下:( m* Q+ f% f) H( q$ L9 h* P

% _/ n" x. f$ v2 ?) u1、吸尽待传代细胞瓶内的培养液,按1:1 的比例加入适量0.25%胰酶和0.0 2%EDTA(一般100ml培养瓶各加2滴管消化(消化时不要晃动培养瓶,以免消化不完全而导致细胞成片脱落,从而导致细胞成团,无法吹散)。1 s2 O$ f  U" u# P6 h
$ O9 ]& \0 c. \( q7 z, b- o" }
2、消化致细胞变圆,细胞相互脱离接触但还未从瓶壁脱落时,吸尽胰酶和EDTA。* K! n/ J6 _& `$ N
9 U# b5 W+ |7 s
3、利用残留的胰酶和EDTA继续消化数分钟。7 W, s5 Z& d! J

" f* ^% q, t5 {0 }4、加入适量培养液,反复吹打,然后分别接种致新的培养瓶。: Y. o7 m8 P+ a; M1 g* a0 c
' C1 P8 o* i0 ~6 _) F. z
注:消化的时间需根据不同细胞摸索确定。
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金话筒 帅哥研究员 优秀版主

沙发
发表于 2009-6-13 12:01 |只看该作者

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藤椅
发表于 2009-6-13 15:21 |只看该作者
如果细胞还未脱离,残留EDTA不用hanks冲洗啊,不过中间的度不好掌握倒是

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优秀会员 金话筒

板凳
发表于 2009-6-13 15:31 |只看该作者
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各有各的窍门。
6 I! K$ }7 Z8 `: l; i7 Q不过我不会选择这种方法,离心不会耽误什么事。我曾偷懒,血清终止胰酶后直接传代,没有离心,结果细胞状态和之前方法处理相比差了许多。当然你是把消化液吸出了,但还有问题:度不好掌握;毕竟还有trypsin/EDTA残存,对细胞的影响可以完全消除吗?
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报纸
发表于 2009-7-2 22:18 |只看该作者
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地板
发表于 2009-7-11 23:03 |只看该作者
第一次见到这么传代的方法,假设有胰酶残留,会影响以后的细胞生长吧。当然后面培养液的血清可以终止胰酶的作用,你这种方法的优势在哪?有时候,细胞数目跟生长状态跟经典的方法没什么区别,但细胞内部结构或者是否癌变,你是否考虑?我还是比较信可终止消化后离心这种方法。
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发表于 2009-7-13 08:59 |只看该作者
EDTA可以用血清终止吗?

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优秀版主 专家 金话筒

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发表于 2009-7-21 08:50 |只看该作者
本帖最后由 饶冠华 于 2009-7-21 08:52 编辑 , K" j, A2 A4 |$ p% E

, T4 W. S# |: ~: Z. M& D我们实验室的方法和你的就有一点点差异:
* R' ]# K) U7 H# d# U. O( V' x3 Y" D# h4 R
我们是吸尽培养基之后先加入2~3ml EDTA冲洗20~30S,然后吸尽EDTA,再加入2~3ml胰酶 冲洗 10S左右,同样吸尽胰酶(或者留少许),放入培养箱数分钟,待细胞变圆, 加培养液终止消化,然后分瓶培养。(不离心)0 z5 Q# A  }9 [

3 C7 Q4 u, t$ u注意: 这里所指的冲洗并不是使劲用移液器吹打,而是轻轻地晃动培养瓶。7 F) L/ g7 q9 Z, f  S: H
7 H; K( B3 L5 R' p
这样先EDTA 后胰酶 就可以除去残留的EDTA  而少许胰酶残留对细胞几乎没有影响。
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发表于 2009-8-7 15:47 |只看该作者
用过类似的方法,但通常不加EDTA(特别难消化的细胞除外)。
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发表于 2009-8-11 08:51 |只看该作者
残留EDTA
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