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关于MTT的若干问题~~   [复制链接]

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楼主
发表于 2010-2-22 19:40 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
问题一:目前我找到的MTT改良法有两种,其一是周建军的“评价抗癌物质活性的改良MTT方法”,具体配方是:三联溶解液:SDS10g,异丁醇5ml,10M HCl 0.1ml用双蒸水溶解配成100ml溶液。其二是安云飞的“改良MTT法检测HePG22 细胞增殖的研究”,其配方是:。pH 调节混合液:取盐酸1 ml ,冰醋酸9.6 ml ,加水13.4 ml 。甲
# z# |$ z2 E9 d/ b0 w+ s瓒裂解液:于200 ml 体积分数为50 %的DMF 溶液中缓慢加入SDS 28 g ,经磁力搅拌充分溶解后,普通滤纸过滤,pH 调节混合液调pH 值至4.7。我想请问下做过MTT的前辈们,哪种方法可靠些?不知道有没有人比较过MTT和改良的MTT之间的优劣?6 ~9 _! Q/ Y% ]5 T% Q9 E
问题二:关于加MTT试剂之前培养细胞的培养液之问题,我看了一些资料说含血清的培养液可能会对测量值造成影响,但如果我的空白组也是用的含血清的培养液,那么是否能抵消这个的影响呢?. d) R( b1 \* U* s" J9 S. D
谢谢!!!
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沙发
发表于 2010-2-22 22:23 |只看该作者
MTT裂解液,我用过DMSO、10%的SDS、酸化异丙醇,个人感觉如果是贴壁细胞,可以直接使用DMSO,最后的OD值要高一些。如果是悬浮细胞,推荐使用酸化异丙醇,操作较方便,直接加进去吹打溶解即可。不建议使用10%的SDS,我做了几次,吹打过后,泡沫较多,影响读数。' I" S4 r. p4 ^# E3 ^8 _, d
血清可能有影响,但正如你说的空白也有,可以不用考虑。
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藤椅
发表于 2010-2-22 23:24 |只看该作者
回复 2# xbs530515 $ i, [+ Q6 F( o. M$ g
谢谢你的解答,请问你是用的我说的MTT改良方法吗?我养的是BMSC,贴壁不是很牢,因此如果加DMSO溶的话,OD值有点偏小,且若干空甲瓒丢失严重!/ Q3 o* |( }# l/ J, z/ r
这种改良的MTT法能否用于贴壁的细胞呢?是否直接加DMSO对于贴壁的细胞来说要比改良的方法好些?
8 ]& S8 z- C) M) ]. A# z# w3 ^" j此外,有气泡的话你是否试过在摇床上摇10min以去除气泡
+ p# t5 X3 D# H: L+ Y4 |3 J! n) b  e再次感谢!
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板凳
发表于 2010-2-25 10:21 |只看该作者
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为什么不直接买公司的MTT粉末呢?价格不高,配制也方便
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报纸
发表于 2010-2-25 10:42 |只看该作者
回复 4# bingo ' {# I# D' [( u: s, N& x* M: g7 O

) u. U  `6 j) ]- y$ r! e我用的就是MTT干粉,但问题不是这个,我用DMSO溶解甲瓒之前要去除培养液,就是这里损失甲瓒晶体太多,我是用滤纸倒吸的方法去除培养液,但因为BMSC贴壁不是很牢,故老是有损失,但改良的这种方法就不用去除培养液而直接加,但不知道效果如何
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地板
发表于 2010-2-25 10:44 |只看该作者
回复 4# bingo ( x8 V" F# u. h2 h6 r) Z# s
- w5 a. F! |/ l7 n, ?, b
这个是具体的方法
/ V7 @! d  x4 E7 a    用以下文献方法:周建军等,评价抗癌物质活性的改良MTT方法,中国医药工业杂志,1993,24(10):455-457. {$ X; q8 g3 |, A# w8 n$ D
具体方法:
+ D4 ]7 z' I$ C% p' g/ `配三联溶解液:10%SDS,5%异丁醇,0.012mol/LHCL,蒸馏水溶解。
- o  Y, J; v' W: R8 N- a三联溶解液:SDS10g,异丁醇5ml,10M HCl 0.1ml用双蒸水溶解配成100ml溶液. U3 r* n4 Y( s; Q! W5 S
操作:在培养板上加一定密度的细胞悬液,90ul/孔;如需给药,则再于同时(悬浮细胞)或4h后(贴壁细胞)加入不同浓度的药物10ul/孔,均设三复孔。另外,每块板上另没一个调零孔(只加培养液,不含细胞和药物)。培养2d后,加入MTT溶液20ul/孔,继续培养4h,然后加入上述三联液100ul/孔,于37度放置过夜后,用酶标仪测各孔A570值。
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发表于 2010-2-25 12:19 |只看该作者
啊哦,你的MSC养在什么上面啊,我也做MSC,没有发现损失的现象哦,反而要溶解很久才能把甲瓒溶解完全。
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发表于 2010-2-25 13:18 |只看该作者
回复 7# bingo
. H& y( Z, m3 u, b4 F5 m5 W# c" w( F/ p
  s& P3 N8 M* `: B3 A! Y' s
    我是用一次性的培养皿养的,我也不知道为什么,总之甲瓒一不注意就回流失。平常养细胞的时候细胞贴壁倒是蛮好的。我听说用过MTT后细胞形态会消失,不知道是不是这个原因。你测MTT的时候OD值一般是多少?我最高的0.3左右,不到0.4.而且有很多孔的OD值与空白对照相似。
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发表于 2010-3-4 10:10 |只看该作者
一般的空白是0.035左右吧,一般实验都是0.2~0.4之间,没有太高的。
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发表于 2010-3-4 19:49 |只看该作者
我测过兔的MTTs生子曲线,密度变化太大,最后发现800--1000个细胞/孔效果比较好,OD基本分布在0--0.7,密度高的都到了1.4。我是采用经典的方法,没改良。7 {+ ?4 F+ M3 r2 |8 I: V
    另外,BMSC贴壁是很牢的。, O) w9 T- k( V/ R0 N9 `. O* |
    此外,我没注意用过MTT后细胞形态会消失的问题。
7 B2 m" C3 {/ d  }0 j    值得很定的是滤纸倒吸的方法去除培养液可以减少甲瓒损失。
/ ^) ~3 r! c4 J: B    建议有2:& V+ V. b, z  C1 @  p, I( M
          1;种植密度梯度5 ~5 q- Y+ L- O5 b* V- f0 \9 I
          2;空白对照设置
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