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[请教] 怎么制作鼠胚成纤维细胞(MEFC)? [复制链接]

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楼主
发表于 2010-3-31 02:39 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 细胞海洋 于 2010-3-31 07:25 编辑
8 R# n; I/ K, H$ l! |0 A0 K& _# b8 R8 w* J! f6 z" Y& C: W
楼上的兄弟能够告诉我怎么制作么?一般用0.25的胰酶在37度消化多长时间?如何判断消化好了呢?我每次制作的时候 总是觉得细胞量少,还有就是把鼠胚消化成糊糊状了  在离心管中始终无法将细胞液和组织分开出来
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沙发
发表于 2010-3-31 08:50 |只看该作者
加EDTA的胰酶一般消化5min即可,消化液用100微米或200微米筛网过滤即可分开细胞液和组织,建议参考http://www.stemcell8.cn/thread-16869-1-1.html
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藤椅
发表于 2010-3-31 08:51 |只看该作者
不好意思,应该是100目或200目筛网,孔径好像在70微米左右

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板凳
发表于 2010-4-1 20:54 |只看该作者
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吹打!~~~

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报纸
发表于 2010-4-1 22:34 |只看该作者
回复 1# zhangdagou
+ ~! \1 {) l! z/ P  y" Z我说的絮状就是组织块不明显了。要细胞量多可以稍微消化时间长一点15分钟左右。另外你说的粘稠物应该是细胞破碎产生的DNA,可以在消化液中加点DNA酶,或者减少每管组织块的量增加胰酶量,组织块剪碎,消化时间短就不会有大量粘稠物产生。
9 F) H) \% _7 O( H2 n) k2 s如果在消化后,还是出现了粘稠物,无法将细胞离心下来,你可以试一下将离心后的上清尽量吸出,向剩下的胰酶残留中加入5倍以上体积的培养液(+10%FBS),然后全部倒到培养皿中培养(不过筛网),第2天或第3天时会有大量的细胞贴壁(尤其在组织块周围),换掉培养液,用PBS洗,大的组织块可以直接用枪吸掉,胰酶消化将细胞重悬后再加入培养液培养(不用分盘),半小时后换液换掉所有不贴壁组织和细胞,这样做要比组织块贴壁来得快,细胞量也比较大。
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地板
发表于 2010-4-9 18:47 |只看该作者
首先谢谢楼上的朋友们,我后来做了一次,消化8分钟后中和,总共消化了三次,取得的细胞量很多,状态也很好
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发表于 2011-10-22 13:58 |只看该作者
回复 zhangdagou 的帖子5 O! l2 K2 y5 U: Q

( R; s( L7 A* \* u2 J9 ]0 w  w你好,请问消化了3次是什么意思啊
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