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使用无血清培养基培养MSC细胞时,经常容易出现哪几个错误 [复制链接]

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发表于 2019-1-2 09:56 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 友康生物 于 2019-1-2 09:56 编辑

根据友康生物的客户曾经做过的并且反馈回来的问题,我们给予总结得出以下:
1. 细胞消化的原因
选用胰酶浓度过大及消化时间过长,对细胞造成了损伤,导致传代后,细胞生长不佳的后果。 消化1分钟以内,时间不可过长,至少使用2倍体积的胰酶抑制剂终止消化,离心后,完全去除上清,加入预温的完全培养基重悬。
无血清培养基细胞传代推荐使用温和酶(友康产品,货号:NC1004)替代胰酶,温和酶对细胞损伤小,收获细胞的活率高,传代后扩增倍数能维持较高水平。消化所需时间为2分钟左右,且10分钟内对细胞基本无损伤,无须抑制剂终止消化,仅需5倍体积PBS稀释后,离心去除即可。
2.  细胞融合度问题
有的实验人员习惯让细胞融合度超过了95%,部分区域细胞融合度已达100%,甚至堆叠在一起。
MSC细胞融合度接近100%后,会产生细胞接触抑制,降低细胞活性,致使细胞传代后,生长缓慢或扩增倍数急剧下降。有的实验人员为了节省细胞培养瓶的用量,而让MSC细胞生长过满,是错误的做法。会导致MSC细胞活性受损,下代细胞数量生长速度变慢,衰老增加。反而达不到收获更多细胞的目的。对此建议细胞融合度不可超过80%







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