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作者:徐全胜 张家明 李宾公作者单位:武汉市第一医院心内科,湖北 武汉 430030 / r7 _9 M9 ?- _5 N T* v% G0 C
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$ P' k$ e9 p" J- s/ k 【摘要】 目的:观察辛伐他汀对冠心病患者外周血内皮祖细胞(EPCs)增殖的影响并初步探讨其机制。方法:冠心病患者28例,随机分为辛伐他汀组和对照组,前者给予辛伐他汀40 mg/d口服,治疗前及治疗后2、4周抽取外周血,采用密度梯度离心法获取单个核细胞,培养7 d后对贴壁的细胞进行分析。以激光共聚焦显微镜鉴定为FITC标记的荆豆凝集素Ⅰ和Dil(一种亲脂性碳化青荧光染料)标记的乙酰化低密度脂蛋白双染色阳性细胞为EPCs。计数法比较二组EPCs数目,并对病人血浆低密度脂蛋白-胆固醇(LDL|C)水平和EPCs数进行相关分析。另取10例冠心病患者血培养EPCs,加入辛伐他汀、PI3K/Akt信号转导通路抑制剂Wortmannin后观察对其增殖的影响。结果:辛伐他汀组病人治疗后2周、4周外周血中EPCs明显上升(P005),体外实验辛伐他汀 Wortmannin组的血EPC数目较辛伐他汀组明显下降(P4 G: J% A+ }0 v$ M0 y+ F: S/ |
【关键词】辛伐他汀 干细胞 PI3K/Akt
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5 [# ?7 x* J& R6 z6 ~Effect and mechanism of simvastatin on the proliferation of endothelial progenitor cells/XU Quan|sheng, ZHANG Jia|ming,LI Bin|gong,WANG Zhao|hui,WANG Xiang//Chinese Journal of Cardiovascular Rehabilitation Medicine,2007,16(3):271
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* C9 ]$ n" s: z2 Y3 J$ }2 H: YAbstract:Objective:To investigate the effect of simvastatin on the proliferation of endothelial progentior cells (EPCs) and possible mechanism.Methods:The 28 patients with coronary heart disease(CHD) were divided into two groups: simvastatin group and control groupThe former were treated with 40 mg of simvastatin per day for 4 weeks.Before and 2 weeks or 4 weeks after the statin therapy, mononuclear cells were isolated from blood of patients by density gradient centrifugation.Adherence cells were harvested after 7 days culture.EPCs were characterized as adherent cells with double positive for Dil|acLDL|uptake and ulex europaeus agglutinin(UEA) binding by direct fluorescent staining under a laser scanning confocal microscopeEPCs were counted and analyzed.In addition, Liner correlation was used to analyze the relationship between the numbers of EPCs and LDL|C levelsEPCs harvested from other 10 patients blood were incubated with or without simvastatin and Wortmannin, a specific inhibitor of PI3K.Then the proliferation of EPCs was investigated.Results:The number of EPCs significantly increased in subjects with simvastatin in 2 or 4 weeks(P005).The number of EPCs decreased(P
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" v" y: X5 Y- I& m7 Q; dAuthor′s address:Department of Cardiology of the First Hospital of Wuhan, Hubei,Wuhan,430022, China C" [9 b' C, |0 x9 s
" E: H7 D+ y" D& e: C* @( p4 v! _Key words:Simvastatin;Stem cells; PI3K/Akt 内皮祖细胞(EPCs)是一类能分化为血管内皮细胞的前体细胞。研究表明,EPCs不仅参与胚胎血管生成,而且在出生后成体血管新生过程中也起了重要作用[1],新生血管中25%的内皮细胞是由EPC直接分化而来的[2]。正常人外周血循环中有一定数量的来源于骨髓的EPCs,参与维持血管壁的完整性,但冠心病(CHD)病人的外周血EPCs数量减少,功能减低,且这种损害与CHD的危险因素呈相关性[3],因而研究如何提高外周血中EPCs的数量、功能对于治疗CHD等缺血性疾病可能会提供一种新的思路。本实验旨在观察辛伐他汀在体内及体外对EPCs的影响,并对其机制作初步探讨。5 \+ {0 |% C- @/ ~& A. e8 L
, k7 K( ?# y3 ]& Z3 B1 资料与方法( ?1 V9 `0 _. M
0 ^! H1 u( |- I11 主要材料与试剂淋巴细胞分离液(比重1077)购自上海生化试剂二厂,EGM-2-MV内皮细胞培养基购自Clonetic公司,胎牛血清购自GIBCO公司,人纤维连接蛋白购自Chemicon公司;异硫氰酸萤光素(FITC)标记的荆豆凝集素Ⅰ(FITC-UEA-Ⅰ)、Dil标记的乙酰化低密度脂蛋白(Dil-acLDL)均购自深圳晶美生物公司,辛伐他汀购自杭州默沙东公司、磷脂酰肌醇3激酶/蛋白激酶B(PI3K/AKt)信号通路抑制剂Wortmannin购自sigma公司。
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12 研究对象以冠状动脉造影有≥1支的冠状动脉狭窄>50%为诊断CHD标准,选取28例非急性心肌梗塞的CHD病人,随机分为辛伐他汀组和对照组,每组14人,两组病人临床资料见表1。病人确诊后辛伐他汀组口服辛伐他汀,每日40 mg,其它治疗措施两组无差异。另取10例CHD病人外周血各10 ml,用于培养EPCs后进行体外实验。
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13 方法
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131 辛伐他汀对CHD病人外周血中EPCs数目的影响:每例病人在治疗前、治疗后2周、4周时分别取外周血10 ml,常规密度梯度离心法分离单个核细胞。将单个核细胞以1105个细胞/孔的密度接种在人纤维连接蛋白包被的6孔培养板。加入EGM-2-MV培养基及5黃于5%CO2培养箱中,37℃恒温培养。培养4 d后,用PBS洗脱非贴壁细胞,换液后于第7 d进行检查分析。贴壁细胞用Dil-acLDL、FITC-UEA-Ⅰ行荧光化学染色,激光共聚焦显微镜下观察,染色双阳性细胞被认为是正在分化的EPCs。每孔随机选择15个视野(200)对EPCs计数。取其平均值换算成每mm2的细胞个数记录。表1 本组冠心病人一般情况
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132 辛伐他汀对CHD病人血清胆固醇的影响:辛伐他汀组病人在治疗前及治疗后4周分别测定其空腹血清中TC、LDL|C的含量。计算治疗前、治疗后LDL|C的差值,并与治疗前、治疗后培养计数所得EPC数值做单因素直线相关分析。; u2 o: G$ x* [, A9 X
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133 辛伐他汀对培养的EPCs直接作用:10例CHD病人各抽取外周血10 ml按上述方法培养EPCs。培养7 d后对每份样本获得的贴壁细胞随机分3组,A组只加培养液为对照组,B组加入终浓度1μmol/L的辛伐他汀,C组加入终浓度1μmol/L的辛伐他汀及5nmol/L的Wortmannin。继续培养24 h后对贴壁细胞进行Dil-acLDL、FITC-UEA-Ⅰ荧光化学染色后在激光共聚焦显微镜下记数双阳性细胞并进行比较,方法同上。& C7 k2 O1 {' B4 l" O" k
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14 统计分析采用SAS 81 for windows统计软件进行数据处理。实验数据以均值±标准差(±s)表示,组间均数比较用方差分析及q检验,以P<005为差异有显著性。8 A J+ i. a, M/ v' S2 M
: q% f _$ I. t2 结 果
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3 E% I$ t, {- T3 O8 m( G5 t+ W21 EPCs的鉴定及计数培养4 d后可见贴壁的单个核细胞,7 d后单个核细胞变为内皮样细胞,呈胞梭形。对贴壁细胞行荧光化学染色后,在激光共聚焦显微镜下观察,见>80%的细胞双染色阳性(图1),说明这些细胞能内吞ac-LDL 和结合UEA-1,可被认为是正在分化的EPCs。对EPCs进行计数比较,可见治疗前两组病人外周血EPCs差异无显著性意义(P>005),而治疗2周后辛伐他汀组病人EPCs明显多于治疗前(P005)。对照组各时间点所测EPCs数目无明显变化(图2)。
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( x: [5 H2 X* X! ?, _7 ]/ H- P) f6 @" ~% e22 直线相关性分析 辛伐他汀组病人LDL|C与EPCs的相关系数:治疗前,r=0324(P=0311),治疗4周后,r=0227(P=0528),LDL|C的下降值与EPC的相关系数r=-0176(P=0626),提示辛伐他汀增加EPCs的功能与其降脂作用无相关性。# e0 l7 s6 s2 |8 e# u6 A9 N6 K
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23 体外11辛伐他汀对EPCs增殖影响见图3。 EPCs加药后继续培养24 h后,辛伐他汀组(B组)与对照组(A组)比较, EPCs增殖数目明显增加(P005)。注:与对照组比较△△P
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3 讨 论
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内皮祖细胞(EPCs)是一群具有游走特征并能进一步增殖分化的幼稚内皮细胞,仅从形态特征上,不能把EPCs识别出来,目前主要依靠细胞表面的分子标记进行识别。它既可表达在成熟内皮细胞表面,如血管内皮生长因子受体Ⅱ(KDR)、血管内皮细胞上特异的酪氨酸激酶型受体(Tie)1 、Tie2受体、VE2钙粘附素等,也可表达在某些造血干细胞表面,如CD34 、AC133等[4]。由于缺乏特有的表面标志,因而目前分离、纯化EPCs具有一定的难度,一般是综合各种标记加以确认。目前比较一致的看法是CD34 、KDR、AC133 (即CD133)细胞代表EPCs,以此作标记用流式细胞仪测得正常人外周血中EPCs数量为500~1 000个/ml,但CHD病人的数目更低,由于数目较少,因而直接测外周血中EPCs数量误差较大。本文参阅国外有关文献[5],在同等条件下培养外周血EPCs,对培养后的EPCs进行计数,以反映原先血液中的EPCs数量。EPCs经贴壁法培养纯化,再经过目前国内外通用的Dil-acLDL、FITC-UEA-Ⅰ荧光化学染色从功能上对EPCs进行标记后,双染色阳性细胞就基本上代表了EPCs的群体[6]。本研究发现,CHD病人外周血中EPCs数量较正常人明显降低,而服用辛伐他汀后,EPCs数量明显上升,且这种作用与其降脂作用无相关性,这提示辛伐他汀升高EPCs的作用不依赖于其调脂作用。体外实验发现,辛伐他汀可直接作用于EPCs,促进其增殖,这种作用可被PI3K/AKt信号转导通道抑制剂Wortmannin阻断。PI3K为生长因子受体超家族信号转导过程中的重要成员,可受多种细胞因子和理化因素激活,Akt是位于PI3K下游的一个重要激酶,二者均是促进细胞生存和维持细胞正常功能关键的信息分子,并且共同构成细胞对外应激反应过程中的促进细胞生长、抑制细胞凋亡和维持细胞重要功能的信号传递链。多种细胞的生存、凋亡信号通过激活PI3K/AKt信号途径进行传导。已有研究表明,他汀类药物是这一信号传导通路的激活剂。Wortmannin阻滞EPCs的增殖,提示辛伐他汀可能是通过这一信号转导通路起作用的。除了直接促进EPCs的增殖外,他汀类药物还能促进骨髓EPCs的动员与分化[7],我们在以往的动物实验研究中也证实了这一点[8],这也是应用辛伐他汀可以使外周血中EPCs上升的重要原因之一。总之,本研究发现,在体内和体外,应用辛伐他汀后都能促进EPCs的增殖,且这种作用与PI3K/Akt信号转导通路有关。
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【参考文献】. l7 F1 C: \% L; Q
[1]Murayama T, Tepper OM, Silver M, et alDetermination of bone marrow derived endothelial progenitor cell significance in angiogenic growth factor|induced neovascularization in vivo[J].Exp Hematol, 2002,30:967-972.# h1 N1 Y7 L$ O
- ~0 v& j! e# S M1 ^' y' M- B: W$ p7 f
2 {6 m$ r7 R5 f8 r3 C [2]Suzuki T, Nishida M, Futami S, et alNeoendothelialization after peripheral blood stem cell transplantation in humansA case report of a Tokaimura nuclear accident victim[J].Cardiovasc Res, 2003,58 :487-492.
3 _4 ]$ X: R; X9 z. E9 n
+ P4 m8 N0 P. Y( S7 A
/ f2 k* N% E: n& v. h. E% p2 g# S w# M
[3]Hill JM, Zalos G, Halcox JP, et alCirculating endothelial progenitor cells, vascular function, and cardiovascular risk[J].N Engl J Med,2003,348:593-600.7 p8 W5 D( T3 e3 D5 Z& r# R
$ _' C6 W6 f# j K: f+ Z& n8 N) d- ]. G8 j/ Q
' q/ Z# Z: {8 b( U- S' H- V [4]Rumpold H, Wolf D, koeck R, et alEndothelial progenitor cells: a source for therapeutic vasculogenesis[J]. J Cell Mol Med, 2004, 8:509-518.2 }" {# T) [" o( `3 x( k
# ^8 C& d6 ?- ?1 h; d
, Q# y& u5 ~! `1 j
! _- G8 V- F! M5 ^. | [5]Shintani S, Murohara T, Ikeda H, et al Mobilization of endothelial progenitor cells in patients with acute myocardial infarction[J].Circulation, 2001,103:2776-2779.; d, K: Z$ z1 Y# y
# j& u5 Z' t, l7 T! M
. o5 c! Q7 I J( I* s
) |2 g0 J+ b$ e* k; X6 W8 @
[6] Fan CL, Gao PJChe ZQ, et alTherapeutic neovascularization by autologous transplantation with expanded endothelial progenitor cells from peripheral blood into ischemic hind limbs[J].Acta Pharmacol Sin,2005,26:1069-1075.
( z5 a8 ]+ q7 G+ [4 L3 M3 \* {+ n% O
7 B) G: C4 S2 C* z5 s( d3 ~2 K' g& X4 V U
[7]Walter DH,Rittig K,Bahlmann FH,et alStatin therapy accelerates reendothe 2 lialization :a novel effect involving mobilization and incorporation of bone mar2 row2 derived endothelial progenitor cells[J].Circulation,2002,105:3017-3024.
( u2 O. ~( x- q2 l9 W! Y: w5 X! ]( c& y& H+ v! z) `: H
& u* `) c+ T) Y0 ] {
% g: U V' h1 N- I& j [8]李宾公,曾秋棠,晏凯利骨髓干细胞动员治疗大鼠急性心肌梗死的实验研究[J].中国急救医学,2005,25(4):268-270. |
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