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[请教] 还是关于elisa,请教各位高手 [复制链接]

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包包
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楼主
发表于 2010-8-12 23:46 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 duoduo777001 于 2010-8-12 23:49 编辑 ! h# c0 n3 L4 g3 E6 U2 |% d

! ~+ L3 L' s( J* w& R一直都在准备elisa实验,主要是测定兔子体内的p物质的量。因为教授没有买试剂盒,所以用到的试剂都是自己配制的。这些试剂应该没有什么问题,因为已经反复查过文献,而且别人也用这些试剂做成功过,只是他们做的是病毒方面的。
* O! E1 ]3 A2 L# H一下有几个问题想请教,盼解答!& q& J0 R* S& [5 a( q
; L8 U, t) Z3 ]; D
1.我们现在最大的问题是标准物的浓度没有办法确定。问过很多人,都说我们既然是测定p物质的量,可以直接购买p物质作为稀释后作为标准品。另外看了很多资料,说是标准品浓度要根据样品中所含有的待测物质的量来确定。因为试剂盒不同,所以说明书上准品的稀释弄得都是不一样的。但是有些说明书上说到了该试剂盒“检测范围”如:40pg/ml~800pg/ml。不知道这个数值是不是就可以理解成,用这个试剂盒测定的话,实验的样品里所含有的P物质的量应该在该范围之内。另外:因为我现在不知道样品的待测物的量,如果不在这个范围之内该怎么办?9 w8 r2 F. \$ w9 f2 g
9 v! W4 E* a) G# D/ W  ]3 C
2.我们现在使用的夹心法,但是1、2抗都是来源于兔子的,和我们测定物质(也就是待测抗原)是同一宿主的,看到有的资料上说1、2抗应该来源于不同的宿主,但是买不到相关的2抗。也有的说用间接法测定,就不用考虑1、2抗不同的问题了,但是间接法一开始就要求用抗原包被,也就是待测物,不知道这个包被的浓度应该怎样确定呢,也可以说是应该怎么稀释呢?, |! F7 G/ L& J9 F2 K

( l( t* J3 @: p' \: u3、洗板的时候是不是一定要在纸上拍干,我们紧紧是将试剂吸出丢弃后,加入washing buffer后,再用枪头吸出,反复操作,感觉没有完全干净。但是一起实验的人说如果用力拍的话会把包被好的抗体给拍下来,我觉得很诧异,不知道是不是这样的!
+ `. {3 V# N; ]0 l- Q- `6 |8 U+ F# D$ g3 G/ r; i
4、显色剂用的是OPD,做过的人跟我说不用等30min,只要2~5min就可以了,看到颜色变化了就可以加入中止液(1M H2SO4),不知道是不是这样呢?  B( E9 q9 e* s( i' Q
$ B# h( Z0 n2 |' J
问题有点多,盼各位能够耐心的看完,急求解答,谢谢!# T& c, A* `" X  T- G& ]

! S9 C0 z9 m" q' W5 ~  w6 |( H补充一句,我们是先给兔子注射了50nM的P物质后,再在不同的时间抽取兔耳背静脉的血液,当时就再抽血后半个小时以内离心分离了血清和血浆,所用的样品是血清。不知道标准品的浓度和注射的P物质的浓度有没有关系。
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沙发
发表于 2010-8-13 10:46 |只看该作者
1.有些说明书上说到了该试剂盒“检测范围”如:40pg/ml~800pg/ml。不知道这个数值是不是就可以理解成,用这个试剂盒测定的话,实验的样品里所含有的P物质的量应该在该范围之内。.
7 T1 t$ H6 ?. r% n% a! S, J4 A& U8 M0 V! o/ ^% W
这是说,他们的试剂盒敏感度在这个范围内,你的样品浓度可以超出这个范围,但是他检测不出来,造成酶联仪读数不准,这个时候可以稀释样品再继续按梯度测量
' A) d# c9 J9 K: c8 Z; v3 b
$ K' v! M2 w8 P% W2 T2.间接法一开始就要求用抗原包被,也就是待测物,不知道这个包被的浓度应该怎样确定呢,也可以说是应该怎么稀释呢?
$ F1 ]. G; [& B1 M1 l: m* ]3 H- b4 O9 V( F+ x; Y0 P
用蛋白浓度试剂盒测定蛋白浓度后,我记得稀释到6~10微克/ml,如果检测结果不好,可以减小稀释倍数
& ^! _& u3 `: o, S1 \5 i
7 r& W' J( H& ?& K7 B3.洗板的时候是不是一定要在纸上拍干   2 |0 u2 R3 T2 K7 y+ L  {
通常我们做ELISA如果没有洗板机的话,就要人工操作将残液甩掉,再于少有粉末的卫生纸上排干,以纸上不再有大量液体为准.我们用的是维达经典蓝色卷纸$ Y7 W7 v% M0 \$ \2 L
7 Z( }3 I' q+ }& I& R- K
4.显色剂用的是OPD,做过的人跟我说不用等30min,只要2~5min就可以了,看到颜色变化了就可以加入中止液(1M H2SO4),不知道是不是这样呢?8 f! ~7 u$ g0 b
' c- k$ v. ?, v* {6 a
这个要看你肉眼所见颜色的变化,如果你看见的颜色比较浅,那就让它多孵育一会,如果颜色较深(紫黑色或深蓝色,记不清了),应立即加入终止液,否则酶联仪读数不准.一般都是孵育15~20min就可以终止了.
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藤椅
发表于 2010-8-18 16:01 |只看该作者
谢谢解答!- D% x# f, P% ~. }
还有一问,因为是测P物质,这里的标准品选用生物素P物质可以吗?

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板凳
发表于 2010-8-18 16:02 |只看该作者
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回复 2# bunny19870512   y5 ~' f% C4 y6 R1 j
+ n- R0 i2 H& T6 g. X

; S0 o! ?. y. |5 L% Z/ @4 Z    可以用生物素P物质作为实验的标准品吗?

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报纸
发表于 2010-8-19 09:15 |只看该作者
如果有已知浓度的P物质,我觉得应该也是可以的,公司里可以直接买到?那你还自己做P物质干嘛?
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地板
发表于 2010-8-19 11:25 |只看该作者
有些说明书上说到了该试剂盒“检测范围”如:40pg/ml~800pg/ml。是指对该试剂盒的线性范围在“40pg/ml~800pg/ml”之间,你可以看说明书上提供的标准曲线图,上面横坐标上的浓度应该与“40pg/ml~800pg/ml”一致。具体实验样品浓度应该要自己测定,建议通过预实验大概估计一下需要稀释的倍数
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发表于 2010-8-19 11:31 |只看该作者
2.我们现在使用的夹心法,但是1、2抗都是来源于兔子的,和我们测定物质(也就是待测抗原)是同一宿主的。* x) L: D& e. W% r. N
对于此,楼主可以想象一下,用兔子来源的抗体检测兔子体内的抗原会是什么结果?结果会是阴性结果也变成阳性!建议抗体取不是来源于兔子的抗体
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发表于 2010-8-19 11:33 |只看该作者
3. 包被的浓度应该怎样确定呢,也可以说是应该怎么稀释呢?
4 U, A5 c; H0 J9 k! }包被浓度的确定要用方阵滴定法

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发表于 2010-8-19 11:35 |只看该作者
4.洗板的时候是不是一定要在纸上拍干,我们紧紧是将试剂吸出丢弃后,加入washing buffer后,再用枪头吸出,反复操作,感觉没有完全干净。但是一起实验的人说如果用力拍的话会把包被好的抗体给拍下来,我觉得很诧异,不知道是不是这样的!"
( G9 t4 e2 E6 N/ k3 V' t      拍板不会把过夜包被的抗体拍下来,我的经验是:拍得越干净,背景越低,即非特异性吸附越低,结果越精确
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发表于 2010-8-19 16:25 |只看该作者
[学习中!
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