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楼主: 清影
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脐带的分离遇到难题   [复制链接]

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发表于 2010-11-16 11:40 |只看该作者
本论坛有很多类似问题已经有解决方案,建议楼主多找找

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发表于 2010-11-16 12:39 |只看该作者
回复 3# 清影
$ G( u1 W6 M% W
. P! ?, }# t* m0 ^7 z9 P9 e8 L4 ]1 O
    酶消化时间和筛子都差不多了,我们还用200目的那; M* ?; m7 T+ ?; M
   我们实验室的经验在酶消化中间是要每隔20分钟要用枪吹打几次的,你可以参考一下;
& `% [  m  f# e  N' T4 k8 A5 [" F   过筛前腰充分的吹打稀释的,你可以适当的增加吹打次数和稀释倍数吧。
9 U1 Q+ h7 L6 z: e5 N. l1 _   这是我们实验室的经验,希望对你有用。
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发表于 2010-11-27 11:00 |只看该作者
我就是反复洗然后离心,多洗几遍,但有一个缺点就是会损失一些细胞。
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发表于 2010-11-29 09:37 |只看该作者
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,谢谢楼上的同胞们。& y' o' n0 S# x; ^1 _2 r
目前我们已经找到了一些解决途径,使用DAase,HAase,DTT等,效果还不错。单纯的增加稀释,对细胞损失确实很大。
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发表于 2010-11-29 10:12 |只看该作者
如果样品很少,撕下华通胶就更少了,我的方法是一起处理,先用胶原酶4度消化过夜,再用胰酶消化,这样过滤的时候就不怎么粘稠了哈!
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发表于 2010-11-29 17:18 |只看该作者
胰酶消化时间要充足 滤网需要用两个 一大一小 其实我们用原位组织块分离脐带多一点
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发表于 2010-12-6 15:02 |只看该作者
请问“静水流深”,胰酶浓度多少?消化时间?我们经验,胶原酶消化后,若胰酶消化过度(>30min),细胞活力下降
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发表于 2010-12-7 09:14 |只看该作者
我们的培养过程中试验了组织块贴壁和酶消化方法6 u$ \! \% `" Y" S: E& Z! i6 f
组织块剪碎后,直接贴壁,2小时后补加培养基,迁出的细胞数量少,但后期活性比较好。8 E, V( B, S: ^
酶消化后很粘稠,没法过滤,所以我们经过洗涤后直接加培养基进行培养,虽然会有大量漂浮物,可3天左右会有很多贴壁细胞,经过换液后视野也会很澄明,可以试一下哦
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发表于 2010-12-9 17:01 |只看该作者
请问楼上你们是离心洗涤么?转速多少?上清倒掉时会损失很多细胞
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发表于 2010-12-9 17:02 |只看该作者
同意楼上的,对于UC-MSC组织块贴壁法要比酶消化法更加经济也效果更好。
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