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血管内皮生长因子对骨髓间充质干细胞分离培养的诱导分化作用 [复制链接]

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发表于 2009-3-3 12:33 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
作者:杜建时  赵晴  张英丽作者单位:吉林大学中日联谊医院血管外科,吉林  长春  130030
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          【摘要】  目的  结合骨髓间充质干细胞与血管内皮生长因子(VEGF)的优点,探讨VEGF对其体外诱导分化的作用。为缺血性疾病的治疗提供新思路。方法  成人新鲜骨髓,Percoll梯度分离法培养,单克隆培养法分离传代扩增骨髓基质细胞(MSCs)。在大肠杆菌DH5α中扩增和提取,纯化、克隆pcDNA30VEGF165质粒。脂质体法转染MSCs。流式细胞术检测诱导前后MSCs免疫表型变化。一抗VEGF和CD31(1∶50),FITC标记的VEGF二抗和cy3标记的CD31二抗与细胞共同孵育,甘油封片,在激光扫描共聚焦显微镜下观察细胞染色情况。结果  转染前表达CD44(7586%)、CD31(563%)。转染后CD44表达明显下调(4018%),CD31则明显上调(5620%)。FITC标记后VEGF抗体使细胞显现绿色荧光,cy3标记的CD31抗体使细胞显红色荧光。结论  转染VEGF后骨髓间充质干细胞向内皮细胞分化且有分泌VEGF的功能,为干细胞植入及血管再生起到指导作用。 ; w; s9 ^6 v& F- n; ~
          【关键词】骨髓间充质干细胞;血管内皮生长因子(VEGF);基因转染
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  骨髓间充质干细胞来源广泛,易于取材分离培养,体外扩增能力强〔1,2〕,可分化为多种组织,易于外源基因的转染和表达〔3〕,因而被认为是细胞治疗和基因治疗理想的靶细胞。血管内皮生长因子(VEGF)促进血管形成的功能早已被诸多研究证实〔4,5〕,但生物半衰期短,疗效短暂。目前,国内外学者对骨髓基质细胞(MSCs)的组织工程学应用研究较多,多将MSCs诱导分化为骨、软骨、脂肪等组织细胞〔1~3〕,而对于MSCs的内皮分化功能研究较少。本实验旨在结合骨髓间充质干细胞与VEGF的优点,以骨髓间充质干细胞易于外源基因转染和表达,抵消VEGF生物半衰期短需要基因转移治疗这一缺点进行了研究,分离和培养人的骨髓间充质干细胞,用带有VEGF165的质粒转染人的骨髓间充质干细胞,从而探讨VEGF对其体外诱导分化的作用。为以后的体外动物实验提供前期基础和一个可行的平台,为缺血性疾病的治疗提供新思路。; b: H+ I0 v: A' R% E6 j+ N
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  1材料与方法3 G% g' K, \3 |

) J( r8 B7 C$ m' b7 {! \  11骨髓间充质干细胞的原代培养5 ml成人新鲜骨髓加入5 ml含10%的胎牛血清LDMEM培养液混匀,1 200 r/min 8 min,收集沉淀。加10%的胎牛血清的LDMEM培养液至5 ml,充分混匀。取另一无菌离心管,加5 ml 1073 g/ml的Percoll液,将第一个离心管内的液体加到Percoll细胞分离液上。2 500 r/min,30 min离心,吸取单核细胞层,加适量含10%胎牛血清的LDMEM的培养液,混匀,接种于24孔板,每孔加入含10%胎牛血清的LDMEM细胞培养液至2 ml,37℃,5%CO2培养箱,饱和湿度条件下培养。8 f7 N0 ~1 t! n
3 d6 B' c$ V  a% ?" ^( P4 R
  12骨髓间充质干细胞的传代培养原代细胞培养增殖至接近融合状态时, 025%胰蛋白酶300 μl消化2~3 min,胎牛血清的培养液中止消化,轻轻吹打使细胞脱壁,按1:3的比例,将细胞置于3个培养孔内,加适量10%胎牛血清LDMEM培养液,继续培养。* M# q- m: v) b0 x" x& @8 V2 V

% P, P, l: ^. K" w2 X  13MSCs的体外VEGF基因转染5 r; ?* E- c5 G, _
. }% k+ U6 H, C% y/ U% s
  131质粒获得与测序pcDNA30VEGF165质粒由沈阳联星鞠险峰经理惠赠。目的基因共576个碱基与基因bank上查得的VEGF165基因序列完全相符,证实该质粒上连接的目的基因确为VEGF165。8 p  U+ ], ?1 a
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  132在原核细胞中复制扩增和克隆化pcDNA30VEGF165质粒制备大肠杆菌DH5α感受态细胞进行转化和氨苄青霉素筛选。在含氨苄青霉素的500 ml LB培养液中继续培养,提取纯化。
) y8 Q2 c6 q8 u% |) c8 K3 r; B6 w% J& }0 d& M! ]2 K$ W
  133转染025%胰酶消化1~2 min,含胎牛血清的LDMEM培养基吹打,转移到24孔培养板,完全培养液37℃,5% CO2培养18~24 h。质粒06 μg稀释于30 μl LDMEM。2 μl梭华Sofast稀释于30 μl LDMEM中混匀。30 μl梭华Sofast稀释液滴加到DNA稀释液中。室温15~20 min。60 μl梭华Sofast/DNA复合物加到每孔混匀。37℃,5%CO2孵育箱48~72 h。加入2 ml含500 μg/ml G418的10鸖新鲜培养液,继续培养。. E: Y( O; T" t% D" P' u  I& l) z
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  14分组免疫荧光染色鉴定共分质粒空载MSCs组,转染了pcDNA30VEGF165的MSCs组和未转染的MSCs组3组进行。细胞爬片蒸馏水化20 min,01%TritonX100作用10 min,01 mol/L PBS冲洗5 min3次,3%内源性过氧化物酶阻断20 min,01 mol/L PBS冲洗5 min3次,血清封闭30 min,滴加一抗VEGF(1∶50)4℃过夜,在振荡器上用01 mol/L PBS冲洗5 min3次,滴加FITC标记的二抗,常温避光反应30 min,在振荡器上用01 mol/L PBS冲洗5 min3次。用甘油封片,在激光扫描共聚焦显微镜下观察。
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. h' ~  b% g) c0 s, P7 I! |. Q8 }( `! }, L

" r# _" L0 A! O) \; d0 P  将转染了pcDNA30VEGF165的MSCs组细胞爬片用蒸馏水水化20 min,01%TritonX100作用10 min,01 mol/L PBS冲洗5 min3次,3%内源性过氧化物酶阻断20 min,01 mol/L PBS冲洗5 min3次,血清封闭30 min,滴加一抗VEGF和CD31(1∶50)在4℃下共同孵育过夜,在振荡器上用01 mol/L PBS冲洗5 min3次,滴加FITC标记的VEGF二抗和cy3标记的CD31二抗,常温避光反应30 min,在振荡器上用01 mol/L PBS冲洗5 min3次。用甘油封片,在激光扫描共聚焦显微镜下观察。
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9 n/ y' F. B9 T1 e. \  15转染前后骨髓间充质干细胞的免疫学表型的测定025%胰酶消化收集第3代MSCs, PBS液洗涤,与浓度为1∶30,PE标记的抗CD44、CD29、CD31、CD34、CD45抗体4℃孵育50 min,PBS液洗涤,001 mol/L PBS悬浮,流式细胞仪检测蛋白变化,以PBS代替一抗作阴性对照。0 A* ?8 k: v5 w( ^0 q9 c7 p

7 M& h) a' w* ~4 k+ A; U+ y  16统计学处理数据用x±s表示,采用SPSS100进行单因素方差分析及t检验。
& ?' `! j3 d3 W, [  O3 i2 z5 ]0 }) {3 V
  2结果
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6 f. J* Y/ t. o( c- \5 L  21免疫荧光染色鉴定转染了pcDNA30VEGF165的MSCs组呈现绿色荧光,质粒空载MSCs组和未转染的MSCs组则不显色。用FITC标记的VEGF抗体使细胞显现绿色荧光,说明转染了pcDNA30VEGF165后的MSCs可表达VEGF。用cy3标记的CD31抗体使细胞显现红色荧光,说明转染pcDNA30VEGF165的MSCs的细胞表型发生变化,表现了内皮细胞的表型即CD31,两个抗体共同孵育时,细胞既有绿色荧光又有红色荧光(图1),说明转染pcDNA30VEGF165的MSCs既具有内皮细胞表型同时又可表达VEGF。
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  图1VEGF、cy3双抗体阳性荧光染色(400)(略)1 g7 }. s/ `5 [
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  22骨髓间充质干细胞的免疫学表型的测定非转染组:CD44(7586%)、CD31(563%)。转染组CD44表达明显下调(4018%)(P<005),CD31则明显上调(5620%)(P<005),MSCs 呈现典型的内皮细胞表型。! i6 @: T9 X, j1 _5 A
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  3讨论
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  VEGF促进血管形成的功能早已被诸多研究证实,其为血管形成的主要调控因子,在体内实验中,它可直接诱导新生血管形成〔5,6〕。在体外实验中,VEGF可刺激血管内皮细胞分裂和增殖,诱导其迁移和形成管腔样结构〔7〕。并且增加细胞外基质,从而诱导血管发生。由于VEGF生物半衰期短,疗效短暂,人们开始考虑应用VEGF基因转移治疗。
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  本实验采用简单易行的密度梯度分离法培养MSCs,将Percoll分离液的密度调至1073 g/ml,获得的细胞均一性好。用含10%胎牛血清的LDMEM作为培养MSCs的培养液。因为血清浓度过低不利于细胞的生长,而高浓度血清则易引起细胞分化,影响其生物学特性,使细胞过早老化〔8〕。本实验证明,应用此浓度的培养基,细胞生长状态良好,可传数代而无明显衰老迹象,同时也进一步验证了密度梯度分离法这一经典的培养方法。CD44是造血干细胞表面所没有的,CD31作为造血干细胞的表面标志抗原则呈阴性表达,说明了培养的细胞不是骨髓中另一大类细胞即造血干细胞,而是骨髓间充质干细胞,同时,由于CD31为内皮细胞的特异性表面标志,骨髓间充质干细胞应为CD31阴性表达。
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  VEGF为内皮细胞的有丝分裂原,可刺激血管内皮细胞分裂和增殖,增加细胞外基质,诱导血管发生〔4~6〕。本实验用带有VEGF165基因的质粒采用脂质体转染法转染MSCs后发现,转染后的MSCs细胞表型发生明显转变,CD31表达率明显增高,呈现典型的内皮细胞的表型特征,这说明MSCs具有向内皮细胞分化的潜能,同时,本实验用带有荧光标记的VEGF抗体与转染后的MSCs共同孵育后,在激光扫描共聚焦显微镜下观察,发现细胞显示绿色荧光,说明转染后的MSCs表达VEGF。这就为血管组织工程学提供了良好的种子细胞,在缺血性疾病和器官缺损疾病的治疗中发挥作用。
  {* ]# l" m' e- F2 K
+ I. E! x4 P3 R* N8 p2 a9 J6 `
7 Z0 b7 [& ~+ [3 _9 \          【参考文献】
* Z% y3 O- u. ?1 c- L, m  1  Prockop DJMarrow stromal cells as stem cells for nonhematopoietic tissues〔J〕Science,1997;276:714, J+ s% ?7 K  \& U' i8 d0 y) Z+ x

2 q2 s7 H$ Q2 x% i7 m
. q6 I) \1 |/ @5 l4 }, U- o4 H. i4 Y  t" T0 D) B# V- ?
  2  张  勇,杜宏伟,邹仲敏,等人骨髓间充质干细胞的分离培养及部分生物学特性的实验研究〔J〕第三军医大学学报,2003;25(4):2912
4 U( P2 F1 P9 ?6 A2 S( m
9 m6 A6 Z  g& _2 e& j) N
: E3 |1 K& w. q( X1 b: V% U% H' w+ r% A
  3  吴  晨,潘继伦,俞耀庭干细胞在组织工程及其相关领域的研究进展〔J〕中国临床康复,2003;7(6):9467! k9 o' H) x' n7 ~* d: z$ U* i

+ N# i4 T' U8 q; n) M- \
0 s. T' m( l/ a% V% k* @" B' |2 |2 ^6 \/ V: [# ^
  4  Pittenger MF,Mackay AM,Beck SC,et alMultilineage potential of adult human mesenchymal stem cells〔J〕Science,1999;284:14343 H1 Y9 y; }( I4 Q2 i" e

! O4 I- e$ T. [( j, C9 o& c% o0 t# o" H; z2 i

" T( B" p/ m: `8 B, v  5  Neufeld G,Cohen T,Stela G,et alVascular endothelial growth factor (VEGF) and its receptors〔J〕FASEB J,1999;13:922
% B& q4 z. l: |& e! p( \+ R1 u' L; I  d. V% r
6 s2 }" l( f( ?

; F8 c- q3 @* l$ J6 c  6  Tilton RG,Chang KC,Lejeune WS,et alRole of nitric oxide in the hyperpermeability and hemodynamic changes induced by intravenous VEGF〔J〕Invest Ophthalmol Vis Sci,1999;40(3):68996& \/ Z7 Q. Y4 X# c8 ~. r4 e

: ]: p7 r" q# z; ^
3 |- W' o/ `+ g4 I  b4 Q0 i) g% P" i1 s" d9 M" C
  7  Duyndam MC,Hilhorst MC,Schluper HM,et alVascular endothelial growth factor165 overexpression stimulates angiogenesis and induces cyst formation and macrophage infiltration in human ovarian cancer xenografts〔J〕Am J Pathol,2002;160(2):53748% t9 H% `- I8 o5 [
+ a3 L9 k: ^2 ?' x. N) Z

( p* m+ e* `+ Z$ H) t9 n5 |! l% Y2 j! I/ M& o7 f  o3 h1 ?' j/ K- J
  8  Horwitz EM,Prockop DJ,Fitzpatrick LA,et alTransplantability and therapeutic effects of bone marrowderived mesenchymal cells in children with osteogenesis imperfecta〔J〕Nat Med,1999;5:30913

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发表于 2015-6-11 20:27 |只看该作者
呵呵,支持一下哈  

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发表于 2015-6-14 19:01 |只看该作者
(*^__^*) 嘻嘻……  

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发表于 2015-6-17 09:43 |只看该作者
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发表于 2015-6-24 15:41 |只看该作者
说嘛1~~~想说什么就说什么嘛~~  

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发表于 2015-7-14 16:35 |只看该作者
晕死也不多加点分  

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发表于 2015-7-18 21:00 |只看该作者
支持你一下下。。  

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发表于 2015-7-21 19:02 |只看该作者
我的啦嘿嘿  

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发表于 2015-8-2 16:25 |只看该作者
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发表于 2015-8-18 21:11 |只看该作者
呵呵 那就好好玩吧~~~~  
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