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楼主: tkpss18
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有关脐带消化问题   [复制链接]

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发表于 2011-9-23 09:01 |只看该作者
leungyk 发表于 2011-9-16 14:29
, n  c' X2 s1 X$ i跟我們有聯繫的另一組人,他們是用胶原酶和透明质酸酶的,不過是分開消化. S- w: x$ J* d  r
首先最0.1%胶原酶1個小時 (棄掉 ...
# e9 L, n9 ]9 x# f
您说的对,提问者之所以结果不好,是因为胶原酶和透明质酸酶不能同时用,而是现用胶原酶消化后,在用透明质酸酶去粘的。
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发表于 2011-9-24 00:56 |只看该作者
细胞比较粘稠很多时候是处理细胞时DNA泄露出来了。用100u/ml  DNase处理(注意一下DNase激活条件)会好很多
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专家 优秀会员 金话筒

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发表于 2011-10-9 10:11 |只看该作者
粘性不是DNA引起的, u7 j2 F' f% c3 S6 K+ \
透明质酸酶使用应该后用
' @/ ^: d6 ~' A- I胶原酶对细胞损伤小,可以消化时间延长
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发表于 2011-10-10 20:58 |只看该作者
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细胞液粘稠是DNA泄露引起的,用DNaseI处理即可: V' L7 Z2 a2 _1 e8 N
另外,消化脐带我们使用的是一型胶原酶
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发表于 2012-2-22 20:36 |只看该作者
偶用0.1%胶原酶消化40min,然后加0.25%胰酶继续消化30min,貌似效果不好啊,消化完液体很粘稠,很难过滤。8 B# t! J/ Q7 k9 U2 ~) e; R
能不能增加胰酶浓度或延长胰酶消化时间啊?
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发表于 2012-3-10 22:01 |只看该作者
透明质酸酶消化的时间是多长啊?浓度是多大啊?我怎么老做不出来,还有这些的ph要调吗?用什么调啊?
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发表于 2012-3-12 10:06 |只看该作者
回复 andylee824 的帖子1 Q6 \/ T4 C: t2 ?0 m6 ^

( f- |) |- w/ K) T* q1 w7 v8 A您好,我曾用2型胶原酶过夜(16h),组织全溶了,后来就四倍稀释离心。接种后也有贴壁变形的细胞,但是感觉很饥饿的样子,很细长,后来就不怎么长。我开始感觉是培养基的问题,后来发现用组织法做的就不是这个样子。我想问您那过夜是多长时间?组织都溶了吗?稀释几倍离心?有过滤吗?谢谢,多给新手指教
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发表于 2012-3-12 10:35 |只看该作者
过夜是不超过12小时;一般情况下,如果你剪的足够碎的话,会全溶解的;稀释10倍离心;用筛网过滤后种瓶。
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