有谁能帮帮我？怎么从外周血提取培养T细胞和NK细胞

yanlu98

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我想很诚恳的向大家请教一下怎么从外周血提取培养T细胞和NK细胞，哪位前辈有比较完整的资料，我在这方面完全空白，我在网上查到的资料感觉都不全，谢谢大家的帮忙！！！

shashou_com

外周血中除红细胞外，还有粒细胞、单核细胞和淋巴细胞及血小板等，通常是分离这些血细胞的重要来源。其分离方法有四种：自然沉降法、差异沉降法、氯化铵分 离法、Ficoll分离法。 2 g8 \! h/ Y1 X; t3 ^
1、自然沉降法：
  k: p& A9 T5 S* f6 }将无菌抗凝血放入试管中，在37℃水浴中静置，自然沉降1-2h，可见到红细胞下沉，并有明显分层，上层血浆中富含有大量的 和淋巴细胞，下层主 要为红细胞。此方法简便但各层中的细胞种类多，不纯。血浆中虽以粒细胞、淋巴细胞为主，但也含有血小板，大单核细胞和少量红细胞。下层虽以红细胞为主，但 也有上述各种细胞，此法适用于淋巴细胞转化试验。 - _- Z# {( @" z8 j0 t0 w* C
2、差异沉降法：
7 Y1 a- h; X+ Y9 S) u2 W  q用6%的右旋糖酐或3%的明胶溶液无菌消毒后，分装于中试管中，由于这些物质能使红细胞形成“串状”，比粒细胞、淋巴细胞沉降速度快，因而可使红细胞与白细胞、淋巴细 胞分离开。其方法如下：用6%的右旋糖酐溶液5-10ml，经抗凝血5ml加入上层中混合后静置于37℃水浴中30-60min，即可见红细胞下沉，上层富含大量粒细胞和淋巴细胞，下层为红细胞，使两者易于分离开， 取上层可用于粒细胞、淋巴细胞培养和实验，下层可用于红细胞培养和实验，经PBS洗3次后即可加入培养基培养，可用于天然白细胞干扰素的诱生和生产。此法 分离的细胞纯度也不高。
% O- o; O5 T: n3、氯化铵分离法：
" s- i& C1 `1 |& k/ U. `1 P( R0.83%氯化铵（NH4CL）可使红细胞破裂，通常将分离获得的粒细胞。淋巴细胞中混有的少量的红细胞用0.83%氯化铵进行裂 解，以排除红细胞的干扰。另外，此法也适合大量粒细胞、淋巴细胞的分离制备，在天然白细胞干扰素诱生和生产中已被广泛应用。方法如下： ( c3 m5 b9 T4 l9 _
将中心血站供应的健康人外周血离心分离白细胞黄层悬液先经2000r/min离心20min，吸出上清血浆，将下层的红细胞、白细胞混合后，加入0.83 氯化铵，用量为血细胞悬液液量的3倍，于4℃作用20min后离心弃去上清。
% m+ \  K% ^% [9 N& D7 p在沉淀层中再加入新鲜0.83氯化铵混匀后于4℃作用20min，以便彻底清除红细胞，离心弃上清。 / a+ k& Z/ M- S( d) S5 x9 W
收货下层的细胞用PBS洗3次后，再用含5%人AB型血清的（含100U/ml卡拉霉素）培养基制成悬液，调整细胞浓度为（8-10）x10^9个/L，分瓶加塞在 37℃普通培养箱中旋转培养（12r/h）。 ' K' }" T/ }! N0 P; \
混悬细胞时若加入干扰素诱导剂（NDV-F）诱导22h，收货上清就可生产白细胞干扰素。此法分离的细胞纯度更差。
. y" Q) _2 d7 M4、Ficoll分离法：
! X/ z7 w! d. H( M: }. O, |+ ^采用Ficoll和泛影葡胺配制而成的淋巴细胞分离液，通过2000r/min离心后可使血细胞以不同相对密度分离开，如分离淋巴细胞可选用相对密度 1.077的分离液；若分离血小板可用相对密度1.090的分离液，若分离骨髓中的单核细胞常用相对密度1.120的分离液，现以淋巴细胞分离为例，方法 如下。 % i* c( e( `/ M7 z- R5 ~
取中心血站供应的抗凝血细胞或初步分离的白细胞黄层细胞悬液，用无钙、镁离子的PBS稀释3-4倍。
. m6 S! H( A0 `/ K1 y7 t+ i2 z将Ficoll淋巴细胞分离液事先分装于离心管中，使其沉于管底，并在37℃中预热。 ! @1 J: B$ }+ M/ n
用吸管将经稀释的血细胞悬液沿离心管壁缓慢加入，不让细胞悬液冲破分层液界面，使其悬于分层液上方。
( j) C+ o( j" Y以2000r/min离心20min后，不同细胞可依相对密度不同而分布于各位置上，由于红细胞在Ficoll作用下成串下沉，故在离心管中分布在Ficoll层下方，淋巴细胞分布在Ficoll层上方。
5 y8 \5 N: U9 A$ x 收集浑浊带分离获得的淋巴细胞，用无钙、镁离子的PBS洗3次后，再用培养基洗1次后计数，分瓶培养。 " n  Z% l1 T% I* ?
此法分离获得淋巴细胞纯度高。
6 f* w% ~/ J1 S& Y' Q, b# A# s分离液的制备：9% Ficoll（20℃下相对密度约1.020）24份与33.4%泛影葡胺（用泛影钠或Conray400也可，在20℃下相对密度约1.200）10份 混合后，将其相对密度调至1.077金额可获得淋巴细胞分离液，于121℃高压蒸汽灭菌30min，室温保存备用。若配制高相对密度的分离液用加入高浓度 泛影葡胺来调整，若配制低相对密度的分离液用稀释的Ficoll来调整。; h" X% p3 K5 H3 }

大少爷

不就是培养CIK细胞嘛，网上资料多得很。。。