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楼主: 相宜
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浓度为0.1%的I型胶原酶的配制详细方法,高手请多指点   [复制链接]

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发表于 2012-4-6 17:59 |只看该作者
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. g# N/ B! |* X# n, w+ G% I( \' S) l) F8 U- u( L
大侠你好,“0.2微米滤器”你能不能介绍下它的详细资料和操作步骤。我上次就是直接用PBS溶的,结果15ml离心管里面呈现淡褐色的混悬液,也没有过滤就直接加进去了。怕是漏了重要的一步。
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发表于 2012-4-6 20:59 |只看该作者
PBS和培养基配都可以,我是PBS配的,时间我每次的时间比文献的短,37℃半个小时
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发表于 2012-4-6 23:52 |只看该作者
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' F% |. k) f' }$ V: U4 G# ]
3 _* A6 k8 g8 H' @具体有没有就是消化到可以的时候,里面脂肪组织的一些客观的指证,比如像形态、色泽什么的一些就是消化完全的一些指正?另外是都需要过滤吗?37度是就单纯放置在培养箱还是恒温振荡?
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金话筒 优秀会员

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发表于 2012-4-9 10:48 |只看该作者
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胶原酶保存条件是4度 别被楼上的给忽悠了 0.22um滤器过滤下 PBS也能配 但是主要考虑到在培养基配制时候细胞存活环境会更好一点
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发表于 2012-4-9 13:31 |只看该作者
回复 zz091115 的帖子
( W' M" G" ?1 x5 d7 M+ @8 K3 j$ a: Z1 y* I
胶原酶不是在-20度保存吗?你说的保存条件是4度是说的配好后存放于4度冰箱吗?
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发表于 2012-4-11 13:27 |只看该作者
回复 相宜 的帖子! Q7 r$ ?2 K, T8 g) k/ `( m/ g/ L

& |; J/ Q, ^# w. `, p. I1 n我看国外protocol是要震荡的,我自己是15分钟去晃一下,放在培养箱里的,我觉得还是震荡的好
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发表于 2012-4-11 13:28 |只看该作者
回复 相宜 的帖子! j5 t/ }$ X0 f
4 k0 D$ ?7 C. f  M
4℃应该是粉剂,我们也是放在4℃的,配好后也是放4℃冰箱。一般用2周后再重新配。
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发表于 2012-4-11 20:22 |只看该作者
回复 jkfly 的帖子
$ M% O' H9 \2 H2 {# V- f& Q
+ r/ S% R7 i& o0 a7 n; u啊 我就把粉剂放在-20了,配好分装后也是放在-20里面,那你说会不会受影响呢?
* ]# j/ l7 E# N2 N7 V& W

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发表于 2012-4-18 21:41 |只看该作者
回复 B1228 的帖子$ M, y" v3 w, Q
$ Q6 P* @( J3 q" B# c) g. z" R, [+ s4 Q
100ml里0.1g
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发表于 2012-4-19 10:35 |只看该作者
回复 相宜 的帖子* J, K2 J1 C, z' L

: h1 x5 u3 f' E; P粉剂的配制是质量体积比,g/ml,所以0.1%就是0.1g的胶原酶配上100ml的液体,可以用PBS,也可以用含血清的培养基(Ⅰ型此法少见,主要用于Ⅱ型等消化较难消化的组织如软骨等,可消化过夜,并不用担心血清影响消化能力的问题)。配制时,可以分装到青霉素瓶里,不用的-20℃保存,用的时候拿出来37℃融化,尽快用完。消化时间40min~1h,观察大组织块消失,消化液呈糊状即可。
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