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求教关于人胚胎干细胞免疫荧光的问题 [复制链接]

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楼主
发表于 2012-7-8 15:11 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 fish_zbw1985 于 2012-7-8 15:11 编辑
0 Y5 D- n5 C& w4 g- s& z  b/ [
$ k: ^: x7 R8 B* m最近按照标准流程做人ES细胞核蛋白免疫荧光染色,发现经常出现克隆内所有细胞核全部着色的现象.不知道是不是做的方法有问题的缘故,个人觉得应该有很多是非特异结合的染色.请问有什么办法可以做出特异性较好的免疫荧光.附我的实验方案:4 U4 l! u" v0 V2 C" K( p% |
1: 细胞用PBS洗一次后用4%多聚甲醛室温固定20min! a3 u/ ^) s" I5 j; C, h+ j
2: PBS洗三次后用含0.2%Triton X100的PBS室温穿膜15min4 |* a2 Y, A) v$ |. d
3: PBS洗三次后用10%二抗血清的PBST(含Triton X100)室温封闭30min6 t3 M% \4 w6 X5 J) k- l+ w5 O9 M7 p
4: 用10%血清的PBS稀释一抗4度过夜
/ W, n% G, j' x. K% K! O! B5: PBS洗三次后用PBS稀释的二抗室温孵育1h/ c3 J7 A0 x+ f0 u
6 : PBS洗三次后加PBS稀释的DAPI室温孵育3min! C# Z, l' {- R* Q
7: PBS洗一次后在荧光显微镜下观察
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沙发
发表于 2012-7-12 14:58 |只看该作者
我觉得你的免疫荧光染色protocol没有问题。" }. ~: U/ a; Z  {% C, Y9 S
可以从以下几个方面考虑非特异性的问题3 l9 j; ?0 V: H2 ]/ l: Y) B
1、一抗的质量问题。如果然其他的cell line 同样有非特异性的问题,可考虑此方面$ U2 n; R; h  n' G
2、一抗浓度过高,不同的样本最适合的一抗的浓度并不完全一致,若染其他样本特异性较好的话,可以将一抗浓度减低一些试试。8 ], J, m# \  @) Q
3、一抗染色后的洗涤效果不佳,非特异性结合较多。( n' x1 b( u7 x3 Y( U
4、二抗浓度过高。) C( v, R* j: s3 _4 g9 L) s3 b
5、二抗与样本有交叉免疫反应,可考虑换一个厂家的二抗。$ C7 k8 E; j7 u
以上几点是我们分析免疫荧光染色非特异性问题时考虑的几点,仅供参考。
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藤椅
发表于 2012-7-17 15:23 |只看该作者
回复 zhlqlkpc 的帖子; E2 V  J9 E  b) I' s% D

6 @! y3 Q& ], ^# D+ J0 H感谢帮助!

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板凳
发表于 2012-8-19 09:32 |只看该作者
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我做的是小鼠胚胎干细胞的免疫荧光,想看加药后是否还能表达OCT-4,SSEA即是否还有自我更新能力,但是效果一直不好,主要问题细胞经过多次冲洗到最后观察时已经掉下来了,由于我的药物是DMSO配置的不能紫外消毒,所以有时经过四天孵育后,细胞就染菌了。。。。有没有人能指点一下啊    感激不尽啊
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报纸
发表于 2012-8-19 09:33 |只看该作者
我做的是小鼠胚胎干细胞的免疫荧光,想看加药后是否还能表达OCT-4,SSEA即是否还有自我更新能力,但是效果一直不好,主要问题细胞经过多次冲洗到最后观察时已经掉下来了,由于我的药物是DMSO配置的不能紫外消毒,所以有时经过四天孵育后,细胞就染菌了。。。。有没有人能指点一下啊    感激不尽啊

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地板
发表于 2012-8-19 20:51 |只看该作者
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8 n+ d+ }* W" w) D- f
) F) S6 A+ Q: g8 w& t  `建议你发新帖提问

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发表于 2012-8-27 14:50 |只看该作者

: j, x  J( @3 QThe cell-surface-antigen expression of cultured cells can be analyzed by using immunofluorescence techniques. The following primary monoclonal antibodies are used to detect surface-antigen expression: anti-SSEA-1;anti-SSEA-3; anti-SSEA-4; anti-TRA-1-60; anti-TRA-1-81; and anti-Oct-4.
, R! g% \3 Q- z. g* P5 ?
2 b" ]) ~- N3 wFluorescein isothiocyanate (FITC)-labeled secondary antibodies, appropriate to the species and isotype of the primary antibody, can be used for detection of primary antibody binding.
- ^0 z2 v! W8 M* Z  }  {) N. }( w" |. s3 D& b/ o' p( o9 M
1. Fix cultured ES cells in Fixative Solution for 15-20 minutes at room temperature.
! g6 z. v, ?6 _3 O  E2. Wash twice (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer. ' A: g" m1 i. W
3. Permeabilize cells with 0.1% Triton X-100 / PBS for 10 minutes at room temperature. " h0 Z" E; c- [3 T* ~8 K
4. Wash twice (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer.
* N: c  o6 K) t( X2 P5. Apply Blocking Solution for 30 minutes at room temperature. 2 V6 i: m* u5 M5 Y6 @
6. Dilute primary antibodies to working concentrations in Blocking Solution (SSEA-1, SSEA-3, SSEA-4, TRA-1-60, TRA-1-81 & Oct-4 can be used in the range of 1:10 – 1:50). Incubate primary antibodies for 1 hour at room temperature.
9 t6 h: g' I, S7. Wash three times (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer. 4 g4 W) [) Y. I: o9 J* i
8. Dilute secondary antibodies in 1 X PBS just before use. Incubate secondary antibodies for 30-60 minutes at room temperature.
& B: q# b5 q! }! l9. Wash three times (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer.
  A: H7 M) H- w, Z* k( V10. If stained in plate wells, cells should be covered with 1 X PBS for visualization. However, if cells are stained on a coverslip, mount on a slide by using antifade mounting solution.   }+ f, y$ }2 |! y7 s: n
11. Fluorescence images can be visualized with a fluorescence microscope.
  d! R) D! C& [( c
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