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求教关于人胚胎干细胞免疫荧光的问题 [复制链接]

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楼主
发表于 2012-7-8 15:11 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 fish_zbw1985 于 2012-7-8 15:11 编辑
( e7 t' x' V' u: F5 c/ h) J' @
6 D; D5 ~1 a  N# Q" i7 t" P/ x% d最近按照标准流程做人ES细胞核蛋白免疫荧光染色,发现经常出现克隆内所有细胞核全部着色的现象.不知道是不是做的方法有问题的缘故,个人觉得应该有很多是非特异结合的染色.请问有什么办法可以做出特异性较好的免疫荧光.附我的实验方案:; e2 B  `* u/ f5 T& ~  S
1: 细胞用PBS洗一次后用4%多聚甲醛室温固定20min
. w  D! b2 u) C4 Q2: PBS洗三次后用含0.2%Triton X100的PBS室温穿膜15min
  d( a5 k8 @1 e# `% O9 r& {3: PBS洗三次后用10%二抗血清的PBST(含Triton X100)室温封闭30min
% ?# [* X! s8 h3 ]( a4: 用10%血清的PBS稀释一抗4度过夜
, c5 r6 ^" }- z; _% Z* R5: PBS洗三次后用PBS稀释的二抗室温孵育1h  a. S! K. Y* E" T0 H! U( m5 C
6 : PBS洗三次后加PBS稀释的DAPI室温孵育3min
3 `& |5 g- ?$ G  G; M5 s+ s* }7: PBS洗一次后在荧光显微镜下观察
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沙发
发表于 2012-7-12 14:58 |只看该作者
我觉得你的免疫荧光染色protocol没有问题。
6 v* [5 p7 {" _! _可以从以下几个方面考虑非特异性的问题) O- O$ O0 P- g; X  w* D, F
1、一抗的质量问题。如果然其他的cell line 同样有非特异性的问题,可考虑此方面0 y: |: @. Q7 S" C( L1 V3 _. P
2、一抗浓度过高,不同的样本最适合的一抗的浓度并不完全一致,若染其他样本特异性较好的话,可以将一抗浓度减低一些试试。
2 w, d  ^, o; G3、一抗染色后的洗涤效果不佳,非特异性结合较多。
5 f% o) t4 ~8 O# w6 G5 o4、二抗浓度过高。
5 A: O# @; F2 }; J5、二抗与样本有交叉免疫反应,可考虑换一个厂家的二抗。
# `& Q) X4 {0 c& V以上几点是我们分析免疫荧光染色非特异性问题时考虑的几点,仅供参考。
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藤椅
发表于 2012-7-17 15:23 |只看该作者
回复 zhlqlkpc 的帖子# e6 q3 k9 n! b% W
& m" d% M; p+ ?
感谢帮助!

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板凳
发表于 2012-8-19 09:32 |只看该作者
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我做的是小鼠胚胎干细胞的免疫荧光,想看加药后是否还能表达OCT-4,SSEA即是否还有自我更新能力,但是效果一直不好,主要问题细胞经过多次冲洗到最后观察时已经掉下来了,由于我的药物是DMSO配置的不能紫外消毒,所以有时经过四天孵育后,细胞就染菌了。。。。有没有人能指点一下啊    感激不尽啊
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报纸
发表于 2012-8-19 09:33 |只看该作者
我做的是小鼠胚胎干细胞的免疫荧光,想看加药后是否还能表达OCT-4,SSEA即是否还有自我更新能力,但是效果一直不好,主要问题细胞经过多次冲洗到最后观察时已经掉下来了,由于我的药物是DMSO配置的不能紫外消毒,所以有时经过四天孵育后,细胞就染菌了。。。。有没有人能指点一下啊    感激不尽啊

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地板
发表于 2012-8-19 20:51 |只看该作者
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7 f2 l% @/ T6 }* W, J9 ?
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发表于 2012-8-27 14:50 |只看该作者
: s+ E; ~  ]3 s- |3 V( z: B) E
The cell-surface-antigen expression of cultured cells can be analyzed by using immunofluorescence techniques. The following primary monoclonal antibodies are used to detect surface-antigen expression: anti-SSEA-1;anti-SSEA-3; anti-SSEA-4; anti-TRA-1-60; anti-TRA-1-81; and anti-Oct-4. 7 \, u7 N; B3 ]- u! q

) ?7 W  x9 p, fFluorescein isothiocyanate (FITC)-labeled secondary antibodies, appropriate to the species and isotype of the primary antibody, can be used for detection of primary antibody binding. ! q$ [( ?/ v, u+ M# X& q  [1 c
: g3 @( |% ]3 Q; U# ~# {) f7 W
1. Fix cultured ES cells in Fixative Solution for 15-20 minutes at room temperature. , e8 d8 j: p) m" P9 ^: Z" ~
2. Wash twice (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer. * w: L/ a9 R) w: F
3. Permeabilize cells with 0.1% Triton X-100 / PBS for 10 minutes at room temperature.
8 Z3 B9 S, z9 j, n4. Wash twice (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer. 2 P% Q+ y+ a6 c
5. Apply Blocking Solution for 30 minutes at room temperature.
7 v. ^# D& E, {) D6. Dilute primary antibodies to working concentrations in Blocking Solution (SSEA-1, SSEA-3, SSEA-4, TRA-1-60, TRA-1-81 & Oct-4 can be used in the range of 1:10 – 1:50). Incubate primary antibodies for 1 hour at room temperature. ; G3 \5 K5 x. T; C
7. Wash three times (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer.
5 N# ?4 y' q, H, Y9 l2 @- d8. Dilute secondary antibodies in 1 X PBS just before use. Incubate secondary antibodies for 30-60 minutes at room temperature.
4 c$ a( Z, a/ Y( w- D3 Y& f/ _9. Wash three times (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer.
* P! I4 S: ~, [) |10. If stained in plate wells, cells should be covered with 1 X PBS for visualization. However, if cells are stained on a coverslip, mount on a slide by using antifade mounting solution.
& N, Y, Z+ `( P11. Fluorescence images can be visualized with a fluorescence microscope. ) P  ~; }% `9 \$ `. y' N
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