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可参考BIOG实验步骤
$ ]0 e& x4 s$ z) u0 m% l$ B(请自备50mL离心管、20mL离心管、异丙醇、70%乙醇)
- Y! Q4 _1 c0 O1 Z' m取50mL菌液,置于50mL离心管中,4000rpm 4℃离心5 min,彻底弃除上清。
; [' Y2 r" |8 S$ K4 k. L4 L加入3mL溶液A,充分振荡2min,使菌体充分悬浮,确保无絮块存在。4000rpm 4℃离心5min,彻底弃除上清。* v. d6 H% s' @
加入2mL溶液I和40uL溶液B,充分振荡2min,使菌体充分悬浮,确保无絮块存在。
2 _8 b# t: x' U加入4mL溶液II,盖紧管盖,轻轻颠倒混匀6次,注意整个管子的内表面均需与溶液II接触,室温放置至溶液清亮。(一般为4-5min,如5min后溶液未变清亮,说明细菌过多,应考虑减少菌液量。注意混匀手法要温和,不要剧烈混合)
% C; y2 k' f* V& I d* Z. ` c加入3mL溶液III,盖紧管盖,立即轻轻颠倒混匀8次,4℃放置5min。(此步注意要尽快混匀,但手法要温和)' w' G5 A/ ^& y; v4 R
10000rpm 4℃离心15min,小心吸出上清,轻移至新的20mL离心管。(应在离心机自动停转后取出离心管,以免沉淀悬浮)8 X/ C: x& A! u5 g# C9 b
加入6mL异丙醇,充分混匀,室温放置10分钟。10000rpm室温离心15min,小心吸弃上清,用吸水纸尽量吸去残余的液体。% T$ B! V+ @7 O8 w/ k
(应在离心机自动停转后取出离心管,以免沉淀悬浮)% N' z# `" c3 P$ E1 V5 y, B" K
加入3mL 70%乙醇,温和震荡30Sec,10000rpm离心10min,轻轻弃去上清,用吸水纸尽量吸去残余的液体,室温晾干沉淀。
; [0 a% z- p9 L. d; v# B0 h加入0.3mL溶液IV,温和震荡2min,使沉淀完全溶解并转移至新的1.5mL离心管中。+ s( a+ H3 @) ]
加入10%体积溶液V,充分混匀,冰浴5min。1 Y. }/ N: y- ]: v" c% R3 c
加入3%体积溶液VI,反复吹打混匀,旋涡震荡15min。: V1 U) o6 g" \( i" X
50℃水浴5min,室温12000rpm离心3min,溶液分相后,吸取上层水相至新的离心管中。. ~+ \+ B( y9 y# d2 c
重复步骤10~12两次。
$ P1 V/ f) x- }6 v加入700uL无水乙醇,充分混匀,室温放置5分钟。12000rpm离心10min,小心吸弃上清,用吸水纸尽量吸去残余的液体。
& K6 I/ [/ y' @5 C加入700uL70%乙醇,温和震荡30Sec,12000rpm离心5min,轻轻弃去上清,将离心管倒置于吸水纸上,吸去残余液体,室温晾干沉淀。
( \8 e7 x3 |( l) D加入50μL溶液IV,温和震荡2分钟,使沉淀完全溶解。 |
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