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楼主: chslyx
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脐带间充质干细胞爬不出来,求教!   [复制链接]

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发表于 2014-12-9 12:15 |只看该作者
回复 chslyx 的帖子2 _$ t  S- r! }4 ]

" P" t* ]: x* k2 A3 j) E4 N你这皿里组织块也太多了吧。不用加抗生素。就酒精消毒一下没事的。我们还做过50几个小时的脐带。一点问题没有。你在好好的找一下原因。培养基别加太多。
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发表于 2014-12-9 15:52 |只看该作者
几点建议:6 l1 i! N: d( I" c  A; I( S
1.脐带2-4小时之内冰盒内直接PBS+p/s就可以,不需要培养基,太浪费了;! J% Y9 [0 p, c/ z+ P6 R
2.DF-12/DMEM+10%FBS个人经验都可以;
) ?; l# ?+ V" ]1 ?4 v* v1 \7 I3.组织块铺的太慢了,建议加大间距;
. @, |$ Z" {% E* `$ E3 D4.从第一张图来看好像块没有贴住,这样很难爬细胞出来的;
0 u" a  d1 t# K7 Z' D. b5.建议换培养瓶,不容易污染,可以长期操作,足够把块慢慢铺开。% S) b2 Z1 e  t$ }' a
差不多就这些,祝楼主实验顺利!
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发表于 2014-12-19 09:39 |只看该作者
酒精泡还是需要的,为了减少污染的几率,组织块的确是太多了,看你的照片养个5皿都不过分,一开始培养基少加点,基本盖没组织块就行,前面几天不要去晃动,到5天左右换下液,七八天就有细胞了
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发表于 2014-12-19 09:53 |只看该作者
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第一、酒精时间太长。第二、运输没必要用培养基,最好低温运输4小时内,越快越好。第三、加bFGF效果会很明显,第四、血清和因子浓度可以适当下调。
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发表于 2014-12-19 10:20 |只看该作者
个人认为存在以下两个问题:
2 \2 ^; Z) ?+ x( ]" W2 Y8 e. ?1 酒精浸泡时间过久。这一步可有可无,如果不放心的话,15s即可;
' }5 q: j4 a' _8 a- q2 铺平密度太大,以至于细胞没有生长空间。至少可以分成4皿。
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发表于 2014-12-20 17:51 |只看该作者
1.基础培养基我感觉a-MEM比较好一些;
+ N5 i/ e$ Y1 X" ~1 E4 T( U! ~2.不用加双抗;+ b/ ~& R' Q' U! \7 c$ [- |) ~
3.我们用的是血清替代物SR
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发表于 2014-12-22 15:11 |只看该作者
回复 chslyx 的帖子% K/ n; a( b4 c1 K* D  t
, k9 {5 D8 H6 Y0 B( ?0 g- r
兄弟,你这铺的组织是不是有点过密啊,你想屋小了人肯定站不开走动不方便,就像你这种情况,这么密你让细胞往哪爬啊
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发表于 2015-8-26 08:03 |只看该作者
由于组织块密度太大,培养基的粘度也会很高,不利于细胞的爬出和生长。我们实验也出现过,后来把密度降低,细胞就能爬出来了。
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发表于 2015-8-26 08:19 |只看该作者
1、组织块太多了,这个量我们差不多要三皿,2、首次贴壁培养的组织块不需要这么多培养基,10cm dish你试试7-8毫升,3、不需要加双抗大庆等,也不需要酒精洗,用PBS洗两边就可以,4、建议更换培养基
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发表于 2015-8-26 09:04 |只看该作者
回复 chslyx 的帖子
4 |- V; a( g; a% N; c5 O8 f8 e: W9 C( F
1、运输过程应该没问题,以前我们直接放在无菌瓶子里,然后冰盒里拿回来,也可以的。8 Y) s/ o# ?: {- }8 }$ h6 T* k
2、洗的时候可以不用酒精,就剪成一段一段用含双抗的PBS洗就行,多洗几次。5 {0 _4 V* p& _0 B* M6 f- v
3、组织贴块,贴的太密了而且也不均匀啊,最好能让组织块单层分散开,我觉得你这一个皿的量都能铺三个了。以前我们用消化培养的方式,效果不错。5 ~7 G* K9 l" N% M# b
4、适当增加血清含量,15~20%
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