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诱导分化% Q* s, K, E& R. c
细胞以每毫升 5 ×104 ,接种于培养皿中 ,细胞达到 80 %汇合后更换成脂诱导培养液(L-DMEM 培养液 ,10 % FBS , 地塞米松 10-6mol/L , 胰岛素10 mg/L , 3-异丁基-1-甲基黄嘌呤(3-isobutyl-1-methylxanthine,IBMX 0.5 mmol/L ,吲哚美辛 0.2mmol/L),对照组继续加常规培养液 ,每 3 天换液一次。在诱导 6 、9 、12 、15 、18 d 时各取各组细胞进行油红 O 染色 ,光镜下观察并摄影。6 n4 F. n) Q$ |- r( I0 o2 h f- j
/ {0 d& ~ b5 z6 ^7 y8 ~油红O配方+ @. J+ M$ s* A
油红O1g,异丙醇100ml或70%酒精100 ml,将油红O放入烧瓶于水浴中加温溶解或放入温箱中60℃30min,用前过滤,临用时取油红O10ml,蒸馏水10ml,两者混合后立即变成鲜红色液体,静止30mi n后过滤使用.
! { u* k4 ~5 L, _6 V6 U! _4 t, O8 b油红O染色
$ Q2 ^" ]4 U$ E% @①固定于10%中性甲醛溶液内1~2d.
& K/ [7 r/ w k( ~②蒸馏水洗冰冻切片1 0~20μm入蒸馏水.
6 N" J4 V8 ], h③用70~80%异丙醇或酒精稍洗或用蒸馏水稍洗.2 s- d: ? i) s3 |0 R
④入油红O 染色15~25min.
7 @8 {: m+ @% p⑤入异丙醇或酒精或蒸馏水洗.
) ?* y7 i! P% B' |: o1 P7 ]⑥用苏木素淡染细胞核,充分水洗,用甘油明胶或用PVP封固. |
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