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楼主: stella2015
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求助各位亲,PBMC分离出来红细胞过多,如何再尽量PBMC损失最少的情况下减少红细胞呢?   [复制链接]

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10楼
发表于 2016-9-6 15:09 |只看该作者
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本帖最后由 xiepu1 于 2016-9-6 15:20 编辑
+ N" r* X' i. c& m; Q
0 k3 ^1 ]( Z2 S2 _! b  C1 {首先血液质量要好,样品到后要立马开始处理,
$ ]0 N7 y" C$ N其次血样尽量做到1:1稀释或大于,
) z0 `5 M, o- |: @! _" l& r# u最后血样铺成要先慢后快,铺样过程要均匀
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9楼
发表于 2016-9-5 15:27 |只看该作者
几个注意点:一、ficoll管使用前离心;
3 J1 f2 f$ N3 ^  y$ n* r; M            二、血液到了后需混匀,再轻轻地转移到ficoll上,一定要轻!每管的血液添加量不要过多,一般不要超过ficoll量,或者更少;
$ f) @& y8 v0 N            三、如遇到已有溶血现象,可用生理盐水或PBS二倍稀释后再转至ficoll上;. C/ u: M: c2 L3 i0 w/ O* S
            四、提取PBMC时一定要稳、准、狠,争取一次性连续的取完,血浆可以多保留些,血浆中也有部分PBMC。
# ?! ~, {1 j1 R/ [% T            五、因为不知道您具体要洗几次,所以建议可以适当增加合适的离心梯度。
) _3 C5 C: Z% V1 f; Q: q7 _. w/ R            另外,目前有成品分离管,分离效果还不错,PBMC收集率挺高的,但是也要注意加血时要轻。希望能帮到您!
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8楼
发表于 2016-9-5 09:44 |只看该作者
小心操作还是很好分离的,有少量的红细胞应该是没有关系的。
  j# L- f# |2 ?! @: J4 \/ U- u# T要分离的血液要新鲜,放置几分钟到室温。分离液也要提前从冰箱拿出来,放置到室温。还要注意分离液和血液的比例。加入血液时注意分层界面要清晰。离心注意缓升缓降就好。
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7楼
发表于 2016-8-31 09:48 |只看该作者
①样品质量。血液样品要新鲜,有一点点凝血分离出的效果就不太好。②分离液的质量。我们公司淋巴细胞分离液都是自己配的,分离效果不太好。一般都是分离2次,第一次用50ml离心管(装20ml分离液)。第二次用15ml离心管(装5ml分离液)。③离心条件。条件不合适,白细胞损失就比较多。其实红细胞多也没事,我养悬浮细胞,红细胞多,连红细胞裂解液都不用,哈哈,直接传代到100ml体积时,半量换液,之后越来越好养了。有需要交流,可进一步讨论。
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地板
发表于 2016-8-30 16:36 |只看该作者
首先一点你实验室要有一套成熟的实验方案,
- U" j  z' P1 Y* z再有就是把每一步的试剂特性把握好,
/ a, f1 S7 b7 C再有就是个人的操作水平了,1 v  _* f  c( K6 M6 m/ G1 f
在一个试验中这三点你要都做好了,
* }/ ?+ L5 j$ T) u! n实验结果自然就比较理想了。
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金话筒 优秀会员

报纸
发表于 2016-8-30 16:11 |只看该作者
1.采血以后,一定要用生理盐水充分稀释。5 O& {: l5 ~9 w# m
2.注意ficoll的离心转速,降速一定要慢。
: V# X( ?7 S0 D; F3 p7 e' n3.吸白膜层的时候一定小心不要插入过深。
* v: y% _' _; x4.以上都不行可以试试磁珠分选。$ l0 k0 Z3 O# B7 w( s
5.其实有点红细胞问题不大,有文章还报道过,红细胞还能促进免疫细胞成熟和增殖。
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板凳
发表于 2016-8-30 15:59 |只看该作者
PBMC分离的时候FICOLL和离心条件很重要。首先FICOLL品牌很重要,其次使用之前最好室温预热;离心的时候升降速一定要调节好
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藤椅
发表于 2016-8-30 13:50 |只看该作者
ge的ficoll效果确实很好
: M; J( _- f- v& Kficoll分离的时候一定要注意离心条件,离心条件的差别会影响分离效果
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沙发
发表于 2016-8-30 13:28 |只看该作者
回复 stella2015 的帖子' @  C- t: L% K1 _

: k5 M# c5 A* U3 D4 h) I2 @* aGE life science的ficoll分离效果不错,但是就是贵。
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