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请教一下给为前辈一些关于羊膜干细胞培养的问题,望指教 [复制链接]

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楼主
发表于 2017-7-10 14:36 |显示全部帖子
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回复 2357710447 的帖子; _7 [# |+ N! o9 h. x: B

( a8 ?; S: s7 s9 U* U" P9 x1 y我做过羊膜间充质干细胞的培养,消化法比较容易操作

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沙发
发表于 2017-7-11 10:04 |显示全部帖子
回复 2357710447 的帖子" Y6 c6 M# [  p$ z* q

% X$ K( a- o2 S5 e把羊膜剪成0.2~0.5平方mm的小块置玻璃皿,加10ml0.05%胰酶,搅拌均匀后置37℃消化15分钟后取出搅拌均匀,再消化15分钟。
, G# S7 l, f- r5 p) C200目筛网过滤,并用PBS充分冲洗羊膜组织块。
+ [: S' \( R4 P2 `/ \收集悬液,离心所得的细胞即为包含羊膜间充质干细胞的细胞群体,可直接冻存,也可直接用于培养

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藤椅
发表于 2017-7-11 10:05 |显示全部帖子
回复 fenglinzhu 的帖子
8 g+ C8 d# i. s* x( {$ o5 t8 U0 N" O' `0 d
哦,对了,200目筛网过滤之前先用血清终止消化

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板凳
发表于 2017-7-11 11:43 |显示全部帖子
回复 2357710447 的帖子& g  T+ E; E5 p' U' H! h
" s- I5 U. L+ M
会有一定的杂细胞,不管你用什么方法培养都会有一定的杂细胞啊,但杂细胞和间充干贴壁程度不同,贴壁时间不同,在培养基中生长情况不同,培养几代后就比较纯了。每次传代消化的时候那种难消化下来的细胞就放弃,这样可以提高纯度。胰酶能够淹没组织块即可,没有特定要求多少比例消化。100目也可以用啊,就是过滤起来比较慢。终止消化可以用含血清的完全培养基啊,稍微多加点就好了。用50ml离心管不是不可以,只是用50ml离心管可能比较浪费胰酶,不容易完全浸泡到嘛。

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报纸
发表于 2017-7-11 11:53 |显示全部帖子
回复 2357710447 的帖子8 ^; J6 H5 [( i1 X. b9 v+ ~
5 b, x: N: C- s; i8 y: N# v
我积分不够,加不了好友,你留个QQ号吧,我加你下
* U1 y/ @, `, s! l
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