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神经干细胞与神经营养因子 [复制链接]

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发表于 2009-3-3 12:34 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
作者:吴家华  罗焕敏作者单位:(嘉应学院医学院药理教研室,广东  梅州  514031) : y7 X' e. I/ x# @# F" {
                  
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9 m2 S. K, o# a) I4 s3 s          【关键词】神经干细胞;神经营养因子;中枢神经系统退行性病变# X/ r4 p' ^5 u4 f1 m) ]
                    神经干细胞(NSC)增殖是神经发育早期阶段的主要事件,在此阶段,NSC通过10-12次分裂进行增殖,为后期神经发生提供足够的细胞来源。此外,当脑组织受损时,内源性NSC也可增殖并分化,补偿缺失的神经细胞,部分修复神经功能。神经营养因子(NTF)是一类对神经元有特异性保护作用的内分泌多肽,它可促进体内、外培养神经元存活及突起生长〔1〕。1952年LeviMontalcini在研究鸡胚的神经发育过程中发现了神经生长因子(NGF),此后几十年,新的NTF不断被发现,并形成了NTF大家族。它们来源于靶细胞逆向营养神经元,促进和维持神经细胞生长、存活,修复神经细胞功能。在胚胎发育早期,NTF如碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)、表皮生长因子(EGF)等能显著促进NSC的增殖与分化。4 F" {& z5 G5 t6 ?+ q  F
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  1bFGF
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, ~7 X7 H4 o0 S4 P, m) i: o  bFGF最初是由Gospodarowiz于1974年从牛脑和牛的脑垂体中提取出的,在体内分布广泛,尤其是在神经组织中含量丰富。bFGF在中枢神经系统(CNS)的表达受发育的调节,从胚胎期、出生后到成年哺乳动物,脑内bFGF的含量是不断变化的。Kalcheim等〔2〕用放射免疫测定法研究发现,bFGF在胚胎3 d(ED3)就有微量(1.4 ng/mg)表达,随胚胎发育时间延长,bFGF浓度不断升高,ED10蛋白含量最高(18 ng/mg),此后,蛋白含量开始下降,由ED14降到ED3水平。
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  bFGF是促进细胞生长作用很强的多肽因子,又是重要的有丝分裂原,参与细胞的生长发育和组织损伤的修复,对神经元具有明显的营养作用〔3〕。大量体外培养研究证实bFGF 是啮齿类动物神经前体细胞的有丝分裂原,能够刺激胚胎鼠纹状体、海马以及成鼠脑室下区和海马等处的NSC分裂、增殖〔4-6〕。bFGF 在0.5-20 ng/ml浓度就可发挥有效的神经营养和神经保护效应〔7〕。它与bFGF受体(bFGFR)结合后激活受体的酪氨酸激酶,导致受体本身细胞内酪氨酸残基的磷酸化,从而提供给细胞核一个进行有丝分裂的信号,继而引起细胞的分裂增殖。近来的一些研究提示bFGF通过缩短G1期时程而增加分裂增殖的干细胞数目〔8〕。体外培养还发现,bFGF 不仅可起到有丝分裂原的作用,也能促进细胞分化并决定分化的方向。Qian等〔9〕报道胚胎大脑皮质NSC的增殖或分化呈bFGF 浓度依赖性,bFGF浓度为0.1 ng/ml时皮质神经前体细胞增殖并形成克隆。而bFGF 浓度为1.0-10 ng/ml时,皮层神经前体细胞则分化成神经元和少突胶质细胞,若再加入其他因子,可分化成星形胶质细胞。bFGF与不同的受体亲和力不同,引起的信导传导通路不同,bFGF 浓度决定它与不同受体的亲和力,0.1 ng/ml bFGF可激活FGFR1和FGFR2,但对FGFR3无任何作用;1.0-10 ng/ml bFGF可激活FGFR3,提示低浓度bFGF 启动分裂信号,而高浓度不仅启动分裂而且还能启动分化信号。2 c* S  B4 Y9 a: ^* X

# x) j; I! o6 t& t: T  2EGF
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% m9 z5 V0 H  H, z+ ^4 ^2 C' E3 w  EGF是Cohen (1962) 从雄鼠颌下腺分离提纯出来的一个具有53 个氨基酸的多肽,广泛存在于人体各种组织及体液中。在胚胎发育过程中,EGF 在脑、视网膜、下丘脑、耳蜗、脊髓前角细胞、背根节细胞、Clarke 背核细胞以及中间外侧束细胞均有表达。大量体外实验证实EGF可调节NSC/神经前体细胞分裂、增殖和分化,维持这些细胞的生存并促进其迁移,加入EGF可使BrdU标记的神经前体细胞明显增加〔6,10,11〕。Kuhn等〔12〕研究发现EGF可促进成年大鼠脑室区NSC增殖,增加由室下区迁移至纹状体和纹状体自身前体细胞的数量,但降低了迁移至嗅球新生神经元的数量,增加了星形胶质细胞的数量。
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% c4 f  i- t- K  EGF不能促进早期侧脑室室下区NSC分裂增殖,但可促进晚期NSC增殖〔8〕。Boillée等通过核糖核酸酶保护测定发现,从胚胎期第12 天到成熟期这段时间,EGF受体(EGFR)的mRNA可在颈部脊髓腹侧部位表达,在ED15中脑生发层和小脑外颗粒层内可检测到EGFR 的mRNA,EGFR在脊髓的分布为EGF 发挥作用提供了必要的结合位点,提示EGF 在发育较晚期起作用〔13〕。
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  3NGF. x; g2 S, c& X+ |! c
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$ h3 u8 G6 U+ f$ o9 {# a/ l  NGF是发现最早的NTF,广泛分布与周围组织、外周神经系统和CNS如海马、大脑、小脑、下丘脑和中脑运动神经元,通过胆碱能神经逆行运输至前脑基底核,维持胆碱能神经元的存活和功能。在胚胎发育早期,NGF能显著促进神经前体细胞的增殖并能促进其分化〔14〕。TrkA受体是NGF的高亲和力受体,NGF选择性地与TrkA受体结合,参与转录过程,从而促进细胞有丝分裂作用,p75被认为是低亲和力的NGF受体,它与TrkA结合形成膜复合物,加强NGF的作用〔15〕。# ^- b. u  {& V- @

) A" W, v1 ?( L( s# V  4脑源性神经营养因子(BDNF)/ p! z, j9 Q& h. R) p4 ~2 }* d
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- o8 [8 G' I3 x+ {% U8 C2 U  BDNF与NGF、神经营养因子3(Neurotrophin 3,NT3)共同组成NGF家族,也是研究最为深入的一族。BDNF在成年鼠脑的海马、下丘脑含量最丰富,在中脑、大脑皮质、杏仁核等部位含量也较多。BDNF在脑的发育初期表达水平较低,后期增加,成为脑内分布最广的NTF。细胞培养发现,BDNF可增加纹状体GABA神经元存活,神经元胞体变大,树突增多〔16〕。目前研究认为,BDNF在诱导NSC向神经元表型分化方面起着重要的作用。外源性BDNF可促进体外培养神经细胞存活及海马NSC的分化,而在体实验发现,ED16小鼠侧脑室注射BDNF可增加侧脑室有丝分裂活性及皮质板神经元数目〔5〕。其促分化作用可能是通过上调NSC后代中转录因子Brn24的表达,增加EGF敏感性NSC分化为神经元〔17〕。
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' q/ ]. c# m; }/ q" V  5睫状神经营养因子(ciliary neurotrophic factor,CNTF)* x6 a" H% e0 E8 `

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( @5 f4 k& R+ B" L& Z' o0 @/ P
  CNTF最初是从鸡胚中分离出来的具有神经保护作用的细胞因子,它是一种分子量为20 kD的酸性蛋白。CNTF广泛分布于神经系统中,促进前体神经元生长、分化、成熟,维持各种神经元的存活,对运动神经元有特别的保护作用。尽管CNTF在胚胎发育期的表达量很低,但CNTF受体与CNS增殖区域密切相关。成体侧脑室内注射CNTF可促进NSC增殖并分化为星形胶质细胞〔18〕。CNTF通过激活人类CNTF 受体α链(CNTF receptor alpha chain,CNTFRα)、白血病抑制因子受体β链(leukemia inhibitory factor receptor beta chain,LIFRβ) 和白介素6受体α链(interleukin6 receptor alpha chain,IL6Rα)复合物(CNTFR/ LIFR/IL6R)(在大鼠及鸡脑中则是激活CNTFR/LIFR /gp130复合物)间接发挥神经保护作用,促进并维持NSC增殖与存活〔18,19〕。也有学者认为CNTF促进NSC自我更新并使细胞维持在有丝分裂周期而非维持NSC存活,抑制它们分化为胶质细胞前体细胞〔8〕。
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# N& j' b$ A# S# F  6胰岛素样生长因子(insulinlike growth factor,IGF)+ M; q( s/ m; p3 V

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* P, h$ J/ M+ \' G5 n1 H  IGF系统蛋白包括IGFⅠ,Ⅱ。IGFⅠ受体(IIGFⅠR)和IGF结合蛋白(IGFbinding proteins,IGFBPs)在CNS中广泛表达,研究提示IGFⅠ在CNS中起重要作用,它通过旁分泌或自分泌形式促进NSC增殖、存活及分化〔20〕。IGFⅠ可显著促进齿状回颗粒下层神经元性前体细胞的增殖,对胶质细胞数目则缺乏此作用〔21〕。缺乏IGFⅠ培养的干细胞分化细胞中无神经元表达,反之IGFⅠ可以增加神经元数量8-40倍〔22〕。+ g2 ]: T0 L+ Z9 \

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  体内实验证实IGFⅠ可作用于胚胎期及生后发育早期NSC及前体细胞,促进海马前体细胞增殖,维持人类胎儿前脑神经球的存活〔20,23,24〕。IGFⅠ缺乏则EGF或FGFⅡ反应性纹状体干细胞增殖消失〔25〕。IGFⅠ通过促进G1期或G0/G1期转变,缩短细胞周期持续时间,并增加子代细胞重返细胞周期百分率,从而诱导NSC/前体细胞增殖〔26,27〕。; q: s! g$ D" f/ m4 }
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  7胶质细胞源性神经营养因子(glial cell linederived neurotrophic factor,GDNF)
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7 n7 u( L( P7 |, M! s( ~+ C( y, K
9 M. y. ~4 W5 m9 u/ t! |3 }# D9 A* b  GDNF是1993由美国Synergen生物技术公司的Lin等发现并克隆的一种新的NTF,它广泛分布于CNS的多巴胺能区域,在腹侧苍白球、嗅结节以及梨状区等接受多巴胺能神经元支配的区域均有表达,在非多巴胺能神经元支配的区域如胚胎小脑原基、丘脑、海马、基底前脑、脊髓背柱等的原代培养物中都可检测到GDNF mRNA的表达。出生后的正常发育过程中,纹状体内中等大小神经元则是GDNF的主要来源〔28〕。
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  GDNF是支持多巴胺能神经元最重要的营养因子。Roussa等取小鼠中脑神经球与GDNF共同培养发现,βⅢ微管蛋白免疫阳性细胞显著增加,而未见GFAP阳性细胞表达,而且早期多巴胺的标记蛋白Nurr1 和Ptx3表达增加,提示GDNF可促进小鼠中脑NSC分化为神经元和多巴胺能神经元发育〔29〕。
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  GDNF二聚体与GDNF家族受体(GDNF family receptor,GFR)α结合形成复合物,后者诱导Ret二聚化,Ret胞内酪氨酸残基磷酸化,从而诱发一系列信号级联放大反应,影响神经发育过程中的各个方面,包括细胞增殖、迁移、轴突生长和细胞存活等〔30〕。小鼠体内GDNF家族配体(GDNF family ligands,GFLs),GFRαs 或 Ret缺乏则外周及CNS细胞均大量缺失〔31〕。+ Q: K3 ?8 \/ q% S& J
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  目前已知的调控NSC增殖的主要因素是NTF,bFGF、EGF等NTF能显著促进NSC的增殖与分化。但是,这些NTF的哪个才是特异性“促NSC分裂因子”呢?又是如何促进NSC增殖与分化的呢?这些还有待于进一步研究与证实。而且,在体内还存在着多种不同的细胞因子,这些细胞因子共同作用于NSC,影响其增殖与分化,它们又是如何相互作用共同影响NSC增殖与分化的呢?随着对NTF作用的进一步认识,以及对NSC增殖、迁移、分化等方面研究的日益深入,NSC在神经系统疾病治疗方面将有广阔的前景。
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沙发
发表于 2015-7-29 15:35 |只看该作者
经过你的指点 我还是没找到在哪 ~~~  

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藤椅
发表于 2015-8-4 15:49 |只看该作者
谢谢楼主啊!

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板凳
发表于 2015-8-9 20:07 |只看该作者
干细胞之家微信公众号
好啊,谢楼主

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报纸
发表于 2015-9-16 09:10 |只看该作者
谁能送我几分啊  

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地板
发表于 2015-9-20 07:59 |只看该作者
顶的就是你  

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发表于 2015-10-5 16:12 |只看该作者
呵呵 大家好奇嘛 来观看下~~~~  

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发表于 2015-10-6 16:51 |只看该作者
希望大家帮我把这个帖发给你身边的人,谢谢!  

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发表于 2015-11-3 07:40 |只看该作者
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发表于 2015-11-6 17:23 |只看该作者
越办越好~~~~~~~~~`  
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