干细胞之家 - 中国干细胞行业门户第一站

 

 

搜索
中源协和

免疫细胞治疗专区

欢迎关注干细胞微信公众号

  
查看: 822424|回复: 312
go

神经干细胞与神经营养因子 [复制链接]

Rank: 7Rank: 7Rank: 7

积分
8 
威望
8  
包包
898  
楼主
发表于 2009-3-3 12:34 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
干细胞之家微信公众号
作者:吴家华  罗焕敏作者单位:(嘉应学院医学院药理教研室,广东  梅州  514031) ( E1 T& b7 W( C2 Y0 k9 A: u: j
                  $ m5 s4 S3 C+ z+ J
                  % C& ]. x3 u1 G; }+ a
          : t# k4 x7 E& O- j0 @- M
                         . x& V" h7 J. w0 F
            
! R4 Y5 n; B0 k& R2 @$ o; I                    
+ i9 j. b# w. w+ @/ w1 C. B            
7 V- T- h" p, L7 U                      ! f+ S7 p0 d& h2 S
        
0 \5 U0 y/ ?9 G5 G! L" E$ d3 f# x* w, e& v        & {9 T' K# N. l# R' G! J
        ( t% ?0 |8 {; O7 v  T% h
         
& e% A( J  U; a% o  p+ k# T          【关键词】神经干细胞;神经营养因子;中枢神经系统退行性病变/ ~# G8 f. J+ `9 L4 S2 N, B
                    神经干细胞(NSC)增殖是神经发育早期阶段的主要事件,在此阶段,NSC通过10-12次分裂进行增殖,为后期神经发生提供足够的细胞来源。此外,当脑组织受损时,内源性NSC也可增殖并分化,补偿缺失的神经细胞,部分修复神经功能。神经营养因子(NTF)是一类对神经元有特异性保护作用的内分泌多肽,它可促进体内、外培养神经元存活及突起生长〔1〕。1952年LeviMontalcini在研究鸡胚的神经发育过程中发现了神经生长因子(NGF),此后几十年,新的NTF不断被发现,并形成了NTF大家族。它们来源于靶细胞逆向营养神经元,促进和维持神经细胞生长、存活,修复神经细胞功能。在胚胎发育早期,NTF如碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)、表皮生长因子(EGF)等能显著促进NSC的增殖与分化。
3 f" G% O5 l2 B0 u, @8 K; }$ G. B$ h+ ^  a3 h* X
  1bFGF+ I' y0 B( x  A+ v

2 r8 L" f2 ?  x8 C" b/ O0 S' x0 p0 v% g2 s& j* p% Q

5 f/ E* @+ A5 v, F/ S! z& k  bFGF最初是由Gospodarowiz于1974年从牛脑和牛的脑垂体中提取出的,在体内分布广泛,尤其是在神经组织中含量丰富。bFGF在中枢神经系统(CNS)的表达受发育的调节,从胚胎期、出生后到成年哺乳动物,脑内bFGF的含量是不断变化的。Kalcheim等〔2〕用放射免疫测定法研究发现,bFGF在胚胎3 d(ED3)就有微量(1.4 ng/mg)表达,随胚胎发育时间延长,bFGF浓度不断升高,ED10蛋白含量最高(18 ng/mg),此后,蛋白含量开始下降,由ED14降到ED3水平。$ v; f. _7 j$ H7 B# B1 N- `

7 Z! W4 Q- X0 S, e) ^: D! M) E* B( Q, ~1 G

  e8 Q  B) @+ [; r/ u4 D! i. ^& I  bFGF是促进细胞生长作用很强的多肽因子,又是重要的有丝分裂原,参与细胞的生长发育和组织损伤的修复,对神经元具有明显的营养作用〔3〕。大量体外培养研究证实bFGF 是啮齿类动物神经前体细胞的有丝分裂原,能够刺激胚胎鼠纹状体、海马以及成鼠脑室下区和海马等处的NSC分裂、增殖〔4-6〕。bFGF 在0.5-20 ng/ml浓度就可发挥有效的神经营养和神经保护效应〔7〕。它与bFGF受体(bFGFR)结合后激活受体的酪氨酸激酶,导致受体本身细胞内酪氨酸残基的磷酸化,从而提供给细胞核一个进行有丝分裂的信号,继而引起细胞的分裂增殖。近来的一些研究提示bFGF通过缩短G1期时程而增加分裂增殖的干细胞数目〔8〕。体外培养还发现,bFGF 不仅可起到有丝分裂原的作用,也能促进细胞分化并决定分化的方向。Qian等〔9〕报道胚胎大脑皮质NSC的增殖或分化呈bFGF 浓度依赖性,bFGF浓度为0.1 ng/ml时皮质神经前体细胞增殖并形成克隆。而bFGF 浓度为1.0-10 ng/ml时,皮层神经前体细胞则分化成神经元和少突胶质细胞,若再加入其他因子,可分化成星形胶质细胞。bFGF与不同的受体亲和力不同,引起的信导传导通路不同,bFGF 浓度决定它与不同受体的亲和力,0.1 ng/ml bFGF可激活FGFR1和FGFR2,但对FGFR3无任何作用;1.0-10 ng/ml bFGF可激活FGFR3,提示低浓度bFGF 启动分裂信号,而高浓度不仅启动分裂而且还能启动分化信号。; s( @8 p( K. p

2 ^. E8 X0 N7 s7 v* \  2EGF5 S; V1 K: P/ _+ G" Y
3 r6 Q1 v: v6 C& o! ?( N9 t$ `& T

$ e' p1 N, d* I* I7 }" a, a+ b, E$ [% h& y0 Q# q' b+ n- Q; w
  EGF是Cohen (1962) 从雄鼠颌下腺分离提纯出来的一个具有53 个氨基酸的多肽,广泛存在于人体各种组织及体液中。在胚胎发育过程中,EGF 在脑、视网膜、下丘脑、耳蜗、脊髓前角细胞、背根节细胞、Clarke 背核细胞以及中间外侧束细胞均有表达。大量体外实验证实EGF可调节NSC/神经前体细胞分裂、增殖和分化,维持这些细胞的生存并促进其迁移,加入EGF可使BrdU标记的神经前体细胞明显增加〔6,10,11〕。Kuhn等〔12〕研究发现EGF可促进成年大鼠脑室区NSC增殖,增加由室下区迁移至纹状体和纹状体自身前体细胞的数量,但降低了迁移至嗅球新生神经元的数量,增加了星形胶质细胞的数量。3 U) U0 S- G, C! i

; D* `" ^& z$ _3 q% [* G; M! K4 \  v( h- P$ L# @

- h& ]9 s% o8 k$ Q( N% }  s& V! ^  EGF不能促进早期侧脑室室下区NSC分裂增殖,但可促进晚期NSC增殖〔8〕。Boillée等通过核糖核酸酶保护测定发现,从胚胎期第12 天到成熟期这段时间,EGF受体(EGFR)的mRNA可在颈部脊髓腹侧部位表达,在ED15中脑生发层和小脑外颗粒层内可检测到EGFR 的mRNA,EGFR在脊髓的分布为EGF 发挥作用提供了必要的结合位点,提示EGF 在发育较晚期起作用〔13〕。
7 O2 J* Q6 @6 }: b1 I7 `
% q! D% r7 J" W" H3 k2 r4 p  3NGF
/ m1 m4 E- y, M' i0 q. y( j. \# V! M; q1 Y
& o5 m. V* q( Q
3 ?# Q# J7 T  \& K; U4 `/ e- }( H! ]% N7 p6 R4 |7 z. s% w
  NGF是发现最早的NTF,广泛分布与周围组织、外周神经系统和CNS如海马、大脑、小脑、下丘脑和中脑运动神经元,通过胆碱能神经逆行运输至前脑基底核,维持胆碱能神经元的存活和功能。在胚胎发育早期,NGF能显著促进神经前体细胞的增殖并能促进其分化〔14〕。TrkA受体是NGF的高亲和力受体,NGF选择性地与TrkA受体结合,参与转录过程,从而促进细胞有丝分裂作用,p75被认为是低亲和力的NGF受体,它与TrkA结合形成膜复合物,加强NGF的作用〔15〕。. D0 n* I7 _  z% X( s  d4 T
8 v3 I# C/ H: R) m% y  E0 S
  4脑源性神经营养因子(BDNF)
/ ^3 X/ F, K' V; |' I4 q% j( z# e# u* s4 A9 v0 l. D9 J
8 S7 R7 Z) j5 A5 F

2 _+ B* v- N  K- m  BDNF与NGF、神经营养因子3(Neurotrophin 3,NT3)共同组成NGF家族,也是研究最为深入的一族。BDNF在成年鼠脑的海马、下丘脑含量最丰富,在中脑、大脑皮质、杏仁核等部位含量也较多。BDNF在脑的发育初期表达水平较低,后期增加,成为脑内分布最广的NTF。细胞培养发现,BDNF可增加纹状体GABA神经元存活,神经元胞体变大,树突增多〔16〕。目前研究认为,BDNF在诱导NSC向神经元表型分化方面起着重要的作用。外源性BDNF可促进体外培养神经细胞存活及海马NSC的分化,而在体实验发现,ED16小鼠侧脑室注射BDNF可增加侧脑室有丝分裂活性及皮质板神经元数目〔5〕。其促分化作用可能是通过上调NSC后代中转录因子Brn24的表达,增加EGF敏感性NSC分化为神经元〔17〕。
! Q) G2 ?2 T2 O3 Z! [! q9 `) u% R: p9 F8 }+ |
  5睫状神经营养因子(ciliary neurotrophic factor,CNTF)# M7 Y. b, r% [6 b2 o
& I( Y& h* M8 W6 o9 h8 O. O
/ Q( c. z' o: K1 c' ]

9 d: @5 t5 P) ^7 R; `  CNTF最初是从鸡胚中分离出来的具有神经保护作用的细胞因子,它是一种分子量为20 kD的酸性蛋白。CNTF广泛分布于神经系统中,促进前体神经元生长、分化、成熟,维持各种神经元的存活,对运动神经元有特别的保护作用。尽管CNTF在胚胎发育期的表达量很低,但CNTF受体与CNS增殖区域密切相关。成体侧脑室内注射CNTF可促进NSC增殖并分化为星形胶质细胞〔18〕。CNTF通过激活人类CNTF 受体α链(CNTF receptor alpha chain,CNTFRα)、白血病抑制因子受体β链(leukemia inhibitory factor receptor beta chain,LIFRβ) 和白介素6受体α链(interleukin6 receptor alpha chain,IL6Rα)复合物(CNTFR/ LIFR/IL6R)(在大鼠及鸡脑中则是激活CNTFR/LIFR /gp130复合物)间接发挥神经保护作用,促进并维持NSC增殖与存活〔18,19〕。也有学者认为CNTF促进NSC自我更新并使细胞维持在有丝分裂周期而非维持NSC存活,抑制它们分化为胶质细胞前体细胞〔8〕。
& f8 m% n- A4 [( J' e8 ~+ H- R& k7 @. t5 _
  6胰岛素样生长因子(insulinlike growth factor,IGF)  f$ {; ?# `0 i: p: Q' n* }
4 Y  w5 P. e/ m& U* y
* C4 Z1 X" L9 O1 [8 P- o- E
( c1 X' V+ G  ?& j7 S9 b/ L* ]
  IGF系统蛋白包括IGFⅠ,Ⅱ。IGFⅠ受体(IIGFⅠR)和IGF结合蛋白(IGFbinding proteins,IGFBPs)在CNS中广泛表达,研究提示IGFⅠ在CNS中起重要作用,它通过旁分泌或自分泌形式促进NSC增殖、存活及分化〔20〕。IGFⅠ可显著促进齿状回颗粒下层神经元性前体细胞的增殖,对胶质细胞数目则缺乏此作用〔21〕。缺乏IGFⅠ培养的干细胞分化细胞中无神经元表达,反之IGFⅠ可以增加神经元数量8-40倍〔22〕。" O  w! _3 E; ]( _* U0 K  r5 J

6 B+ Q, ~5 \- s- L" A: ^9 {- ]8 Y
% z1 e% e& r' y" t5 m* K( t( m* C  F4 v/ ^2 T
  体内实验证实IGFⅠ可作用于胚胎期及生后发育早期NSC及前体细胞,促进海马前体细胞增殖,维持人类胎儿前脑神经球的存活〔20,23,24〕。IGFⅠ缺乏则EGF或FGFⅡ反应性纹状体干细胞增殖消失〔25〕。IGFⅠ通过促进G1期或G0/G1期转变,缩短细胞周期持续时间,并增加子代细胞重返细胞周期百分率,从而诱导NSC/前体细胞增殖〔26,27〕。; t% u! G3 e5 h% ?  d$ C* z

# T* m2 E0 R' Z+ Q2 \  7胶质细胞源性神经营养因子(glial cell linederived neurotrophic factor,GDNF)
7 @7 m8 L. e$ X4 \; X; R
0 e2 s0 u: q# D# L7 e$ n
+ A& \" n0 e* U5 N) F% H9 W) w6 g( C: E1 {: X: O
  GDNF是1993由美国Synergen生物技术公司的Lin等发现并克隆的一种新的NTF,它广泛分布于CNS的多巴胺能区域,在腹侧苍白球、嗅结节以及梨状区等接受多巴胺能神经元支配的区域均有表达,在非多巴胺能神经元支配的区域如胚胎小脑原基、丘脑、海马、基底前脑、脊髓背柱等的原代培养物中都可检测到GDNF mRNA的表达。出生后的正常发育过程中,纹状体内中等大小神经元则是GDNF的主要来源〔28〕。
# }, B  \" s% a0 g! J: q0 Q+ }+ A) n  `6 h! N4 C

' r! p2 J- K/ Q5 E% }( v; M; M. g- \3 x- R; k7 Y6 L: U  I; v% P
  GDNF是支持多巴胺能神经元最重要的营养因子。Roussa等取小鼠中脑神经球与GDNF共同培养发现,βⅢ微管蛋白免疫阳性细胞显著增加,而未见GFAP阳性细胞表达,而且早期多巴胺的标记蛋白Nurr1 和Ptx3表达增加,提示GDNF可促进小鼠中脑NSC分化为神经元和多巴胺能神经元发育〔29〕。5 {$ w( D  o0 J: X3 Y& N0 A. T# @& I( D
& P" [" F1 A  y. U$ A9 D$ |6 }
7 T& S8 N' x% a. L8 o) ^4 H

# E9 G4 Q% Z& `8 W. a* k  GDNF二聚体与GDNF家族受体(GDNF family receptor,GFR)α结合形成复合物,后者诱导Ret二聚化,Ret胞内酪氨酸残基磷酸化,从而诱发一系列信号级联放大反应,影响神经发育过程中的各个方面,包括细胞增殖、迁移、轴突生长和细胞存活等〔30〕。小鼠体内GDNF家族配体(GDNF family ligands,GFLs),GFRαs 或 Ret缺乏则外周及CNS细胞均大量缺失〔31〕。
' T4 n" Y# p5 b/ S7 e0 G% ?8 e3 j- }5 a: x  o

# o$ O) n! y! f4 W% h) E$ q
" S4 Q/ E, a% U3 T0 h! i/ v  目前已知的调控NSC增殖的主要因素是NTF,bFGF、EGF等NTF能显著促进NSC的增殖与分化。但是,这些NTF的哪个才是特异性“促NSC分裂因子”呢?又是如何促进NSC增殖与分化的呢?这些还有待于进一步研究与证实。而且,在体内还存在着多种不同的细胞因子,这些细胞因子共同作用于NSC,影响其增殖与分化,它们又是如何相互作用共同影响NSC增殖与分化的呢?随着对NTF作用的进一步认识,以及对NSC增殖、迁移、分化等方面研究的日益深入,NSC在神经系统疾病治疗方面将有广阔的前景。
! e! O! I* l1 U5 Y3 d          【参考文献】  R( U3 Q1 `% T/ U! g3 ?
  1  Pollack SJ,Harper SJ.Small molecule trk receptor agonists and other neurotrophic factor mimetics〔J〕.Curr Drug Targets CNS Neurol Disord,2002;1(1):5980.0 D; \+ b  _8 k% M

' S* l% o$ T/ n  T$ Z& z2 z
' p4 G5 d& x$ A# h5 W4 s- k* [4 G6 V. B+ Z+ x" k- f
  2  Kalcheim C,Neufeld G.Expression of basic fibroblast growth factor in the nervous system of early avian embryos〔J〕.Development,1990;109(1):20315.
+ m# U, M' e, A; s* u; h1 @% r0 |& g3 H: s3 n' d3 {( o
  y$ z( a: j2 b' u
% ^% {* C) T, L3 G
  3  Ozawa K,Uruno T,Miyakawa K,et al.Expression of the fibroblast growth factor family and their receptor family genes during mouse brain development〔J〕.Mol Brain Res,1996;41(12):27988.
+ p" W, U( T& ?. T7 }4 t7 {" A7 y! D
  z$ d( O6 K& {+ v8 I' u
; N( I! I; f2 }& i9 N5 j
; j, x& ?0 [: ^6 `/ ^% ^4 g  4  Kilpatrick TJ,Bartlett PF.Cloned multipotential precursors from the mouse cerebrum require FGF2,whereas glial restricted precursors are stimulated with either FGF2 or EGF〔J〕.Neuroscience,1995;15(5):365361.
0 s$ [5 ^$ d+ Q1 r/ x% H1 S0 w* E
1 G* H. v  n; m' f3 y" i
% M9 ]! ]: n& ]* `- }2 a0 ^1 w
$ X. i) z  Z  Q6 d) N4 U  5  Gritti A,Parati EA,Cova L,et al.Multipotential stem cells from the adult mouse brain proliferate and selfrenew in response to basic fibroblast growth factor〔J〕.Neuroscience,1996;16(3):1091100.
2 o* G! A7 O8 \2 j6 b7 _6 ~% V* B% b9 ?; q

  l3 s9 i6 n1 a  `9 e, Y9 Q
- M; F' _4 I. J) ^4 l6 N, B  6  Laskowski A,Schmidt W,Dinkel K,et al.bFGF and EGF modulate traumainduced proliferation and neurogenesis in juvenile organotypic hippocampal slice cultures〔J〕.Brain Res,2005;1037(12):7889.
' k, l" P7 H: H% M, q
7 S2 A' ^6 E. d7 ^9 L( a5 P" `; K! _8 q- H/ l
7 k8 a4 H; m4 ~' U  M* R
  7  Himmelseher S,Pfenniger E,Georgieff M.Effects of basic fibroblast growth factor on hippocampal neurons after axonal injury〔J〕.J Trauma,1997;42(4):65964.
9 [  V% g8 E! ?, M; [
( j' A2 a7 x" O3 C
8 f' q5 ?9 V) A. Z# e
; x# ]- R$ ?9 I' J  8  O′Shea KS.Neural stem cell models of development and disease.In:Bottenstein JE.Neural stem cells:development and transplantation〔M〕. Dutch:Kluwer Academic Publishers,2003:154.2 o: }# _6 x5 x& }: l4 m- D

: R) J( H# `% H' }& @. f$ d7 \! ^! R6 X1 o  @, S. ~0 D

8 X# R6 q8 i- M1 k  9  Qian X,Davis AA,Goderie SK,et al.FGF2 concentration regulates the generation of neurons and glia from multipotent cortical stem cells〔J〕. Neuron,1997;18(1):8193.2 J4 j& V) F5 q* S5 `5 n

! q0 |! x' j  B: ]  v* a* b0 B8 U) P+ |
1 {/ L5 q8 c! F$ [4 u
  10  Reynolds BA,Tetzlaff W,Weiss S.A multipotent EGFresponsive striatal embryonic progenitor cell produces neurons and astrocytes〔J〕. Neuroscience,1992;12(11):456574./ u  b3 ?7 `0 p

: [) {+ o' a2 p/ \( L9 t& [/ w5 [: x2 g
* t/ q7 g- _  Y
  11  Whittemore SR,Morassutti DJ,Walters WM,et al.Mitogen and substrate differentially affect the lineage restriction of adult rat subventricular zone neural precursor cell populations〔J〕.Exp Cell Res,1999;252(1):7595.7 R9 v; }8 e1 `$ Q) r

% @7 X8 k' c7 T0 L: _1 a, g% w4 o3 w( i) B0 j/ K2 S; P! N0 G
. A# R6 x, f* @5 y& V
  12  Kuhn HG,Winkler J,Kempermann G,et al.Epidermal growth factor and fibroblast growth factor2 have different effects on neural progenitors in the adult rat brain〔J〕.Neuroscience,1997;17(15):58209.
% ]/ g# S5 u0 m( |" t, {
& o" v' @% X6 z9 N" Y4 r" h( [! o5 Q
0 D+ Y% D7 ?2 i# y8 U7 C+ v
  13  Boillée S,Cadusseau J,Coulpier M,et al.Transforming growth factor alpha:a promoter of motoneuron survive of potential biological relevance〔J〕.Neuroscience,2001;21(18):707988.
0 h" \# A4 d" ?2 K$ B: ^1 g( m/ \5 A# T! x8 f4 }8 X; D

& J! C0 C, i: E# {. g" _
5 F6 {: F% j! Z  14  Cattaneo E,Mckay R.Proliferation and differentiation of neuronal stem cell regulated by nerve growth factor〔J〕.Nature,1990;347(6295):7625.3 N$ E  R. h2 d; M% n9 L

+ S" j) Y0 b/ J6 I6 ?0 K5 K
" u. o$ o. ]9 F/ h: L+ g' c3 N# U! z2 ^$ ]5 r# P% s: `
  15  Widenfalk J,Lundstrmer K,Jubran M,et al.Neurotrophic factor and receptors in the immature and adult spinal cord after mechanical injury or kainic acid〔J〕. J Neurosci,2001;21(10):345775.
/ a7 g  A; |% ]) j, C0 ~, B7 t( u8 F# {& W5 M

: d# B, u4 [5 s- m' @4 ?" n/ G5 Y* @! ~+ h5 G
  16  Altar CA,Cai N,Bliven T,et al.Anterograde transport of brainderived neurotrophic factor and its role in the brain〔J〕.Nature,1997;389(6653):85660.
5 o) b. n) L4 h! [1 z: u' \! S7 A7 I, u0 ^* K( J+ d
( V3 |2 r$ j) q8 o/ R0 j

# J( W- _, R* t7 r7 B% i  17  曹丽丽,潘克俭,胡火珍.神经干细胞.见:胡火珍.干细胞生物学〔M〕.成都:四川大学出版社,2005:11225.
$ K: \3 v0 D  S9 U) M6 I" |8 q8 g6 m9 @0 f! g& x, `( [
7 m( R2 e' s) A9 |& A

1 |4 q% T) f* [" E# a, u3 {  18  Shimazaki T,Shingo T,Weiss S.The ciliary neurotrophic factor/Leukemia inhibitory factor/gp130 receptor complex operates in the maintenance of mammalian forebrain neural stem cells〔J〕.Neuroscience,2001;21(19):764253.
. |7 l  {3 h# P2 b5 y$ M/ Q& `7 N6 V8 b6 D9 X9 T8 w+ k( q2 W
2 t" h% n- S1 c9 V7 P. X9 U
" g8 g- N  d- [: P6 v" `9 G3 {" }* j
  19  Cognet I,Guilhot F,Chevalier S,et al.Expression of biologically active mouse ciliary neutrophic factor (CNTF) and soluble CNTFR alpha in Escherichia coli and characterization of their functional specificities〔J〕. Eur Cyto Network,2004;15(3):25562.
3 P; H' Q) M' g- R$ S( I( c  q8 }7 ~7 J6 _. A2 U
& ^& [, o& R. j& v: f$ }  \5 K
5 P5 D8 i: [" q- k0 X3 F. M, _) k5 \
  20  Ye P,D′Ercole AJ.Insulinlike growth factor actions during development of neural stem cells and progenitors in the central nervous system〔J〕. Neurosci Res,2006;83(1):16.3 s; U. h& v5 H8 R- ~
/ w; Y4 q  H* g" S

7 C3 c- w7 M+ Z' e. U! H4 p8 v
( u3 {, |& a3 \' ?" `  21  Aberg MA,Aberg ND,Hedbacker H,et al.Peripheral infusion of IGFⅠ selectively induces neurogenesis in the adult rat hippocampus〔J〕. Neuroscience,2000;20(8):2896903.# t2 V+ e. I0 o* {& X9 {

5 l) d+ S" n& v) X
- o! K$ X5 O# x1 g8 {* |; @0 A4 @- Y
, I9 P+ l2 D. L6 k  22  Arsenijevic Y,Weiss S.Insulinlike growth factor1 is a differentiation factor for post mitotic CNS stem cellderived neuronal precursors:distinct actions from those of brainderived neurotrophic factor〔J〕. Neuroscience,1998;18(6):211828." Y9 z8 [3 |. f( f, `. r

7 H8 t: A! Q& \9 J7 _+ e* I
* x2 V3 N: T$ s3 Y8 L% T! g$ M8 m& u) G4 S8 H2 h
  23  Aberg MA,Aberg ND,Palmer TD,et al.IGFⅠ has a direct proliferative effect in adult hippocampal progenitor cells〔J〕.Mol Cell Neurosci,2003;24(1):2340.
$ D5 h+ D! A+ }( y3 Z# x. I. ]. w$ V1 E6 P: Y3 a+ K1 b! V( J$ K
' A: k3 t) ^' w* `3 Y
8 d, u6 r  o! j
  24  ChalmersRedman RM,Priestley T,Kemp JA,et al.In vitro propagation and inducible differentiation of multipotential progenitor cells from human fetal brain〔J〕.Neuroscience,1997;76(4):11218.
/ A0 O, r) @6 \8 k  S2 I( Z5 ~/ L" L; S1 N
/ }4 i* N: _6 L/ o! w8 p
  q( S- {7 R! A/ o- ?
  25  Arsenijevic Y,Weiss S,Schneider B,et al.Insulinlike growth factorⅠ is necessary for neural stem cell proliferation and demonstrates distinct actions of epidermal growth factor and fibroblast growth factor2〔J〕. Neuroscience,2001;21(18):7194202.7 z* z% @- I! H# b" i" ^
: z! _9 l+ k/ ]3 a* e
# H" u0 F# r2 F8 _

$ j2 a( J* d0 S, {$ Y$ N) h. y  26  Hodge RD,D′Ercole AJ,O′Kusky JR.Insulinlike growth factorⅠ accelerates the cell cycle by decreasing G1 phase length and increases cell cycle reentry in the embryonic cerebral cortex〔J〕.Neuroscience,2004;24(45):1020110.2 e/ [" s; q0 }

9 `5 `) O% T$ e: ~, k( l% X. d  u& U8 ]% p: e7 Y. t, }1 D
: l. ]$ X# Y  a$ E6 ^
  27  Stull MA,Richert MM,Loladze AV,et al.Requirement for IGFⅠ in epidermal growth factormediated cell cycle progression of mammary epithelial cells〔J〕.Endocrinology,2002;143(5):18729.
( v4 i* D$ n6 c: K6 r4 Z9 x1 x
! M3 K$ \9 d, ^. M
; l, {$ \$ s6 u0 o, J
7 x* c# W+ X5 V" K! ]  28  Oo TF,Ries V,Cho J,et al.Anatomical basis of glial cell linederived neurotrophic factor expression in the striatum and related basal ganglia during postnatal development of the rat〔J〕. J Compa Neurol,2005;484(1):5767.+ V, T* {) F+ _) w

' i! J( T  t; s. s- `
- ]9 ^; T$ f: ~  ~0 [
4 N& x) E& Z% q/ g+ H  29  Roussa E,Krieglstein K.GDNF promotes neuronal differentiation and dopaminergic development of mouse mesencephalic neurospheres〔J〕. Neurosci Lett,2004;361(13):525.
! Y# H' A  q8 A' U1 H* S; r
& b6 ]" P" Z! u% H! b0 N/ i7 j  Q- ]
( J( Z: N9 R, L7 x! S, i$ t
9 a' l! O/ i$ V+ P: z, Y' A: J  30  Enomoto H.Regulation of neural development by glial cell linederived neurotrophic factor family ligands〔J〕.Anatl Sci Int,2005;80(1):4252.- ?% ]0 U/ T5 Z# U5 z' y

  ]' H. }" m# ^+ v; \; D$ |  M' v: \9 |1 ]

2 z/ Z% Z) J! h4 v  31  Baloh RH,Enomoto H,Johnson EM,et al.The GDNF family ligands and receptorsimplications for neural development〔J〕.Cur Opini Neurobiol,2002;10(1):10310.

Rank: 2

积分
129 
威望
129  
包包
1788  
沙发
发表于 2015-7-29 15:35 |只看该作者
经过你的指点 我还是没找到在哪 ~~~  

Rank: 2

积分
136 
威望
136  
包包
1877  
藤椅
发表于 2015-8-4 15:49 |只看该作者
谢谢楼主啊!

Rank: 2

积分
116 
威望
116  
包包
1832  
板凳
发表于 2015-8-9 20:07 |只看该作者
好啊,谢楼主

Rank: 2

积分
75 
威望
75  
包包
2193  
报纸
发表于 2015-9-16 09:10 |只看该作者
谁能送我几分啊  

Rank: 2

积分
72 
威望
72  
包包
1859  
地板
发表于 2015-9-20 07:59 |只看该作者
顶的就是你  

Rank: 2

积分
66 
威望
66  
包包
1790  
7楼
发表于 2015-10-5 16:12 |只看该作者
呵呵 大家好奇嘛 来观看下~~~~  

Rank: 2

积分
69 
威望
69  
包包
1788  
8楼
发表于 2015-10-6 16:51 |只看该作者
希望大家帮我把这个帖发给你身边的人,谢谢!  

Rank: 2

积分
70 
威望
70  
包包
1809  
9楼
发表于 2015-11-3 07:40 |只看该作者
又看了一次  

Rank: 2

积分
162 
威望
162  
包包
1724  
10楼
发表于 2015-11-6 17:23 |只看该作者
越办越好~~~~~~~~~`  
‹ 上一主题|下一主题 ›
你需要登录后才可以回帖 登录 | 注册
验证问答 换一个

Archiver|干细胞之家 ( 吉ICP备2021004615号-3 )

GMT+8, 2026-11-4 06:32

Powered by Discuz! X1.5

© 2001-2010 Comsenz Inc.