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神经干细胞与神经营养因子 [复制链接]

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发表于 2009-3-3 12:34 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
作者:吴家华  罗焕敏作者单位:(嘉应学院医学院药理教研室,广东  梅州  514031)
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  f: J/ t* R: ^* `9 z! ?          【关键词】神经干细胞;神经营养因子;中枢神经系统退行性病变" N* e" L6 z2 t( s
                    神经干细胞(NSC)增殖是神经发育早期阶段的主要事件,在此阶段,NSC通过10-12次分裂进行增殖,为后期神经发生提供足够的细胞来源。此外,当脑组织受损时,内源性NSC也可增殖并分化,补偿缺失的神经细胞,部分修复神经功能。神经营养因子(NTF)是一类对神经元有特异性保护作用的内分泌多肽,它可促进体内、外培养神经元存活及突起生长〔1〕。1952年LeviMontalcini在研究鸡胚的神经发育过程中发现了神经生长因子(NGF),此后几十年,新的NTF不断被发现,并形成了NTF大家族。它们来源于靶细胞逆向营养神经元,促进和维持神经细胞生长、存活,修复神经细胞功能。在胚胎发育早期,NTF如碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)、表皮生长因子(EGF)等能显著促进NSC的增殖与分化。
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# E. n8 ~5 A- F' A! r+ @0 a, m$ \  1bFGF
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  j/ L5 _* B, d4 e0 B" M  bFGF最初是由Gospodarowiz于1974年从牛脑和牛的脑垂体中提取出的,在体内分布广泛,尤其是在神经组织中含量丰富。bFGF在中枢神经系统(CNS)的表达受发育的调节,从胚胎期、出生后到成年哺乳动物,脑内bFGF的含量是不断变化的。Kalcheim等〔2〕用放射免疫测定法研究发现,bFGF在胚胎3 d(ED3)就有微量(1.4 ng/mg)表达,随胚胎发育时间延长,bFGF浓度不断升高,ED10蛋白含量最高(18 ng/mg),此后,蛋白含量开始下降,由ED14降到ED3水平。* I4 l! C9 g( h* T5 a
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+ L! M1 G& R, Y( A. G. H  bFGF是促进细胞生长作用很强的多肽因子,又是重要的有丝分裂原,参与细胞的生长发育和组织损伤的修复,对神经元具有明显的营养作用〔3〕。大量体外培养研究证实bFGF 是啮齿类动物神经前体细胞的有丝分裂原,能够刺激胚胎鼠纹状体、海马以及成鼠脑室下区和海马等处的NSC分裂、增殖〔4-6〕。bFGF 在0.5-20 ng/ml浓度就可发挥有效的神经营养和神经保护效应〔7〕。它与bFGF受体(bFGFR)结合后激活受体的酪氨酸激酶,导致受体本身细胞内酪氨酸残基的磷酸化,从而提供给细胞核一个进行有丝分裂的信号,继而引起细胞的分裂增殖。近来的一些研究提示bFGF通过缩短G1期时程而增加分裂增殖的干细胞数目〔8〕。体外培养还发现,bFGF 不仅可起到有丝分裂原的作用,也能促进细胞分化并决定分化的方向。Qian等〔9〕报道胚胎大脑皮质NSC的增殖或分化呈bFGF 浓度依赖性,bFGF浓度为0.1 ng/ml时皮质神经前体细胞增殖并形成克隆。而bFGF 浓度为1.0-10 ng/ml时,皮层神经前体细胞则分化成神经元和少突胶质细胞,若再加入其他因子,可分化成星形胶质细胞。bFGF与不同的受体亲和力不同,引起的信导传导通路不同,bFGF 浓度决定它与不同受体的亲和力,0.1 ng/ml bFGF可激活FGFR1和FGFR2,但对FGFR3无任何作用;1.0-10 ng/ml bFGF可激活FGFR3,提示低浓度bFGF 启动分裂信号,而高浓度不仅启动分裂而且还能启动分化信号。& O: n4 l. D: i4 D7 G4 ]6 I

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( r1 A- {$ t0 W( w* P0 U  EGF是Cohen (1962) 从雄鼠颌下腺分离提纯出来的一个具有53 个氨基酸的多肽,广泛存在于人体各种组织及体液中。在胚胎发育过程中,EGF 在脑、视网膜、下丘脑、耳蜗、脊髓前角细胞、背根节细胞、Clarke 背核细胞以及中间外侧束细胞均有表达。大量体外实验证实EGF可调节NSC/神经前体细胞分裂、增殖和分化,维持这些细胞的生存并促进其迁移,加入EGF可使BrdU标记的神经前体细胞明显增加〔6,10,11〕。Kuhn等〔12〕研究发现EGF可促进成年大鼠脑室区NSC增殖,增加由室下区迁移至纹状体和纹状体自身前体细胞的数量,但降低了迁移至嗅球新生神经元的数量,增加了星形胶质细胞的数量。
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  EGF不能促进早期侧脑室室下区NSC分裂增殖,但可促进晚期NSC增殖〔8〕。Boillée等通过核糖核酸酶保护测定发现,从胚胎期第12 天到成熟期这段时间,EGF受体(EGFR)的mRNA可在颈部脊髓腹侧部位表达,在ED15中脑生发层和小脑外颗粒层内可检测到EGFR 的mRNA,EGFR在脊髓的分布为EGF 发挥作用提供了必要的结合位点,提示EGF 在发育较晚期起作用〔13〕。( P2 }5 h/ j8 o9 a, k6 Y1 D' a

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  NGF是发现最早的NTF,广泛分布与周围组织、外周神经系统和CNS如海马、大脑、小脑、下丘脑和中脑运动神经元,通过胆碱能神经逆行运输至前脑基底核,维持胆碱能神经元的存活和功能。在胚胎发育早期,NGF能显著促进神经前体细胞的增殖并能促进其分化〔14〕。TrkA受体是NGF的高亲和力受体,NGF选择性地与TrkA受体结合,参与转录过程,从而促进细胞有丝分裂作用,p75被认为是低亲和力的NGF受体,它与TrkA结合形成膜复合物,加强NGF的作用〔15〕。  K) g3 S6 A, ?( ?  N  }
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  4脑源性神经营养因子(BDNF)
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# Y- Z, l. \$ h4 j4 l  d+ }  BDNF与NGF、神经营养因子3(Neurotrophin 3,NT3)共同组成NGF家族,也是研究最为深入的一族。BDNF在成年鼠脑的海马、下丘脑含量最丰富,在中脑、大脑皮质、杏仁核等部位含量也较多。BDNF在脑的发育初期表达水平较低,后期增加,成为脑内分布最广的NTF。细胞培养发现,BDNF可增加纹状体GABA神经元存活,神经元胞体变大,树突增多〔16〕。目前研究认为,BDNF在诱导NSC向神经元表型分化方面起着重要的作用。外源性BDNF可促进体外培养神经细胞存活及海马NSC的分化,而在体实验发现,ED16小鼠侧脑室注射BDNF可增加侧脑室有丝分裂活性及皮质板神经元数目〔5〕。其促分化作用可能是通过上调NSC后代中转录因子Brn24的表达,增加EGF敏感性NSC分化为神经元〔17〕。
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! y( }4 a3 O2 f) I8 N4 ^! t$ P' L, h  5睫状神经营养因子(ciliary neurotrophic factor,CNTF)/ y9 n$ g: Y+ d8 m4 |3 G" q  Z
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. `, F$ v% K. Q( P  CNTF最初是从鸡胚中分离出来的具有神经保护作用的细胞因子,它是一种分子量为20 kD的酸性蛋白。CNTF广泛分布于神经系统中,促进前体神经元生长、分化、成熟,维持各种神经元的存活,对运动神经元有特别的保护作用。尽管CNTF在胚胎发育期的表达量很低,但CNTF受体与CNS增殖区域密切相关。成体侧脑室内注射CNTF可促进NSC增殖并分化为星形胶质细胞〔18〕。CNTF通过激活人类CNTF 受体α链(CNTF receptor alpha chain,CNTFRα)、白血病抑制因子受体β链(leukemia inhibitory factor receptor beta chain,LIFRβ) 和白介素6受体α链(interleukin6 receptor alpha chain,IL6Rα)复合物(CNTFR/ LIFR/IL6R)(在大鼠及鸡脑中则是激活CNTFR/LIFR /gp130复合物)间接发挥神经保护作用,促进并维持NSC增殖与存活〔18,19〕。也有学者认为CNTF促进NSC自我更新并使细胞维持在有丝分裂周期而非维持NSC存活,抑制它们分化为胶质细胞前体细胞〔8〕。
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  6胰岛素样生长因子(insulinlike growth factor,IGF)
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' r( b+ P$ C& T, Q+ k  IGF系统蛋白包括IGFⅠ,Ⅱ。IGFⅠ受体(IIGFⅠR)和IGF结合蛋白(IGFbinding proteins,IGFBPs)在CNS中广泛表达,研究提示IGFⅠ在CNS中起重要作用,它通过旁分泌或自分泌形式促进NSC增殖、存活及分化〔20〕。IGFⅠ可显著促进齿状回颗粒下层神经元性前体细胞的增殖,对胶质细胞数目则缺乏此作用〔21〕。缺乏IGFⅠ培养的干细胞分化细胞中无神经元表达,反之IGFⅠ可以增加神经元数量8-40倍〔22〕。  G4 `2 l5 x9 k. B, P

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& ?2 I& a* O) \! t% s  N7 k  体内实验证实IGFⅠ可作用于胚胎期及生后发育早期NSC及前体细胞,促进海马前体细胞增殖,维持人类胎儿前脑神经球的存活〔20,23,24〕。IGFⅠ缺乏则EGF或FGFⅡ反应性纹状体干细胞增殖消失〔25〕。IGFⅠ通过促进G1期或G0/G1期转变,缩短细胞周期持续时间,并增加子代细胞重返细胞周期百分率,从而诱导NSC/前体细胞增殖〔26,27〕。
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  7胶质细胞源性神经营养因子(glial cell linederived neurotrophic factor,GDNF)
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6 f8 t) o% b+ T  GDNF是1993由美国Synergen生物技术公司的Lin等发现并克隆的一种新的NTF,它广泛分布于CNS的多巴胺能区域,在腹侧苍白球、嗅结节以及梨状区等接受多巴胺能神经元支配的区域均有表达,在非多巴胺能神经元支配的区域如胚胎小脑原基、丘脑、海马、基底前脑、脊髓背柱等的原代培养物中都可检测到GDNF mRNA的表达。出生后的正常发育过程中,纹状体内中等大小神经元则是GDNF的主要来源〔28〕。
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5 W( @7 j& g+ n  x4 J
% R9 u5 ^; \9 [$ {% u3 h  GDNF是支持多巴胺能神经元最重要的营养因子。Roussa等取小鼠中脑神经球与GDNF共同培养发现,βⅢ微管蛋白免疫阳性细胞显著增加,而未见GFAP阳性细胞表达,而且早期多巴胺的标记蛋白Nurr1 和Ptx3表达增加,提示GDNF可促进小鼠中脑NSC分化为神经元和多巴胺能神经元发育〔29〕。2 w/ _& P2 w9 e: K! `

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9 I# D6 @, T& [& X& r; L/ g/ w( E  GDNF二聚体与GDNF家族受体(GDNF family receptor,GFR)α结合形成复合物,后者诱导Ret二聚化,Ret胞内酪氨酸残基磷酸化,从而诱发一系列信号级联放大反应,影响神经发育过程中的各个方面,包括细胞增殖、迁移、轴突生长和细胞存活等〔30〕。小鼠体内GDNF家族配体(GDNF family ligands,GFLs),GFRαs 或 Ret缺乏则外周及CNS细胞均大量缺失〔31〕。
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! p  E6 Z; w, a2 S7 q. \2 |9 o  目前已知的调控NSC增殖的主要因素是NTF,bFGF、EGF等NTF能显著促进NSC的增殖与分化。但是,这些NTF的哪个才是特异性“促NSC分裂因子”呢?又是如何促进NSC增殖与分化的呢?这些还有待于进一步研究与证实。而且,在体内还存在着多种不同的细胞因子,这些细胞因子共同作用于NSC,影响其增殖与分化,它们又是如何相互作用共同影响NSC增殖与分化的呢?随着对NTF作用的进一步认识,以及对NSC增殖、迁移、分化等方面研究的日益深入,NSC在神经系统疾病治疗方面将有广阔的前景。
* I. J8 j& s) A3 V7 S5 z          【参考文献】* F5 t& |5 t7 t# h& s0 S
  1  Pollack SJ,Harper SJ.Small molecule trk receptor agonists and other neurotrophic factor mimetics〔J〕.Curr Drug Targets CNS Neurol Disord,2002;1(1):5980.
! p$ w2 ^5 K% `' w. C( @
$ W) i/ x% Q! v8 o5 E% v  i# @7 q8 a: g0 y* a
) [, M% w: ^) Z' h! C$ @
  2  Kalcheim C,Neufeld G.Expression of basic fibroblast growth factor in the nervous system of early avian embryos〔J〕.Development,1990;109(1):20315.
" U8 f0 ^8 @" c6 p8 W# Y: \2 S, [6 O/ `( `
6 _' A) k8 \' I! t+ a6 V( ?# P
, H: E1 O/ T" n0 O  N. p; r- i
  3  Ozawa K,Uruno T,Miyakawa K,et al.Expression of the fibroblast growth factor family and their receptor family genes during mouse brain development〔J〕.Mol Brain Res,1996;41(12):27988.) f  z+ {* v1 _+ U4 [, y' [- _6 i/ h
& o, z( F' B7 M1 s5 b3 z7 q. Y

; \) N) i+ k3 W# G7 d! \+ [$ c' O" j! {
  4  Kilpatrick TJ,Bartlett PF.Cloned multipotential precursors from the mouse cerebrum require FGF2,whereas glial restricted precursors are stimulated with either FGF2 or EGF〔J〕.Neuroscience,1995;15(5):365361.! ?# X$ f+ v: m. j
- v" q, H( J- v. Q, B$ E! h9 A

5 e( \+ P8 t& O0 f8 s, Q& A
- ?% x* [& y7 G; I3 {7 H% P+ x* j  5  Gritti A,Parati EA,Cova L,et al.Multipotential stem cells from the adult mouse brain proliferate and selfrenew in response to basic fibroblast growth factor〔J〕.Neuroscience,1996;16(3):1091100./ n6 Q2 o9 ~* m) d/ q# v3 m
. C6 q- j9 |7 Y

" [6 q8 m9 Y. I0 _; U0 J# f5 y( a& G1 ~) c  S  I
  6  Laskowski A,Schmidt W,Dinkel K,et al.bFGF and EGF modulate traumainduced proliferation and neurogenesis in juvenile organotypic hippocampal slice cultures〔J〕.Brain Res,2005;1037(12):7889.2 x) ^) x5 ]0 _, z; `

# u+ Q: o- E4 O: z$ ?1 W5 r0 R* ?3 D3 X- q  g6 o/ D/ U

# ?) ?( B) \$ H9 c! T0 }; O  7  Himmelseher S,Pfenniger E,Georgieff M.Effects of basic fibroblast growth factor on hippocampal neurons after axonal injury〔J〕.J Trauma,1997;42(4):65964.6 h# _3 G% i2 P
# g# j. V2 f8 p5 Q! {+ k4 o
" R# c5 D4 N3 W4 [; N

* _. {1 s- W% n* M  8  O′Shea KS.Neural stem cell models of development and disease.In:Bottenstein JE.Neural stem cells:development and transplantation〔M〕. Dutch:Kluwer Academic Publishers,2003:154.
6 x% g, `- i+ @9 E
% q+ c- ^- N5 n( S$ ]( m
( T5 M% z  q, d3 U  h+ G1 S2 l; \' d& e7 d- q% w7 {9 p8 y
  9  Qian X,Davis AA,Goderie SK,et al.FGF2 concentration regulates the generation of neurons and glia from multipotent cortical stem cells〔J〕. Neuron,1997;18(1):8193.
* c$ j. J( V  i# H5 z7 c- r7 ~/ r$ b$ z! m  ?8 G0 ]

" l3 o3 V) h1 Q' v1 I+ ^
# y8 Z" F7 f; t) F# W; H- Z  10  Reynolds BA,Tetzlaff W,Weiss S.A multipotent EGFresponsive striatal embryonic progenitor cell produces neurons and astrocytes〔J〕. Neuroscience,1992;12(11):456574.
/ ^* i6 e% `$ G. W8 Q8 v; `0 s: p: m4 s& ^$ @

: l. u4 `& z- J/ ]2 G
: k: T6 J% m4 a" Q4 l# o( d6 L2 U  11  Whittemore SR,Morassutti DJ,Walters WM,et al.Mitogen and substrate differentially affect the lineage restriction of adult rat subventricular zone neural precursor cell populations〔J〕.Exp Cell Res,1999;252(1):7595.
3 J( r" Z: C7 Z9 F- e0 s% v
+ I( W2 _- o* i4 T' O, }9 k- G7 N# X/ J' R

5 J# z$ I# ?  |5 E  12  Kuhn HG,Winkler J,Kempermann G,et al.Epidermal growth factor and fibroblast growth factor2 have different effects on neural progenitors in the adult rat brain〔J〕.Neuroscience,1997;17(15):58209.' Q2 @% r+ i) I; n9 `6 [* h" ]

0 A7 u* i/ d% z, c  P% r4 ^) M  Z- `: @$ r
. I, j- k% W3 J& X
  13  Boillée S,Cadusseau J,Coulpier M,et al.Transforming growth factor alpha:a promoter of motoneuron survive of potential biological relevance〔J〕.Neuroscience,2001;21(18):707988.5 Z: l& L) Q$ D5 X

3 H! G4 I: T4 i! |: O! N% L- d5 Z+ A
; D- X' I& D2 z" E) j: P8 I
8 C2 z9 ~3 y0 {9 a0 m  14  Cattaneo E,Mckay R.Proliferation and differentiation of neuronal stem cell regulated by nerve growth factor〔J〕.Nature,1990;347(6295):7625.
+ k* Z! A& j# R: p% p: d! D+ P0 ]6 N& z
) c1 i" I/ T2 t1 j
8 R8 h4 b, u( L, o) K9 r, w
% |; g" Q8 B; E9 |( z& R  15  Widenfalk J,Lundstrmer K,Jubran M,et al.Neurotrophic factor and receptors in the immature and adult spinal cord after mechanical injury or kainic acid〔J〕. J Neurosci,2001;21(10):345775.
) H8 k6 E. _0 b, Q+ Q- H
) i0 |4 k" f+ o: f
" j! W: ~" C' X, h1 k0 p- N
1 v: m9 X2 P- C0 B' X) v  16  Altar CA,Cai N,Bliven T,et al.Anterograde transport of brainderived neurotrophic factor and its role in the brain〔J〕.Nature,1997;389(6653):85660.& ]; W- c5 e  r' a2 A2 }

) R# N8 x* J2 R( C$ @) ?4 W, T! g4 E) _& Z8 o

8 }0 z9 t' o: [. L+ ^+ ], c# p  17  曹丽丽,潘克俭,胡火珍.神经干细胞.见:胡火珍.干细胞生物学〔M〕.成都:四川大学出版社,2005:11225.
* R: F  U& z/ u$ {' c+ @" D1 y) D  U- Q6 C8 u4 L3 P
4 o+ r2 j: K5 A# y5 }7 P
, \! a( N) \/ ?' C2 V0 ~8 C$ K
  18  Shimazaki T,Shingo T,Weiss S.The ciliary neurotrophic factor/Leukemia inhibitory factor/gp130 receptor complex operates in the maintenance of mammalian forebrain neural stem cells〔J〕.Neuroscience,2001;21(19):764253.
) e$ J" n9 U1 Q: a) B* b" Z1 y6 M* g) @  c' ]
& j, O3 b3 v# l- u$ M) n! c: w! @: p

6 I  s/ P. j! O/ H  19  Cognet I,Guilhot F,Chevalier S,et al.Expression of biologically active mouse ciliary neutrophic factor (CNTF) and soluble CNTFR alpha in Escherichia coli and characterization of their functional specificities〔J〕. Eur Cyto Network,2004;15(3):25562.
6 @7 x6 X6 Y7 M- h1 @* P7 B! |( h7 O( g& l1 U0 v" H

. }& W. K4 G5 |. S& _3 H
9 ~* I9 _( z; D% f9 F2 w+ L+ q  20  Ye P,D′Ercole AJ.Insulinlike growth factor actions during development of neural stem cells and progenitors in the central nervous system〔J〕. Neurosci Res,2006;83(1):16.
$ H3 v" F; F, t9 ^9 U7 f$ y9 J) x+ W! ~0 \+ U. E8 R; z! x
5 J2 R- s" r* `5 d$ H0 k) Q
3 _/ g$ U$ |! d5 m% D7 ]
  21  Aberg MA,Aberg ND,Hedbacker H,et al.Peripheral infusion of IGFⅠ selectively induces neurogenesis in the adult rat hippocampus〔J〕. Neuroscience,2000;20(8):2896903.! e. `& {- p3 J

( _1 e4 O( D# s; D" _3 i6 P
, v/ U6 m! a/ S$ g; b* |! v1 L; }6 f1 V
  22  Arsenijevic Y,Weiss S.Insulinlike growth factor1 is a differentiation factor for post mitotic CNS stem cellderived neuronal precursors:distinct actions from those of brainderived neurotrophic factor〔J〕. Neuroscience,1998;18(6):211828.
/ r& [  E. w9 L( Y3 J) y, z" y' G! Q- U, Q: e* k% @* U

- V: m+ e9 T1 N4 e+ p
3 J- G6 W1 `; E- u8 T9 D  23  Aberg MA,Aberg ND,Palmer TD,et al.IGFⅠ has a direct proliferative effect in adult hippocampal progenitor cells〔J〕.Mol Cell Neurosci,2003;24(1):2340.
3 K2 \9 h3 _4 Y6 x7 `! O8 X/ \( I! t& W6 V

3 E9 C' A4 l1 h( Y: i& m0 V. V  [& z- I+ g6 g+ ], Q
  24  ChalmersRedman RM,Priestley T,Kemp JA,et al.In vitro propagation and inducible differentiation of multipotential progenitor cells from human fetal brain〔J〕.Neuroscience,1997;76(4):11218.
0 i! C5 c) c9 z: r0 a$ G& e9 H
1 t% V* q* I; f- z( I8 g, V1 @; X7 a/ B
5 w- R, Y5 T0 o1 i) u5 `9 w
  25  Arsenijevic Y,Weiss S,Schneider B,et al.Insulinlike growth factorⅠ is necessary for neural stem cell proliferation and demonstrates distinct actions of epidermal growth factor and fibroblast growth factor2〔J〕. Neuroscience,2001;21(18):7194202.4 T, g( n. e5 d( @% V- h# P
: r) z. x' s* s  M0 D. q' M
: R3 `; q# B% J: y5 g. Y

4 s  Z" N4 L% q) r  26  Hodge RD,D′Ercole AJ,O′Kusky JR.Insulinlike growth factorⅠ accelerates the cell cycle by decreasing G1 phase length and increases cell cycle reentry in the embryonic cerebral cortex〔J〕.Neuroscience,2004;24(45):1020110.3 u& `" j+ q) A6 h: _1 K8 ]9 F
/ ^. u8 S) _9 g" C, L/ [

. b+ a6 n  c, C5 q
; |* y2 P( ?) B- g' ^" t* F  27  Stull MA,Richert MM,Loladze AV,et al.Requirement for IGFⅠ in epidermal growth factormediated cell cycle progression of mammary epithelial cells〔J〕.Endocrinology,2002;143(5):18729.* }% D9 g7 Y2 V3 H& S. d

+ Y5 j- |8 u# }' D. V5 @! \; R7 F; M5 X8 j( M# f" m. m5 ?
6 ?' n8 m0 W; _6 f. l4 {
  28  Oo TF,Ries V,Cho J,et al.Anatomical basis of glial cell linederived neurotrophic factor expression in the striatum and related basal ganglia during postnatal development of the rat〔J〕. J Compa Neurol,2005;484(1):5767.. L& b. E' z: O& C; g0 F

" R% P6 K' d7 C# K0 @
! V0 N+ e5 g* b+ M
1 @, A% M8 j" Z3 ^; T* ]- c  e  29  Roussa E,Krieglstein K.GDNF promotes neuronal differentiation and dopaminergic development of mouse mesencephalic neurospheres〔J〕. Neurosci Lett,2004;361(13):525.& Z' A$ C& U) ]* M1 E2 Z
) z: L0 y( F5 M* H% I

) E3 K; j" m. d9 F0 c9 |
% g1 r/ `1 q% ~  30  Enomoto H.Regulation of neural development by glial cell linederived neurotrophic factor family ligands〔J〕.Anatl Sci Int,2005;80(1):4252.
7 `0 g, N7 Q1 S. \1 c7 u6 U, Y4 V+ \4 K. v- c2 m* |

. I2 I+ c7 `8 Z% _' E; M, B' u1 u& ^9 ~7 H2 i
  31  Baloh RH,Enomoto H,Johnson EM,et al.The GDNF family ligands and receptorsimplications for neural development〔J〕.Cur Opini Neurobiol,2002;10(1):10310.

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沙发
发表于 2015-7-29 15:35 |只看该作者
经过你的指点 我还是没找到在哪 ~~~  

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藤椅
发表于 2015-8-4 15:49 |只看该作者
谢谢楼主啊!

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板凳
发表于 2015-8-9 20:07 |只看该作者
干细胞之家微信公众号
好啊,谢楼主

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报纸
发表于 2015-9-16 09:10 |只看该作者
谁能送我几分啊  

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地板
发表于 2015-9-20 07:59 |只看该作者
顶的就是你  

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发表于 2015-10-5 16:12 |只看该作者
呵呵 大家好奇嘛 来观看下~~~~  

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发表于 2015-10-6 16:51 |只看该作者
希望大家帮我把这个帖发给你身边的人,谢谢!  

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发表于 2015-11-3 07:40 |只看该作者
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发表于 2015-11-6 17:23 |只看该作者
越办越好~~~~~~~~~`  
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