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我们是这样做的,我觉得比较简单,但是较为考验操作技术,不过多挑几个培养皿,熟悉一下就能挑到很多的克隆。简单的来说,是这样的:首先转染后的细胞(或者其他细胞系)按照一定的比例稀释到100mm培养皿(比如1:50,1:100,具体根据那种细胞生长速度的快慢而定,保证之后长出的单克隆与单克隆之间有足够的间隙空间,方便挑克隆),加抗生素选择性培养,大概一周到两周(视细胞系而异)后能长出肉眼可见的细胞单克隆,不是很清晰,但在超净台中对着日光灯能看清楚的;这时准备挑克隆了,准备一块96孔板,加上100ul/well培养基;准备一盒灭菌后的200ul普通黄枪头(20ul的白枪头我试过不好用);先吸掉培养皿里的培养基,用PBS润洗一遍细胞(要是熟练了挑克隆的速度比较快,我们也直接用胰酶润洗,另外对一些难消化的细胞,用胰酶润洗的效果比PBS好),再用100ul移液枪调到20-30ul量程,吸取大约10ul左右胰酶,在日光灯下对着细胞克隆吹打并吸取,加到96孔板中即可。" c$ b6 U* C* R
刚开始用这种方法,可能吸不上细胞,导致整个96-孔板可能基本上白板,没几个克隆被挑出,但多练习几次就可以了,基本上一吸一个准;不过,这种方法容易导致克隆不纯,这也是为什么之前克隆稀释的时候要按照一定的比例,保证克隆与克隆之间有足够的间隙;但是,还是不能保证克隆很纯,在鉴定出阳性克隆之后,如果觉得有必要,克隆到时候再做一个单克隆稀释。
, Z3 n& T1 K1 K% k( s6 G我们用这种方法很久了,觉得比较有效,已经成功构建了很多的细胞系。 |
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