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首先讲解一下处死兔子后取骨髓的方法# z' j! w& ~$ Q8 \- x: G2 n% f9 l
步骤如下:
- z& R9 y6 w( b! F; L+ m: D- ^& x, y一: 2周龄新西兰大耳白兔一只,空气栓塞处死,75%酒精浸泡10min(全部浸没);
7 b# i/ A: _8 `6 m# c4 U5 A: G二: 带无菌手套,实验室空地方铺无菌巾一张,将兔子放在无菌巾上,用钳子,镊子,剪刀等分离出完整的股骨,胫骨,剔除骨表面的肌肉,表面组织尽量少为好,将分离好以后得骨放置在无菌的培养皿中,转移至超净工作台内(预先紫外照射30min);
3 F- W+ c( ]+ U# |$ D+ n- @. p三: 准备三个无菌培养皿(我用的是9cm),每个中加入15mlPBS液,将骨分别依次在三个培养皿中清洗以除去骨表面碎屑组织;
7 J* b" u6 M( l- G4 x6 t4 D8 Z四: 用剪刀剪断股骨,胫骨骨的干骺端,两断都剪断,但不要剪的太多,尽量保留干骺端,能够冲洗,抽吸骨髓即可,然后用10ml注射器取无菌的PBS液10ml,冲洗骨髓至另外的无菌培养皿中,PBS液用量为20ml,反复冲洗,直到骨髓腔变白,干骺端也变白(我觉得骨髓间充质干细胞主要在干骺端)。始终保证总量为20ml,因为分装至15ml离心管中的时候不能太满,容易污染。$ G5 W9 I7 x h0 R! Z" ] s
五: 将收集的骨髓过滤,我的滤网为70um,购买自BD公司的(找的代理商买的,貌似16块钱一个,一次卖的是50个),过滤到无菌培养皿中,然后转移至两支15ml离心管中,离心,1500rbp,5min,弃上清,15%培养基(FBS 15ml,双抗1ml,低糖DMEM液85ml,FBS,DMEM液购自GIBCO)6ml重悬细胞,重悬的次数大概为100次(个人觉得次数多了可以将细胞冲散,有利于细胞的贴壁),然后分装至T25培养瓶中,两瓶,每瓶3ml,然后再每瓶加培养基2ml,一共5ml,做好标记,放置培养箱中培养。% G: p7 t! N- G! q& [
六: 5天以后第一次观察,期间不要换液,不要观察,一般好的培养基5天后可以见到部分细胞贴壁,此时全量换液,然后2~3天换液一次,基本上10天左右可以传代。- \: j* \ t5 U, n0 `
七: 同理取另外胫骨,股骨。
* Z; d1 [& N+ R0 V. I实验所需要准备的器材0 E# R7 y6 k0 F3 N5 `
一 超净工作台之外,5ml注射器一个,无菌巾一张,无菌手套一副,75%酒精若干,烧杯一个,Timer,消毒好的剪刀,镊子,钳子等分离的器材,9cm无菌的玻璃培养皿(推荐玻璃的,可以重复利用)一个;
) f( w* Y1 [- A8 Z4 ^6 b8 b! U; y( f二 超净工作台之内,10ml注射器若干,一次性手套一副,无菌培养皿5个,滤网一个,剪刀一把,镊子或钳子一把,15ml离心管4支,PBS液若干,培养基若干,培养瓶4个,吸管若干,记号笔一只。- ^) H5 ?8 Z% S0 D7 H3 L8 O- [8 Y
只记得这些了,要是忘记了大家可以补充的。 |
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