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楼主
发表于 2011-8-1 21:20 |显示全部帖子
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fwyou 发表于 2011-8-1 21:15 % D3 k- E1 q) ^& e
想请教一个问题,为了正确评估qPCR的扩增效率,至少三个重复?您们一般做几个、四个?还是?
9 i( z+ ]6 h- y( Z, K+ R8 U
什么叫扩增效率?
7 Q9 S! R2 R2 }) X' O5 t4 R3 R
# y2 q0 ]$ a. l2 @# T* R+ _' W% q( p, w在做qPCR是要先test你的qPCR引物,看其是否特异。也就是在对照组(加水)和实验组中(一般每组3个重复即可。)先test一下引物,看峰是否单一,C(t)值是否合适(如果此值在实验组中为35以上,要么说明引物扩增效率不好,要么说明此基因表达量很低。)。对照组水中的C(t)值应该为N/A,或者在38以上为好。
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沙发
发表于 2011-8-2 08:56 |显示全部帖子
本帖最后由 linlicau 于 2011-8-2 08:57 编辑 ' k6 j" D3 ?! B. Z: t- ^6 X
fwyou 发表于 2011-8-1 23:58
) ~" U3 X( X: `+ ]* i5 O回复 linlicau 的帖子
! G% H" s& C) m  M' n: T2 T2 w, N' n: b/ o' ^
呵呵 受教了 我才看 ,再别的实验室做,完全不明白,特别是实验组?每个实验组做三个 ...

; c9 x9 O( b1 Y: u9 L+ B
5 y$ X1 ?5 L( ], w同学,可能是我没有说清楚。我再详细说一次吧。: G5 B$ Y& ^. z  @

9 t8 Z' c0 ~6 ^' v$ L# h$ @在真正的用qPCR做基因表达检测前,需要对用于检测该基因的引物进行测试,测试的目的主要是看此引物是否特异(特异的意思就是只能PCR出你要的基因中的片段,而不是其他基因中的片段),5 `( i! r( `7 M8 c7 h
$ t3 o, S6 v4 k: F4 d+ F! c
特异的检测标准一般就是:你做两个组,一个是水空白对照组,即:其他成分加的都一样,只是template只加水,三个重复即可;另一组是实验组,也就是template加入的是应该包含你需要检测基因的cDNA, 三个重复即可。是不是特异就看:加水的组本应该没有检测到任何的表达,C(t)值应为N/A;而实验组应该有表达,并且你在看melting curve的时候应该是单峰,没有别的偏峰。且最好实验组的表达的C(t)值应该在35以下。然后,等realtime PCR做完,最好跑个gel验证一下,是否实验组只有一条带,且这条带的大小应该与你设计的大小一样,比如200bp(一般realtime PCR片段长度为100-300bp)。1 s# E9 D2 a( `! m: d7 e4 I+ r

5 T3 K  }9 B1 L5 P/ `5 }$ X& s如果这些都ok了,那么你就可以做你自己的实验了。
3 g6 f9 O) U* A/ V. D$ N
7 z+ T8 E: _7 f$ q# R在做你自己的实验检测某个基因表达情况时,最好每个样品做三个重复,并且同时要做ACTIN或者GAPDH作为reference,最后要对通过实验组对这些reference基因normalize之后得到你要的相对表达值。你就可以看到在不同组织或者不同时间你的基因的表达情况。
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