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酸钙转染法& J6 H, E3 p2 W3 W" @4 g% v
材料:: O3 n9 i4 s9 h ^0 G. H( ^
质粒DNA
' H {- M2 X- B' x( t指数生长的真核细胞
! g8 W4 A" R8 F! D3 K. J( q# j/ J! n2 M CaCl27 _" a1 i' J+ f) g# A! j
2×HBS (pH 7.05)1 p8 _, y# M1 R5 e! n% l* _
配方:
9 n, j. F; C1 ^0 K# D. ~& X& t7 v2×HBS (pH7.05):900 ml 超纯水中加入NaCl 16.3 g, KCl 0.74 g, Na2HPO4 0.214g,Glucose 2.4 g和 HEPES 10 g,调pH至7.05,定容至1 升,过滤(0.2μm 滤膜)后储存于4℃备用。( Z& i) m$ d) a& j) f0 z
方法:! M3 y# Q# ?& m9 W2 s
1. 细胞分盘: 通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 1×105至 4×105细胞/cm2的密度平铺细胞于 60 mm 组织培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 40~70%) 。将细胞置于含 5%CO2的37℃温箱中孵育8~24 h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。 转染前2 h换液(用4 ml 新鲜的完全培养基置换旧的培养基) 。$ G9 X- j. G5 x& G1 `2 I e: @1 C
注:为得到较高的转染效率,尽量使用指数生长的细胞,转染时细胞的密度不超过80%。: x7 P# m7 c! {5 K/ j; {
2. 制备磷酸钙-DNA 沉淀:以60 mm 组织培养皿用500μl 反应总体积为例。在灭菌水中加入质粒DNA(总量4~10μg为佳),再加入31 μl 2 M CaCl2,使三者总体积达到250 μl,混匀。将等体积 2×HBS 盐溶液逐滴加入,同时轻弹管壁,使每滴加入后及时混匀。静置 2 min 后,立即将这500 μl 的磷酸钙-DNA悬液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀。" g4 r: P$ m; ^% o
注: 可以观察到滴入的部位培养基瞬间会出现浑浊的橘黄色, 应尽快将其混匀,避免形成过大的颗粒,影响转染效率。5 P$ x) ~$ x' y
% ?: ?5 A* o$ ?5 n4 X' Y6 d
其中的关键是HBS的PH值,有人说6.8-6.9也行。
$ @- ?2 L/ R5 q1 O以上方法供大家参考。 |
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