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有谁能帮帮我?怎么从外周血提取培养T细胞和NK细胞 [复制链接]

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楼主
发表于 2012-2-1 09:59 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
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本帖最后由 细胞海洋 于 2012-2-1 10:22 编辑 : I* S; B2 ^- i% h$ S' M# S

+ l# ?3 s$ x' i! Z我想很诚恳的向大家请教一下怎么从外周血提取培养T细胞和NK细胞,哪位前辈有比较完整的资料,我在这方面完全空白,我在网上查到的资料感觉都不全,谢谢大家的帮忙!!!

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沙发
发表于 2012-2-1 11:06 |只看该作者
外周血中除红细胞外,还有粒细胞、单核细胞和淋巴细胞及血小板等,通常是分离这些血细胞的重要来源。其分离方法有四种:自然沉降法、差异沉降法、氯化铵分 离法、Ficoll分离法。 ! f8 ]! p3 ?8 `8 i& N6 z" q
1、自然沉降法: " l1 ^" I7 |/ B% s. L* q. C$ f
将无菌抗凝血放入试管中,在37℃水浴中静置,自然沉降1-2h,可见到红细胞下沉,并有明显分层,上层血浆中富含有大量的 和淋巴细胞,下层主 要为红细胞。此方法简便但各层中的细胞种类多,不纯。血浆中虽以粒细胞、淋巴细胞为主,但也含有血小板,大单核细胞和少量红细胞。下层虽以红细胞为主,但 也有上述各种细胞,此法适用于淋巴细胞转化试验。
" I2 Q1 v( |& M* a* ?2、差异沉降法:
5 [( C" A6 \/ N% F3 s; I用6%的右旋糖酐或3%的明胶溶液无菌消毒后,分装于中试管中,由于这些物质能使红细胞形成“串状”,比粒细胞、淋巴细胞沉降速度快,因而可使红细胞与白细胞、淋巴细 胞分离开。其方法如下:用6%的右旋糖酐溶液5-10ml,经抗凝血5ml加入上层中混合后静置于37℃水浴中30-60min,即可见红细胞下沉,上层富含大量粒细胞和淋巴细胞,下层为红细胞,使两者易于分离开, 取上层可用于粒细胞、淋巴细胞培养和实验,下层可用于红细胞培养和实验,经PBS洗3次后即可加入培养基培养,可用于天然白细胞干扰素的诱生和生产。此法 分离的细胞纯度也不高。
2 }9 f* E, v: A8 D3、氯化铵分离法: 4 E7 y1 {  g' V- r3 v* @6 b
0.83%氯化铵(NH4CL)可使红细胞破裂,通常将分离获得的粒细胞。淋巴细胞中混有的少量的红细胞用0.83%氯化铵进行裂 解,以排除红细胞的干扰。另外,此法也适合大量粒细胞、淋巴细胞的分离制备,在天然白细胞干扰素诱生和生产中已被广泛应用。方法如下:
5 y% H# }6 _- \+ o将中心血站供应的健康人外周血离心分离白细胞黄层悬液先经2000r/min离心20min,吸出上清血浆,将下层的红细胞、白细胞混合后,加入0.83 氯化铵,用量为血细胞悬液液量的3倍,于4℃作用20min后离心弃去上清。
  x' ], [9 m1 R( B2 _* D$ _在沉淀层中再加入新鲜0.83氯化铵混匀后于4℃作用20min,以便彻底清除红细胞,离心弃上清。 , [: c. S  a9 U( S2 [
收货下层的细胞用PBS洗3次后,再用含5%人AB型血清的(含100U/ml卡拉霉素)培养基制成悬液,调整细胞浓度为(8-10)x10^9个/L,分瓶加塞在 37℃普通培养箱中旋转培养(12r/h)。
9 j/ f3 F( }, o混悬细胞时若加入干扰素诱导剂(NDV-F)诱导22h,收货上清就可生产白细胞干扰素。此法分离的细胞纯度更差。
* ?5 I# ]9 k0 K$ `5 I/ e4、Ficoll分离法:
- I* w. [: M2 k; I+ j; K5 ?采用Ficoll和泛影葡胺配制而成的淋巴细胞分离液,通过2000r/min离心后可使血细胞以不同相对密度分离开,如分离淋巴细胞可选用相对密度 1.077的分离液;若分离血小板可用相对密度1.090的分离液,若分离骨髓中的单核细胞常用相对密度1.120的分离液,现以淋巴细胞分离为例,方法 如下。
/ x$ l3 m6 [- X! i0 z取中心血站供应的抗凝血细胞或初步分离的白细胞黄层细胞悬液,用无钙、镁离子的PBS稀释3-4倍。 # c" i  g4 K# M* e1 l
将Ficoll淋巴细胞分离液事先分装于离心管中,使其沉于管底,并在37℃中预热。
. h$ `: y0 ^! z+ X6 X用吸管将经稀释的血细胞悬液沿离心管壁缓慢加入,不让细胞悬液冲破分层液界面,使其悬于分层液上方。 * k9 G1 S; y) T
以2000r/min离心20min后,不同细胞可依相对密度不同而分布于各位置上,由于红细胞在Ficoll作用下成串下沉,故在离心管中分布在Ficoll层下方,淋巴细胞分布在Ficoll层上方。" s5 r+ X( o. x5 k' a6 V2 j, R
收集浑浊带分离获得的淋巴细胞,用无钙、镁离子的PBS洗3次后,再用培养基洗1次后计数,分瓶培养。
! Q- \) f/ B* i% B' M9 S3 V此法分离获得淋巴细胞纯度高。
% W- g9 j# ~8 V# d$ U) O4 D3 Y分离液的制备:9% Ficoll(20℃下相对密度约1.020)24份与33.4%泛影葡胺(用泛影钠或Conray400也可,在20℃下相对密度约1.200)10份 混合后,将其相对密度调至1.077金额可获得淋巴细胞分离液,于121℃高压蒸汽灭菌30min,室温保存备用。若配制高相对密度的分离液用加入高浓度 泛影葡胺来调整,若配制低相对密度的分离液用稀释的Ficoll来调整。- Z  O( p% C  X) e, G$ h+ `
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藤椅
发表于 2012-2-1 12:57 |只看该作者
不就是培养CIK细胞嘛,网上资料多得很。。。
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