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4 t9 T v, ]* a0 K5 h' k7 a2 T 大部分都差不多,就是在消化上有点不同,这是我的做法
( C9 |0 i* r `/ L+ ]$ S8 e" e8 ?4 ^# Q8 Q+ z" H L
Wharton胶组织用剪刀剪成1mm3的碎块于是先准备好的装有0.1%胶原酶的
! S! l5 j% v: g小烧杯中,置于37度恒温培养箱中消化4-6h
. z4 v1 t# A+ B6 G. T7 N- g 加入适当体积的PBSA(PBS缓冲液中加入牛血清白蛋白,即BSA),一般是
# m& p2 M4 @) M2 D5 q胶原酶溶液体积的2倍,250g离心5分钟。1 C. Y1 I! S) g3 D( w, O3 u2 \
弃上清液,加入2.5%胰蛋白酶(大约是沉淀物体积的2倍),37度处理30
/ z5 O; u* P | E- H分钟,轻轻摇动。, M' \* }( U. u9 I3 W
加入适当体积的FBS(消化酶体积的10%)中止消化。# e3 V, z! S. y) W% y
1200r/min离心5分钟,弃上清,用PBS清洗2次.
1 T. u* m- O5 ?7 b1 M 用培养液重悬分离得到的细胞,用滴管吸取细胞悬液于培养瓶中,摇匀.取少, Q, A( `3 y% B3 D
许于细胞计数板,生物显微镜下观察计数,加入培养液,调整细胞悬液浓度大约在+ k& D1 y% T; F E3 a! r( H# r
1*10 6/ml.置于37度,5%CO2的饱和湿度培养箱中培养., Z+ ?& _4 _) w7 |4 }0 b0 @1 t4 C0 ]
" B1 m2 l9 `3 `" m! Q# J/ d( r/ u, w
我想,你在消化上应该在胶原酶消化完了之后最好先终止消化离心,再加入胰酶消化,还有就是消化完组织后,要清洗细胞,这个很重要,把残留的胰酶清洗掉9 ?# t ~8 P, h# k: K
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