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求教关于人胚胎干细胞免疫荧光的问题 [复制链接]

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发表于 2012-7-8 15:11 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 fish_zbw1985 于 2012-7-8 15:11 编辑 6 D7 {, k' n7 e0 V0 A- P

7 E" T( A1 ]# V% \; ^- z8 T4 ]9 |最近按照标准流程做人ES细胞核蛋白免疫荧光染色,发现经常出现克隆内所有细胞核全部着色的现象.不知道是不是做的方法有问题的缘故,个人觉得应该有很多是非特异结合的染色.请问有什么办法可以做出特异性较好的免疫荧光.附我的实验方案:
* }$ B0 b: ]* F1: 细胞用PBS洗一次后用4%多聚甲醛室温固定20min
9 a1 V2 _/ @; F: T6 W7 y9 c2: PBS洗三次后用含0.2%Triton X100的PBS室温穿膜15min
+ T! A+ m3 j) F( e3: PBS洗三次后用10%二抗血清的PBST(含Triton X100)室温封闭30min' s2 P! R0 [/ Z& w/ O
4: 用10%血清的PBS稀释一抗4度过夜
6 ^. [* S1 a2 R/ h4 L3 D6 Q4 V5: PBS洗三次后用PBS稀释的二抗室温孵育1h
6 f, a+ t4 T. ~% L6 : PBS洗三次后加PBS稀释的DAPI室温孵育3min0 {; B+ E8 i" h6 W4 S
7: PBS洗一次后在荧光显微镜下观察
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沙发
发表于 2012-7-12 14:58 |只看该作者
我觉得你的免疫荧光染色protocol没有问题。
* d0 k+ z6 T  C/ @可以从以下几个方面考虑非特异性的问题/ M0 O! u! z1 ]9 ]
1、一抗的质量问题。如果然其他的cell line 同样有非特异性的问题,可考虑此方面
5 R  Q8 ?- b  M2、一抗浓度过高,不同的样本最适合的一抗的浓度并不完全一致,若染其他样本特异性较好的话,可以将一抗浓度减低一些试试。. W& n+ h2 K  c
3、一抗染色后的洗涤效果不佳,非特异性结合较多。
; K2 m5 ]% b- X6 I, J2 C$ N  G4、二抗浓度过高。
' U+ E, G6 ?- V  ^* I: G) H  T5、二抗与样本有交叉免疫反应,可考虑换一个厂家的二抗。
1 M; r/ b; z& N* P以上几点是我们分析免疫荧光染色非特异性问题时考虑的几点,仅供参考。
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藤椅
发表于 2012-7-17 15:23 |只看该作者
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0 S9 k) V8 B, q
, {& w0 u2 \6 e& |5 p' \4 Z感谢帮助!

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发表于 2012-8-19 09:32 |只看该作者
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我做的是小鼠胚胎干细胞的免疫荧光,想看加药后是否还能表达OCT-4,SSEA即是否还有自我更新能力,但是效果一直不好,主要问题细胞经过多次冲洗到最后观察时已经掉下来了,由于我的药物是DMSO配置的不能紫外消毒,所以有时经过四天孵育后,细胞就染菌了。。。。有没有人能指点一下啊    感激不尽啊
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报纸
发表于 2012-8-19 09:33 |只看该作者
我做的是小鼠胚胎干细胞的免疫荧光,想看加药后是否还能表达OCT-4,SSEA即是否还有自我更新能力,但是效果一直不好,主要问题细胞经过多次冲洗到最后观察时已经掉下来了,由于我的药物是DMSO配置的不能紫外消毒,所以有时经过四天孵育后,细胞就染菌了。。。。有没有人能指点一下啊    感激不尽啊

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发表于 2012-8-19 20:51 |只看该作者
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发表于 2012-8-27 14:50 |只看该作者

  X! v8 M! f3 v! F9 o2 t" ZThe cell-surface-antigen expression of cultured cells can be analyzed by using immunofluorescence techniques. The following primary monoclonal antibodies are used to detect surface-antigen expression: anti-SSEA-1;anti-SSEA-3; anti-SSEA-4; anti-TRA-1-60; anti-TRA-1-81; and anti-Oct-4.
$ p+ P. L7 u8 W( ^4 ]7 ~! H
2 ~! {% {$ U4 O+ u) uFluorescein isothiocyanate (FITC)-labeled secondary antibodies, appropriate to the species and isotype of the primary antibody, can be used for detection of primary antibody binding.
6 p0 }4 u! I' b) G% q# l9 h$ N; Y; }7 A# F: w4 J" P
1. Fix cultured ES cells in Fixative Solution for 15-20 minutes at room temperature.
  p) H" F, d5 |  e1 D( t  }2. Wash twice (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer. ; y/ n: R/ r8 Y) \. G0 ~4 i
3. Permeabilize cells with 0.1% Triton X-100 / PBS for 10 minutes at room temperature. # D3 Z$ L' W6 K* h7 V
4. Wash twice (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer. 3 m( R+ g$ W( F4 r* H- o) X9 l& f
5. Apply Blocking Solution for 30 minutes at room temperature. + i; o3 Z7 x% z4 |$ H' B5 b% y
6. Dilute primary antibodies to working concentrations in Blocking Solution (SSEA-1, SSEA-3, SSEA-4, TRA-1-60, TRA-1-81 & Oct-4 can be used in the range of 1:10 – 1:50). Incubate primary antibodies for 1 hour at room temperature. 0 _; x* y  d" s& ]5 U: C# r
7. Wash three times (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer.
2 d4 M) o2 k0 I& H! t' m8. Dilute secondary antibodies in 1 X PBS just before use. Incubate secondary antibodies for 30-60 minutes at room temperature.
9 ^& ~: f: c$ K1 K# N4 i  i& G9. Wash three times (5-10 minutes each) with 1 X Rinse Buffer. $ T) |- }; B! Q! K* @6 F; I
10. If stained in plate wells, cells should be covered with 1 X PBS for visualization. However, if cells are stained on a coverslip, mount on a slide by using antifade mounting solution. / f& o& d& c7 w" o6 @/ n2 v
11. Fluorescence images can be visualized with a fluorescence microscope. ( {0 m- c8 i1 c# E  a# {) ]2 d
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