Nature成功实现干细胞靶向基因组编辑（附原文）

坤明

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) I) ]( f1 ~$ A$ l& ]6 L6 ?0 I时间：2014年5月29日 来源：生物通
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生物通报道  来自意大利San Raffaele科学研究所的研究人员，在人类造血干细胞（HSC）成功实现了靶向基因组编辑，这一突破性的成果发表在5月28日的《自然》（Nature）杂志上。( i0 G* A% n& Y" D4 h. X; I. ?  T

$ |! b& y( i% y- L+ ^基因治疗为一些因基因缺陷引起的遗传性疾病提供了良好的治疗效果。然而传统的方法是采用一种遗传工程载体将突变基因的一个功能拷贝传送到病变细胞添加到基因组中。尽管更为先进的载体，例如慢病毒载体证实提高了安全性和疗效，利用半随机插入载体存在的插入突变及失控性转基因表达风险仍然令人们感到担忧。这些不良效应有可能会触发癌症形成、毒性作用或破坏基因修饰细胞。/ \. i4 v& I- {+ J' E) i5 t
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锌指核酸酶(ZFNs)、转录激活因子样效应蛋白核酸酶(TALEN)和RNA引导核酸酶(CRISPR/Cas)等人工核酸内切酶为基因打靶实现基因治疗效应带来了可能性。利用这些核酸酶可以有效和特异性地对基因组进行靶向编辑，使得能够将表达组件整合到安全的基因组位点，或是通过在受累基因启动子下游插入一个功能性的拷贝纠正致病突变。相比于基因替代，这种基因修正不仅能够修复功能，还能够恢复基因的生理表达，这是基因治疗长期追寻的一个目标。
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+ h5 D- ?* w7 Z+ h' L在基因治疗中，造血干细胞因为具有自我更新及分化为各种细胞系的能力而成为一种很有吸引力的靶细胞。近年来，将外源目的基因导入造血干细胞，以纠正或补偿基因缺陷和异常引起的疾病，特别是血液疾病如腺苷脱氨酶缺陷病、血友病、地中海贫血症及镰状细胞贫血症中已取得重要的进展，然而，在造血干细胞中实现靶向基因组编辑却仍然是一个难题（延伸阅读：Science：基因治疗的时代来临 ）。
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在这篇文章中，研究人员发现其障碍在于同源重组只发生在周期细胞中（细胞周期的S/G2），因而导致了在诸如HSCs一类的静息成体干细胞中进行这种基因组编辑操作效率低下。通过采用特异的传送平台和培养条件他们克服了这些障碍。; E( \3 {# O3 Y; m
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Genovese和同事们首先用一些细胞因子对细胞进行了2天的预刺激，在第二天时利用一种病毒载体导入了重组模板。他们随后利用电流对细胞进行对细胞进行了渗透性处理，然后添加设计的锌指核酸酶靶向目的DNA序列。用细胞因子进行预处理使得细胞对于导入核酸酶的毒性效应变得不太敏感，更重要的是这种处理促使一些细胞进入到细胞周期能够介导同源重组。此外，研究人员还用两种芳(香)烃受体蛋白抑制剂dmPGE2和SR1处理了细胞，阻止了它们过早分化，使HSCs处于干细胞状态。% w0 r1 z  R5 r% w2 }3 ~, _

" N4 R/ ?: w/ X8 Y: e! d这一实验方案使得Genovese等在一些HSCs中实现了位点特异性基因组编辑，将修正互补DNA靶向到了HSCs细胞的IL2RG基因中。IL2RG是X-连锁重症联合免疫缺陷病(SCID-X1)的致病基因。当他们将这些处理细胞转移到免疫缺陷小鼠体内，证实基因编辑HSCs可以维持正常的造血并生成了功能性的淋巴细胞。3 M8 S, W* {5 u( F' G
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研究人员表示，这一突破性的成果为治疗SCID-X1和其他基因缺陷疾病开辟了一条新途径。
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（生物通：何嫱）- ]% t  s+ F; L& g4 p

+ Z0 U3 N# U3 `" Y' t% b6楼原文 感谢hkenb提供

坤明

Targeted genome editing in human repopulating haematopoietic stem cells; M9 Z! k6 h/ |& H5 e% o$ u
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Targeted genome editing by artificial nucleases has brought the goal of site-specific transgene integration and gene correction within the reach of gene therapy. However, its application to long-term repopulating haematopoietic stem cells (HSCs) has remained elusive. Here we show that poor permissiveness to gene transfer and limited proficiency of the homology-directed DNA repair pathway constrain gene targeting in human HSCs. By tailoring delivery platforms and culture conditions we overcame these barriers and provide stringent evidence of targeted integration in human HSCs by long-term multilineage repopulation of transplanted mice. We demonstrate the therapeutic potential of our strategy by targeting a corrective complementary DNA into the IL2RG gene of HSCs from healthy donors and a subject with X-linked severe combined immunodeficiency (SCID-X1). Gene-edited HSCs sustained normal haematopoiesis and gave rise to functional lymphoid cells that possess a selective growth advantage over those carrying disruptive IL2RG mutations. These results open up new avenues for treating SCID-X1 and other diseases.